Determination of Diagnostic Value of cELISA for the Diagnosis of Anaplasmosis in Clinically Suspected Ruminants

Bu çalışmada cELISA’nın klinik olarak anaplasmosis şüphesi olan ruminantlardaki tanısal değerinin belirlenmesi ve klinik muayene sonuçları ile cELISA sonuçlarının karşılaştırılması amaçlanmıştır. Bunun için toplam 720 ruminant (457 sığır, 146 koyun, 117 keçi) klinik belirtiler yönünden muayene edilmiştir. Anemi, ateş, sarılık, güçsüzlük, durgunluk ve iştahsızlık belirtileri olan 61’i sığır, 11’i koyun ve 16’sı keçi olmak üzere toplam 88 ruminant çalışma için seçilmiştir. Klinik şüpheli bu hayvanların vena j ugularisinden kan alınmış ve serumları çıkarılmıştır. Anaplasma antikorlarını belirlemek amacıyla ticari olarak temin edilen cELISA kiti kullanılmıştır. cELISA sonuçlarına göre 88 serum örneğinin 47’si (%53.4) anaplasmosis açısından pozitif bulunmuştur. Seroloj ik muayenede sığırların %45.9’unda, koyunların %63.6’sında ve keçilerin %56.2’sinde Anaplasma spesifik antikorlar saptanmıştır. İstatistiki olarak sığırlarda yaş gruplarına göre farklı seropozitivite oranları saptanmış olup, en yüksek oran 12 aydan daha küçük hayvanlarda saptanmıştır. Bununla birlikte koyun ve keçilerde yaş gruplarına göre seropozitivite oranlarında bir farklılık saptanmamıştır. Bu çalışmadan elde edilen verilere göre anaplasmosis tanısında klinik bulguların tek başına yeterli olmayacağı ve seroloj ik muayenelerle mutlaka desteklenmesi gerektiği sonucuna varılabilir.

Klinik Olarak Anaplasmosis Şüphesi Olan Ruminantlarda cELISA’nın Tanısal Değerinin Belirlenmesi

The aim of this study was to determine diagnostic value of cELISA in anaplasmosis in clinically suspected animals and to compare the cELISA results with the clinical examination results. For this purpose a total of 720 ruminants (457 cattle, 146 sheep, 117 goat) were examined in terms of clinical signs. Eighty-eight ruminants consisting of 61 cattle, 11 sheep and 16 goat which had the symptoms of anemia, fever, icterus, weakness, depression and lack of appetite were selected for the study. Blood samples were collected from the j ugular vein of all clinically suspected animals and serum samples were separated. A commercially available competitive enzyme-linked immunosorbent assay (C-ELISA) kit was used for determine antibodies to Anaplasma species. cELISA based diagnosis revealed that 47 of 88 serum samples (53.4%) were positive for anaplasmosis. In serological examination Anaplasma specific antibodies were determined in 45.9% of cattle, 63.6% of sheep and 56.2% of goats. Seropositivity rate was statistically differ among the age groups of cattle and the highest seropositvity rate was found in <12 month age (P<0.005). However no difference was found in the seropositivity rate of Anaplasma in sheep and goat in relation to age group. From the data obtained in this study it can be concluded that clinical findings are not sufficient criteria for the diagnosis of anaplasmosis and must be supported by serological examination.

