Lactococcus lactis subsp.lactis MA83 suşunda aktif bir faj dirençlilik siteminin genetik ve biyokimyasal doğası

Lactococcus lactls subsp. lactis MA83 susunda fajların adsorbslyonu, bu bakteride 32.7 kb büyüklükteki plazmidln varlığında üretilen ekzopolisakkarit materyal tarafından engellendi. Kimyasal analizler sonucunda bu ekzopollsakkarıt materyalin ana bileşenlerinin galaktoz, galaktozamln, ramnoz ve fosfat olduğu belirlendi. Ayrıca, L. lactls subsp. lactls MA83 susunda 0la2, 0p78, 0r4 ve 0p81 fajlarının almaç bölgelerinin protein yapıda olduğu saptandı.

Genetic and biochemical nature of an active phage resistance system in lactococcus lactis subsp.lactis MA83

Adsorption of phages to Lactococcus lactls subsp. lactls MA83 were Inhibited by the exopolysaccharide material that produces In the presence of 32.7 kb plasmid. Major constituents of the exopolysaccharide were determined as galactose, galactosamlne, rhamnose and phosphate by the end of chemical analysis. Moreover receptor sites on L lactls subsp. lactis MA83 strain for phages 0la2, 0p78, 0r4 and 0p81 were found to be protein In nature.

___

  • AKÇELİK, M., P. ÅžANLIBABA, Ç. TÜKEL, Y. TUNCER. 2001. Laktokoklarda endüstriyel açıdan önem taşıyan özelliklerin ge­netik determinantları. Tr. J. Veterinary and Animal Sci., 25: 615-621.
  • AKÇELİK, M., P. ÅžANLIBABA. 2002. Characterization of an exoplysaccharide preventing adsorption in Lactococcus lactis subsp. cremoris MA39. Turk J. Vet. Anim. Sci. 26:1151-1156.
  • ALLISON, G.E., T.R. KLAENHAMMER. 1998. Phage resistance mechanisms in lactic acid bacteria. Int. Dairy J. 8:207-226.
  • ANDERSON, D.G., L.L. McKAY. 1983. A simple and rapid method for isolating large plasmid DNA from lactic streptococci. Appl. Environ. Microbiol. 46: 549-552.
  • ASHWELL, G. 1957. Colorimetric analysis of sugars. Methods enzymol. 3: 73-105.
  • BOUMERDASSI, H., C. MONNET, M. DESMAZEAUD, G. CORRIEAU. 1997. Isolation and properties of L. lactis subsp. lac­tis CNZR483 mutants. Appl. Environ. Microbiol. 63: 2293-2299.
  • BRADFORD, M.M. 1976. A rapid and sensitive method for the quantiation of microgram quantities of protein utilizing the princible of protein-dye binding. Anal. Biochem. 72: 248-254.
  • CHEN,, P.S., T.Y. TORRIBARA, H. WARNER. 1956. Microdetermination of phosphorus. Anal. Biochem. 72: 248-254.
  • DALY, C, G.F. FITZGERALD, R. DAVIS. 1996. Biotechnology of lactic acid bacteria with special referance to bacteriophage resistance. Ant. Leeuwen. 70: 99-110.
  • DE VUST, L, B. DEGEEST. 1999. Heteropolysaccaharides from lactic acid bacteria. FEMS Microbial. Rev. 23:153-177.
  • DEVEAU, H., M.R. CALSTEREN, S.MOINEAU. 2002. Effect of exopolysaccharides on phage-host interactions in Lactococ­cus lactis. Appl. Environ. Microbiol. 68: 4364-4369.
  • DUBOCK, P., B. MOLLET. 2001. Applications of exopolysaccharides in the dairy industry. Int. Dairy J. 11: 759-768.
  • DUNNY, G. M, D.A. KRUG, C.L. PAN, R.A. LEDFORD. 1988. Identification of cell wall antigens associated a large conjuga-tive plasmid. Biochimie, 70:443-450.
  • HILL, C. 1993. Bacteriophage in dairy starter culture technology. Food technology, 38: 41-50
  • JOLLY, L., F. STINGELE. 2001. Molecular organization and function of exopolysaccharide gene clusters in lactic acid bac­teria. Int. Dairy J. 11: 733-745.
  • KENNEDY, F.D., I.W. SHUTHERLAND. 1987. Analysis of bacterial exopolysaccharides. Biotech. Appl. Biochem. 9:12-19
  • KOÇER, E., M. AKÇELİK. 2003. Conjugal transfer and stability of plasmids, determining exopoysaccharide production in Lactococcus lactis strains. Tr. J. Veterinary and Animal. Sci. In Press.
  • KOK, J. 1996. Inducible gene expression and environmentally regulated genes in lactic acid bacteria. Ant. Leeuwen. 70:129-145.
  • KRAUS, J., B.L: GELLER. 1998. Membrane receptor for prolate phages is not required for infection of Lactococcus lactis by small or large isometric phages. J. Dairy Sci. 81: 2329-2335.
  • LAEMMLI, U.K. 1970. Cleavage of structural proteins during the assembly of the head of bacteriophage T4. Nature, 227: 680-İ685.
  • LOOIJEISTEIJN, P.V., I.C. BOELS, M. KLEEREBEZEM., J. HUGENHOLTZ. 1999. Regulation of exopolysaccharide produc­tion by L lactis sbsp. cremoris by the sugar source. Appl. Environ. Microbiol. 65: 5003-5008.
  • LUCEY, M., C. DALY, G.F. FITZGERALD. 1992. Cell surface characteristics of Lactococcus lactis harbouring pCI528, a 46 kb plasmid encoding inhibition of bacteriophage adsorption. J. Gen. Microbiol. 138: 2137-2143.
  • McKAY, L.L., K.A. BALDWIN, P.M. WALSH. 1980. Conjugal transfer of genetic information in group N Streptococci. Appl. Environ. Microbiol. 40: 68-74.
  • MONTEVILLE, M.R., B. ARDESTANI, B.A. GELLER. 1994. Lactococcal phages require a host cell wall carbohydrate and a plasma membrane protein for adsorption and ejection of DNA. Appl. Environ. Microbiol. 60: 3204-3211.
  • ORAM, J.D. 1971. Isolation and properties of a phage receptor substance from the plasma membrane of Streptococcus lac­tis ML3. J. Gen. Virol. 13: 59-71.
  • SCHAFFER, A., A. GEIS, H. NEVE, M. TEUBER. 1991. Bacteriophage receptors of L. lactis F7/2 and L cremoris Wg2-1. FEMS Microbiol. Lett. 78: 69-74.
  • SIJTSMA, L., N. JANSEN, T. WOUTERS. 1990. Isolation and characterization of lipoteichoic acid from L cremoris SK110. J. Bacteriol. 172:7126-7130.
  • TERZAGHI, B.E., W.E. SANDINE. 1975. Improved medium for lactic streptococci and their bacteriophages. Appl. Environ. Microbiol. 29:807-813.
  • VALYASEVI, R., W.E. SANDINE, B.L. GELLER. 1991. A membrane protein is required for bacteriophage c2 infection. J. Bacteriol. 173: 6095-6100.
  • VAN KRANENBURG, R.H., I. SWAM, M. KLEEREBEZEM, W.M. DE VOS. 1999. Functional analysis of glucosetransferase genes from Lactococcus lactis. J. Bacteriol. 181: 6347-6353.
Gıda-Cover
  • ISSN: 1300-3070
  • Yayın Aralığı: 6
  • BaÅŸlangıç: 1976
  • Yayıncı: Prof. Dr. İbrahim ÇAKIR
Sayıdaki Diğer Makaleler

