Nihan ZİYADE, Gülhan YAĞMUR, Neval ELGÖRMÜŞ, Ferah KARAYEL, Yalçın BÜYÜK

Postmortem örneklerden izole edilen staphylococcus aureus suşlarında metisilin, vankomisin, teikoplanin ve makrolid-linkozamid-streptogramin b (mls b ) direnci

Stafilokokların etken olduğu infeksiyonlarda etkili antibiyoterapi, bakterilerin direnç durumlarının belirlenmesi ile yakından ilişkilidir. Stafilokoklarda metisilin direncinin artışı ve diğer bazı antibiyotiklere direnci de beraberinde getirmesi, bu infeksiyonların tedavisini ve kontrolünü zorlaştırmakta ve ölümlere sebep olabilmektedir. Çalışmamızda Adli Tıp Kurumu Postmortem Mikrobiyoloji Laboratuvarında izole edilen 136 Staphylococcus aureus suşunun metisiline ve glikopeptid antibiyotiklere karşı hassasiyetlerinin araş - tırılması ve makrolid-linkozamid-streptogramin B (MLS B) direncinin belirlenmesi amaçlanmıştır. Clinical and Laboratory Standards Institute (CLSI) önerileri doğrultusunda suşların metisiline direnci Mueller Hinton agar (MHA) besiyerinde sefoksitin (30 μg, Becton- Dickinson) diski ile; MLS B direnci ise, eritromisin (15 μg, Oxoid) ve klindamisin (2 μg,Oxoid) disklerinin merkezleri arasındaki uzaklık 15-26 mm olacak şekilde yerleştirilmesi ile araştırılmıştır. İzolatların vankomisin ve teikoplanine duyarlılıkları E-test yöntemiyle belir - lenmiştir. Tanımlanan S.aureus suşlarının 47si (% 34.6) metisiline dirençli (MRSA), 89u (% 65.4) metisiline duyarlı (MSSA) bulun - muştur. MRSA suşlarının % 17sinde iMLS B direnci, % 2.2sinde M tipi direnç, % 46.8inde ise yapısal tipte direnç saptanırken; MSSA suşlarında iMLS B direnci % 15.7, M tipi direnç % 11.2 olarak bulunmuş yapısal tipte direnç saptanmamıştır. Tüm izolatlar CLSI kri - terlerine göre vankomisin ve teikoplanine duyarlı bulunmuştur. Toplum ve hastane kaynaklı stafilokok infeksiyonlarında çeşitli direnç mekanizmalarının ortaya çıkmasıyla birlikte, tedavi sorun oluşturmakta ve her geçen gün artan düzeyde mortalite karşımıza çıkmaktadır. Bu olguların postmortem değerlendirilmesi, bakteriye ait direnç oranlarının ortaya konulması, epidemiyolojik verilere katkıda bulunacak ve bu infeksiyonların önlenmesi için yapılacak çalışmalara büyük oranda yarar sağlayacaktır.

Methicillin, vancomycin, teicoplanin and macrolide-lincosamide-streptogramin B (MLSB) resistance in staphylococcus aureus isolated from Postmortem samples

The effective antibiotherapy of infections caused by staphylococci is closely associated with the determination of antibiotic resis - tance. The increase in the methicillin-resistance of staphylococci, which leads to resistance to other antibiotics, renders the therapy and control of staphylococcal infections difficult, which may be fatal. The purpose of this study was to determine the susceptibility to methi- cillin and glycopeptides and resistance to macrolide-lincosamide-streptogramin B (MLS B) of 136 strains of Staphylococcus aureus isola - ted in the Postmortem Microbiology Laboratory of the Forensic Medicine Institute. According to the suggestions of the Clinical and Laboratory Standards Institute (CLSI), methicillin-resistance was assessed on Mueller-Hinton agar (MHA) using cefoxitin disks (30 µg, Oxoid) and MLS B resistance by placing erythromycin (15 µg, Oxoid) and clindamycin (2 µg, Oxoid) disks distanced at 15-26 mm from each other. The susceptibility of the isolates to vancomycin and teicoplanin was determined with the E-test. Of the S. aureus isolates, 47 (34.6 %) were methicillin-resistant (MRSA) and 89 (% 65.4) were methicillin-sensitive (MSSA). Among MRSA isolates, iMLS B resis - tance was determined in 17 %, M-type resistance in % 2.2, and structural type resistance in 46.8 %; among the MSSA strains, the iMLS B and M-type resistance rates were 15.7 % and 11.2 %, respectively, and no structural type resistance was detected. All isolates were sensitive to vancomycin and teicoplanin according to the CLSI criteria. The mortality rates caused by community-acquired and nosocomial staphylococcal infections are increasingly rising due to the emergence of various antibiotic-resistance mechanisms in staph - ylococci. The postmortem evaluation of staphylococcal infections and determination of the antibiotic resistance in those causative staph - ylococci will significantly contribute to epidemiological data, as well as to the prevention of staphylococcal infections.