___

  • 1. Coskun A, Derinbay Ekici O, Gozelbektes H, Aydogdu U, Sen I: Acute phase proteins, clinical, hematological and biochemical parameters in dairy cows naturally ınfected with Anaplasma marginale. Kafkas Univ Vet Fak Derg, 18, 497-502, 2012. DOI: 10.9775/kvfd.2011.5822
  • 2. Ait Hamou S, Rahali T, Sahibi H, Belghyti D, Losson B, Goff W, Rhalem A: Molecular and serological prevalence of Anaplasma marginale in cattle of North Central Morocco. Res Vet Sci, 93, 1318-1323, 2012. DOI: 10.1016/j.rvsc.2012.02.016
  • 3. Gökçe G, Kırmızıgül AH, Yıldırım Y, Erkılıç EE: Kars yöresindeki sığırlarda Anaplasma marginale seroprevalansı. Kafkas Univ Vet Fak Derg, 19 (Suppl-A): A187-A190, 2013. DOI: 10.9775/kvfd.2013.8748
  • 4. Sevinç F: Sığırlarda Anaplasmosis. Erciyes Üniv Vet Fak Derg, 1, 113- 118, 2004.
  • 5. Singh H, Jyoti Haque M, Singh NK, Rath SS: Molecular detection of Anaplasma marginale infection in carrier cattle. Ticks Tick Borne Dis, 3, 55-58, 2012. DOI: 10.1016/j.ttbdis.2011.10.002
  • 6. Carelli G, Decaro N, Lorusso A, Elia G, Lorusso E, Mari V, Ceci L, Buonavoglia C: Detection and quantification of Anaplasma marginale DNA in blood samples of cattle by real-time PCR. Vet Microbiol, 124, 107-114, 2007. DOI: 10.1016/j.vetmic.2007.03.022
  • 7. Aktas M, Altay K, Ozubek S, Dumanli NA: Survey of ixodid ticks feeding on cattle and prevalence of tick-borne pathogens in the Black Sea region of Turkey. Vet Parasitol, 187, 567-571, 2012. DOI: 10.1016/j. vetpar.2012.01.035
  • 8. Abou-Elnaga RR, Mahmoud MA, Osman WA Goda ASA: Serological survey of anaplasma marginale (rickettsia) antibodies in animals by major surface protein 5 competitive inhibition enzyme-linked immunosorbent assay. Suez Canal Vet Med J, 19 (1): 309-319, 2009.
  • 9. Derinbay Ekici O, Sevinc F: Comparison of cELISA and IFA tests in the serodiagnosis of anaplasmosis in cattle. African J Microbiol Res, 5, 1188- 1191, 2011.
  • 10. Birdane MF, Sevinc F, Derinbay Ekici O: Anaplasma marginale infections in dairy cattle: Clinical disease with high seroprevalence. Bull Vet Inst Pulawy, 50, 467-470, 2006.
  • 11. Aktaş M, Altay K, Dumanlı N: Molecular detection and identification of Anaplasma and Ehrlichia species in cattle from Turkey. Ticks Tick Borne Dis, 2, 62-65, 2011. DOI: 10.1016/j.ttbdis.2010.11.002
  • 12. Gokce HI, Genc O, Akca A, Vatansever Z, Unver A, Erdogan HM: Molecular and serological evidence of Anaplasma phagocy tophilum infection of farm animals in the Black Sea region of Turkey. Acta Vet Hung, 56, 281-292, 2008. DOI: 10.1556/AVet.56.2008.3.2
  • 13. Altay K, Dumanlı N, Aktas M, Özübek S: Survey of Anaplasma infections in small ruminants from East part of Turkey. Kafkas Univ Vet Fak Derg, 20, 1-4, 2014. DOI: 10.9775/kvfd.2013.9189
  • 14. Aydın L: Güney Marmara bölgesi ruminantlarında görülen kene türleri ve yayılışları. Doktora Tezi, Uludağ Üniv. Sağlık Bil. Enst., 1994.
  • 15. Knowles DS, de Echaide T, Palmer G, Mc Guire D, Stiller D, Mc Elwain T: Antibody against an Anaplasma marginale MSP5 epitope common to tick and erythrocytest ages identifies persistently infected cattle. J Clin Microbiol, 34, 2225-2230, 1996.
  • 16. Minitab Inc: Statistical Software. Minitab 15, State College, PA, USA, 2007.
  • 17. Kocan KM, Blouin EF, Barbet AF: Anaplasmosis control: Past, present, and future. Ann N Y Acad Sci, 916, 501-509, 2000. DOI: 10.1111/j. 1749-6632.2000.tb05329.x