Yüksek Hidrostatik Basınç Uygulamasının Mısır Nişastasının Jelatinizasyonu Üzerine Etkileri

Esra İBANOĞLU, Şenol İBANOĞLU

Ç.Ü.Z.F.Tarla Bitkileri Bölümü tarfından yetiştirilen bazı ekmeklik buğday ve Triticale çeşit ve hatları ile bölgemizin çiftçilerince üretilen ticari buğday çeşitlerinin fiziksel,kimyasal ve teknolojik özelliklerinin belirlenmesi

Cemal KAYA, Hakan ÖZKAN, M.Sertaç ÖZER, Osman KOLA

Tulum Peynirinin Olgunlaşması Sırasında Laktik Asit Bakterileri Florasının Değişimi Üzerine Araştırmalar

Bahri PATIR, Gülsüm ATEŞ

Makarnalık Buğdaylarda Lipoksigenaz Enzim Aktivitesinin Belirlenmesi

Eser COÅžKUN, Recai ERCAN

Süperkritik Akışkan Ekstraksiyonu

Neslihan ÇOLAK, Yahya Tülek

Lactococcus lactis subsp. lactis MA83 Suşunda Aktif Bir Faj Dirençlilik Sisteminin Genetik ve Biyokimyasal Doğası

Çağla TÜKEL, Mustafa AKÇELİK

Urfa peynirlerinin mikrobiyolojik,kimyasal ve duygusal niteliklerinin saptanması

Filiz YILDIZ, Atilla YETİŞMEYEN

Elma Çürüklük Düzeyinin Elma Suyunun Patulin ve Fumarik Asit Düzeyine Etkisi

Çetin KADAKAL, Sebahattin NAS, Ender POYRAZOĞLU, Atilla SİMSEK

Hidrate Nişasta ve Jellerinin Desorbsiyon İzotermlerine Sakkaroz ve Sodyum Klorürün Etkisi (İngilizce)

Didem UZMAN, Ferhunde ÅžAHBAZ

Ç.Ü.Z.F. Tarla Bitkileri Bölümü Tarafından Yetiştirilen Bazı Ekmeklik Buğday ve Tritikale Çeşit ve Hatları ile Bölgemiz Çiftliklerinde Üretilen Ticari Buğday Çeşitlerinin Fiziksel, Kimyasal ve Teknolojik Özelliklerinin Belirlenmesi

M. Sertaç ÖZER, Hakan ÖZKAN, Osman KOLA, Cemal KAYA