PDF

___

1. Aktaş E, Mengeloğlu FZ, Külah C, Cömert FB. Klinik örneklerden izole edilen MRSA suşlarında vankomisine karşı azalmış duyarlılığın araştırıl- ması, Mikrobiyol Bul 2010;44(2):339-41.
2. Baragundi Mahesh C, Kulkarini Ramakant B, Sataraddi Jagadeesh V. The prevalence of inducib- le and constitutive clindamycin resistance among the nasal isolates of staphylococci, J Clin Diagn Res 2013;7(8):1620-22.
3. Bartlett JG. Methicillin-resistant Staphylococcus aureus infections, Top HIV Med 2008;16(5):151-5.
4. Caplan MJ, Koontz FP. Cumitech 35, Postmortem Microbiology. McCurdy BW (Coordinating Editor). ASM Press, Washington DC (2001).
5. CDC. Staphylococcus aureus resistant to van- comycin-United States, MMWR 2002;51(26): 565-7.
6. Clinical Laboratory Standards Institute. Performance standards for antimicrobial suscepti- bility testing. 23th Informational Supplement. M100-S23, CLSI, Wayne, PA (2013).
7. Çolakoğlu Ş, Alışkan H, Turunç T, Demiroğlu YZ, Arslan H. Klinik örneklerden izole edilen Staphylococcus aureus suşlarında indüklenebilir klindamisin direnç prevalansı, Mikrobiyol Bul Staphylococcus aureus suşlarında indüklenebilir klindamisin direnç prevalansı, Mikrobiyol Bul
8. Dinç BM, Karabiber N, Arca EA. Klinik örnekler- den izole edilen metisiline dirençli Staphylococcus aureus (MRSA) izolatlarında makrolid-linko- zamid-streptogramin B direnci ve fusidik asit duyarlılığı, Türk Hijyen ve Deneysel Biyoloji Derg 2009;66(3):89-94.
- 9. Duval J. Evolution and epidemiology of MLS resistance, J Antimicrob Chemother 1985;16(Suppl A):137-49. http://dx.doi.org/10.1093/jac/16.suppl_A.137 -
10. European Centre for Disease Prevention and Control. Antimicrobial resistance surveillance in Europe 2009. Annual Report of the European Antimicrobial Resistance Surveillance Network (EARS-Net). Stockholm: ECDC; (2010).
11. Fernandez-Rodriguez A, Cohen M, Lucena J et al. How to optimize the yield of forensic and clinical post-mortem microbiology with an adequate -sampling: a proposal for standardization, Eur J Clin Microbio l 2015. doi: 10.1007/s10096-015-2317.
12. Fiebelkorn KR, Crawford SA, McElmeel ML, Jorgensen JH. Practical disk diffusion method for detection of inducible clindamycin resistance in Staphylococcus aureus and coagulase-negative staphylococci, J Clin Microbiol 2003;41(10):4740-4. http://dx.doi.org/10.1128/JCM.41.10.4740-4744.2003
13. Gönüllü N, Karaköse AR, Çatal F, Küçükbasmacı Ö, Altınkum S, Mamal Torun M. Klinik örnekler- den izole edilen stafilokok suşlarının makrolid ve linkozamid direnç fenotipleri, Türk Mikrobiyol Cem Derg 2009;39(1-2):12-5.
14. Gülay Z, Atay T, Küçükgüven M, Yuluğ N. Staphylococcus aureus strains heterogeneously resistant to vancomycin at a hospital in Turkey. 38th Interscience Conference on Antimicrobial Agents and Chemotherapy. September 24-27, 1998, San Diego, CA, USA. Programme and Abstracts, C-136.
15. Hamilton-Miller JM, Shah S. Patterns of phenoty- pic resistance to the macrolide-lincosamide- ketolide-streptogramin group of antibiotics in staphylococci, J Antimicrob Chemother 2000;46(6): 941-9. http://dx.doi.org/10.1093/jac/46.6.941
16. Karadenizli A. Hastanelerde metisilin dirençli Staphylococcus aureus (MRSA) kontrol politikala - rı ve MRSA, Hastane İnfeksiyonları Derg 2002;6(1): 12-8.