  • 18. Tassi P, Carelli G, Ceci L: Tick-borne diseases (TBDs) of dairy cows in a Mediterranean environment: A clinical, serological, and hematological study. Ann N Y Acad Sci, 969, 314-317, 2002.
  • 19. Gale KR, Dimmock CM, Gartside M, Leatch G: Anaplasma marginale: Detection of carrier cattle by PCR-ELISA. Int J Parasitol, 26, 1103-1109, 1996. DOI: 10.1016/S0020-7519(96)80009-9
  • 20. Eriks IS, Stiller D, Palmer GH: Impact of persistent Anaplasma marginale rickettsemia on tick infection and transmission. J Clin Microbiol, 31 (8): 2091-2096, 1993.
  • 21. Amrita Sharma A, Das Singla L, Kaur P, Bal MS, Batth BK, Juyal PD: Prevalence and haemato-biochemical profile of Anaplasma marginale infection in dairy animals of Punjab (India). Asian Pac J Trop Med, 139- 144, 2013. DOI: 10.1016/S1995-7645(13)60010-3
  • 22. de la Fuente J, Lew A, Lutz H, Meli ML, Hofmann-Lehmann R, Shkap V, Molad T, Mangold AJ, Almaza´n C, Naranjo V, Gorta´zar C, Torina A, Caracappa S, Garci´a-Pe´rez AL, Barral M, Oporto B, Ceci L, Carelli G, Blouin EF, Kocan KM: Genetic diversity of Anaplasma species major surface proteins and implications for anaplasmosis serodiagnosis and vaccine development. Anim Health Res Rev, 6, 75-89, 2005. DOI: 10.1079/AHR2005104
  • 23. Bock RE, D Vos AJ, Kingston TG, Carter PD: Assessment of a low virulence Austuralian isolate of Anaplasma marginale for pathogenicity and transmissability by Boophilus microplus. Vet Parasitol, 118, 121-131, 2003. DOI: 10.1016/j.vetpar.2003.08.011
  • 24. Kvein KL, Junzo N, Mitchell SA, Guy HP, Wendy CB: The CD4+ T cell immunodominants Anaplasma marginale major surface protein 2 stimulate γδ T cell clones that express unique T cell receptors. J Leukocyte Biol, 77, 199-208, 2005. DOI: 10.1189/j lb.0804482
  • 25. Chahan B, Zij ian J, Xuenan X, Yukita S, Hisashi I: Serological evidence of infection of Anaplasma and Ehrlichia in domestic animals in Xinj iang Uygur Autonomous Region area, China. Vet Parasitol, 134, 273-278, 2005. DOI: 10.1016/j.vetpar.2005.07.024
  • 26. Keleş I, Değer S, Aytuğ N, Karaca M, Akdemir C: Tick-borne diseases in cattle: Clinical and haematological findings, diagnosis, treatment, seasonal distribution, breed, sex and age factor and the transmitters of the diseases. YYU Vet Fak Derg, 12 (12): 26-32, 2001.
  • 27. Arslan MÖ, Umur Ş, Aydın L: Kars yöresi sığırlarında Ixodidae türlerinin yaygınlığı. T Parazitol Derg, 23, 331-335, 1999.
  • 28. Aydın L: Güney Marmara Bölgesi ruminantlarında görülen kene türleri ve yayılışları. T Parasitol Derg, 24 (1): 194-200, 2000.
  • 29. Aktas M, Altay K, Dumanli N, Kalkan A: Molecular detection and identification of Ehrlichia and Anaplasma species in ixodid ticks. Parasitol Res, 104 (5), 1243-1248, 2009. DOI: 10.1007/s00436-009-1377-1
  • 30. Aktas M: A survey of ixodid tick species and molecular identification of tick-borne pathogens. Vet Parasitol, 200, 276-283, 2014. DOI: 10.1016/j. vetpar.2013.12.008
  • 31. Aktas M, Vatansever Z, Altay K, Aydin MF, Dumanli N: Molecular evidence for Anaplasma phagocytophilum in Ixodes ricinus from Turkey. Trans R Soc Trop Med Hyg, 104, 10- 15, 20 10. DOI: 10.10 16/j . trstmh.2009.07.025
Kafkas Üniversitesi Veteriner Fakültesi Dergisi-Cover
  • ISSN: 1300-6045
  • Yayın Aralığı: Yılda 6 Sayı
  • Başlangıç: 1995
  • Yayıncı: Kafkas Üniv. Veteriner Fak.
Sayıdaki Diğer Makaleler

Sıvı Formdaki Oligofruktoz ile Zenginleştirilmiş İnulin Katkısının Kısa Süreli Kullanımının Sağlıklı Saanen Irkı Oğlaklarda Dışkı Özellikleri ve Bazı Serum Parametreleri Üzerine Etkisi

Yavuz MERAL, İsmail ÇETİN, Gülay DENİZ, Derya YEŞİLBAĞ, Hıdır GENÇOĞLU, Hakan BİRİCİK, İsmet TÜRKMEN, Çağdaş KARA, Artun YIBAR, Abdülkadir ORMAN

Evaluation of Acute Phase Proteins, Some Cytokines and Hemostatic Parameters in Dogs with Sepsis

MAHMUT OK, CENK ER, RAMAZAN YILDIZ, Ramazan ÇÖL, UĞUR AYDOĞDU, İSMAİL ŞEN, HASAN GÜZELBEKTEŞ

Bir Kuzuda Konjenital Diyafram Fıtığı Olgusu

Ayhan ATASEVER, Duygu YAMAN, Görkem EKEBAŞ

A Comparison of Different Analysis Methods for Milk Urea Nitrogen

FATMA İNAL, EMEL GÜRBÜZ, BEHİÇ COŞKUN, MUSTAFA SELÇUK ALATAŞ

Aortic Body Cell Tumor with Kidney Metastasis in a Dog

MEHMET ÖNDER KARAYİĞİT, Öznur ASLAN, LATİFE ÇAKIR BAYRAM, Duygu YAMAN, AYHAN DÜZLER, İLKNUR KARACA BEKDİK, Görkem EKEBAŞ

Comparison of Intrauterine Ozone and Rifaximine Treatment in Cows with Subclinical Endometritis

BÜLENT POLAT, MEHMET CENGİZ, ARMAĞAN ÇOLAK, ORÇUN CANNAZİK

Genetic Analysis of the ORF7 Gene in Vietnamese Porcine Reproductive and Respiratory Syndrome Virus (PRRSV)

Nguyen Thi Dieu THUY, Nguyen Thi THU, Nguyen Giang SON, Le Thi Thu HA, Do Vo Anh KHOA

Comparison of Tuberculin Skin Test, IFN-γ Assay, Real Time PCR and Lateral Flow Rapid Test in Diagnosis of Field Outbreaks of Bovine Tuberculosis

ABDULLAH KAYA, HASAN İÇEN, Nevin TUZCU, AYNUR ŞİMŞEK, Simten YEŞİLMEN, AKIN KOÇHAN, İBRAHİM HALİL YILDIRIM, Adil ALAN

Comparison of Flow Cytometric Analysis and Eosin-Nigrosin Staining Methods for Determining some Morphological Characteristics of Bull Epididymal Spermatozoa

NUMAN AKYOL, Ahmet Kürşat AZKUR, HÜSAMETTİN EKİCİ

The Importance of Bioactive Feed Additives in Feeding Pigs and Their Impact on the Digestibility of Particular Nutrients

Katarzyna BASINSKA, Izabela MICHALAK, Maciej JANECZEK, NEZİR YAŞAR TOKER