17. Kavitha P, Sunil R, Venkatakrishna R. Inducible clindamycin resistance in Staphylococcus aureus isolated from clinical samples, J Lab Physicians 2011;3(1):25-7. http://dx.doi.org/10.4103/0974-2727.78558
18. Klevens RM, Morrison MA, Nadle J et al. Invasive methicillin-resistant Staphylococcus aureus infec - tions in the United States, JAMA 2007;298(15): 1763-71. http://dx.doi.org/10.1001/jama.298.15.1763
19. Leblebicioğlu H, Usluer G, Ulusoy S. Güncel bilgi- ler ışığında antibiyotikler, Bilimsel Tıp Yayınevi, Ankara (2003).
20. Nakajıma Y. Mode of Action and Resistance Mechanisms of Antimicrobial Macrolids, Omura S. Macrolide Antibiotics ikinci baskı kitabında, s.464-5, Elsevier Science U.S.A. (2002).
21. Oksuz L, Dupieux C, Tristan A, Bes M, Etienne J, Gurler N. The high diversity of MRSA clones detected in a university hospital in Istanbul, Int J Med Sci 2013;10(12):1740-5. http://dx.doi.org/10.7150/ijms.6438
22. Sancak B, Ercis S, Menemenlioğlu D, Çolakoğlu S, Hasçelik G. Methicillin-resistant Staphylococcus aureus heterogeneously resistant to vancomycin in a Turkish university hospital, J Antimicrob Chemother 2005;56(3):519-23. http://dx.doi.org/10.1093/jac/dki272
23. Sancak B, Yağcı S, Gür D et al. Vancomycin and daptomycin minimum inhibitory concentration distribution and occurrence of heteroresistance among methicillin-resistant Staphylococcus aureus blood isolates in Turkey, BMC Infect Dis 2013; 13:583. http://dx.doi.org/10.1186/1471-2334-13-583
24. Schreckenberger PC, Ilendo E, Ristow KL. Incidence of constitutive and inducible clindamy- cin resistance in Staphylococcus aureus and coagulase-negative staphylococci in a community and a tertiary care hospital, J Clin Microbiol 2004;42(6):2777-9. http://dx.doi.org/10.1128/JCM.42.6.2777-2779.2004
25. Şamlıoğlu P, Ece G, Atalay S, Köse Ş. Klinik örnek- lerden izole edilen stafilokok suşlarında makro- lid- linkozamid- streptogramin B (MLSB) direnç fenotipleri, ANKEM Derg 2012;26(3):116-9.
26. Torun MM, Bahar H, Demirci M et al. Two hetero- geneously vancomycin-intermediate clinical isola - tes of methicillin-sensitive and methicillin-resistant Staphylococcus aureus in a Turkish university hospital: brief report of a surveillance study, Int J Antimicrob Agents 2005;26(6):508-10. http://dx.doi.org/10.1016/j.ijantimicag.2005.09.001
27. Tsokos M, Püschel K. Postmortem bacteriology in forensic pathology: diagnostic value and interpre- tation, Leg Med 2001;3(1):15-22. http://dx.doi.org/10.1016/S1344-6223(01)00002-5
28. Uzun B, Güngör S, Pektaş B ve ark. Klinik stafilo- kok izolatlarında makrolid-linkozamid-strep- togramin B (MLSB) direnç fenotipleri ve telitromi- sin etkinliğinin araştırılması, Mikrobiyol Bul 2014;48(3):469-76. http://dx.doi.org/10.5578/mb.7748
29. Vallianou N, Evangelopoulos A, Hadjisoteriou M, Avlami A, Petrikkos G. Prevalence of macrolide, lincosamide, and streptogramin resistance among staphylococci in a tertiary care hospital in Athens, Greece, J Chemother 2014. http://dx.doi.org/10.1179/1973947814Y.0000000205
30. Walsh TR, Bolmström A, Qwärnström A et al. Evaluation of current methods for detection of staphylococci with reduced susceptibility to glyco- peptides, J Clin Microbiol 2001;39(7):2439-44. http://dx.doi.org/10.1128/JCM.39.7.2439-2444.2001
31. Yaşar KK, Bilir YA, Pehlivanoğlu F, Gürsoy S, Şengöz G. Stafilokok suşlarında makrolid- linkozamid-streptogramin B (MLSB) direnç fenoti- pi, Haseki Tıp Bül 2011;49(3):102-4.