Klorofil Floresan Metodu ile Ayrılan Farklı Olgunluk Dönemlerindeki Biber Tohumlarında Canlılık Parametrelerinin Tespiti

Klorofil Floresan (KF) metodu tohumları herhangi bir ıslatmaya tabi tutmadan, tohum neminde herhangi bir değişim olmadan olgun ve az olgun tohumları ayırma temeline dayanmaktadır. Bu metodun prensibi, tohumların olgunlaşma sürecinde bulundurmuş olduğu klorofilin olgunlaşma gerçekleştikçe parçalanmasını baz alarak tohumlara verdiği kırmızı ışığın (670 nm) emilen ve emilmeyen kısmında yansımasıdır. Bu çalışmada, iki farklı olgunluk döneminde hasat edilen ve Klorofil Floresan ayırım tekniği ile olgunluk durumları (az olgun yada aşırı olgun) belirlenen Çarliston, 11B14, Yağlık ve Kandil Dolma çeşitlerine ait 8 yıllık tohum partilerinin çimlenme performansı (toplam-normal çimlenme oranı %), protein miktarı (ham protein) ve fungusların tespit edilmesi amaçlanmıştır. I. hasata ait kontrol grubu tohumlarında en fazla normal çimlenme oranı (%30) yağlık çeşidinde belirlenmiş ancak depolama süresine bağlı olarak canlılık ciddi oranda azalmıştır. KF ayırımı ile klorofil değeri yüksek olarak belirlenen gruplarında ise kayda değer bir canlılık bulunmazken, klorofil değeri düşük grupta da yine Yağlık çeşidi kısmen çimlenme (%39) göstermiştir. IV. hasata ait tohum gruplarında ise; kontrol tohumlarında Kandil Dolma ve Yağlık en yüksek normal çimlenme performansı (%88-89) göstermiştir. KF ayırımı ile klorofil değeri yüksek olarak belirlenen gruplarında I. hasat tohumlarına göre daha yüksek canlılık belirlenerek, öne çıkan çeşit %63 oranı ile kandil dolma çeşidine ait tohumlar olmuştur. Klorofil değeri düşük grupta olgunluğun daha yüksek olması sebebiyle genel olarak canlılık %62-95 arasında belirlenmiştir. Protein analizi sonuçlarında; özellikle Çarliston ve Yağlık çeşitlerinde klorofil değeri düşük olan ve IV. hasata ait tohumlarda diğerlerine nazaran daha yüksek değerler elde edilmiştir. Belirlenen funguslar; Cladosporium spp., Aspergillus flavus, Rhizopus stolonifer, Penicillium spp.’dir. Çarliston, Kandil Dolma ve Yağlık biber çeşitlerinde IV. hasat tohumlarında klorofil ayrımı ile yüksek ve düşük klorofil değerleri saptanan gruplarda fungus saptanmamıştır.

Determination of the Viability Parameters in Pepper Seeds Separated by Chlorophyll Fluorescence Methodat Different Maturation Periods

Chlorophyll Fluorescence (CF) is based on the separation of mature and less mature seeds without any change in seed moisture and without water uptake any seeds. The principle of this method is the reflection of the red light (670 nm) which is given to the seeds on the basis of the rupture of the chlorophyll in the ripening phase of the seeds. In this study, it was aimed to determine the germination rate, protein amounts and presence of fungal agents of 8 year old seeds of Çarliston, 11B14,  Yağlık and Kandil Dolma cultivars which were harvested in two different maturity periods and their maturation stages were identified as underripe, overripe by CF separation technique. The most normal germination rate (30%) in control group of first harvest was determined in Yağlık, however, the viability rate was decreased depending on storageperiod. While no significant viability was found in the groups with high chlorophyll rate by CF separation, Yağlık again partly germinated (39%) in the group with low chlorophyll rate. However, in seed groups of 4th harvest Kandil Dolma and Yağlık had the highest normal germination performance (88-89%) in control groups. Higher viability rate was determined in the groups with high chlorophyll rate through CF separation compared to 1st harvest seeds and the outstanding species was Kandil Dolma seeds with 63%.  Because maturity was higher in the group with lower chlorophyll rate, the viability was generally determined between 62-95%. In protein analyse, higher values were obtained in 4th harvest seeds with lower chlorophyll rates in Çarliston and Yağlık compared to the others. The determined fungal agents were Cladosporium spp., Aspergillus flavus, Rhizopus stolonifer, Penicillium spp. No fungal agents were identified in the groups determined high and low chlorophyll values through CF separation in 4th harvest seeds in all cultivars.

___

  • Al-Kassim MY and Monawar MN., 2002. Seed-borne fungi of some vegetable seeds in Gazan province and their chemical control. Saudi Journal Biological Sciences, 7: 179-184.
  • AOAC 1998. Official Method of Analysis. 15th Edition, Association of Official Analytical Chemists, Washington DC.
  • Bewley JD and Black M., 1982. Viability, dormancy and environmental control. ‘In ‘Physiology and Biochemistry of Seed in Relation to Germination’ Vol.2, Springer-Verlag, Germany.
  • Chiejina V., 2006. Studies on seed-borne pathogens of some nigerian melons, Agro-Science, 5(1): 13-16.
  • Delouche JC., 1980. Environmental effects on seed development and seed quality. Hortscience, 15: 775-780.
  • Demir İ and Ellis RH., 1992. Changes in seed quality during seed development and maturation in tomato. Seed Science Research, 2: 81-87.
  • Demir İ., 1994. Changes in seed quality during seed development in tomato and pepper. II Symposium on Protected Cultivation of Solanacea in Mild Winter Climates, Adana-Turkey, August 1994, Acta Horticulture (ISHS), 366: 221-228.
  • Demir I., Ermiş S., Mavi K and Matthews S., 2008. Mean germination time of pepper seed lots (Capsicum annuum L.) predicts size and uniformity of seedlings in germination tests and transplant modules. Seed Science and Technology, 36: 21-30.
  • De Vos CHR., Kraak HL and Bino RJ., 1994. Ageing of tomato seeds involves glutathione oxidation. Physiologia Plantarum, 92(b): 131-139. Dinler H., Günay M., 2018. Determination of fungal agents in some vegetables seeds in greenhouse production areas in Uşak province. International Journal of Agriculture and Forestry, 8(2): 83-91.
  • Er Y., 2010. Bazı sebze tohumlarında fungal floranın tespiti ve tanılaması. Yüksek Lisans Tezi, Selçuk Üniversitesi Fen Bilimleri Enstitüsü, Konya.
  • Habib A., Sahi ST., Ghazanfar MU., Ali S., 2007. Location of seed-borne mycoflora of eggplant (Solanum melongena L.) in different seed components and impact on seed germinability. International Journal of Agriculture & Biology, 1560-8530(3): 514-516.
  • ISO 1992. Method 10519. Rapeseed - Determination of chlorophyll content Spectrometric method. Geneva, International Organization for Standardization.
  • ISTA, 1996. International Rules for Seed Testing, Annexes.
  • ISTA 2003. International Seed Testing Association. International Rules for Testing Seed. Seed Science and Technology 21. İlbi H., 1998, Soğan tohumlarında yaşlanma ve yaşlanma ile oluşan vigor kayıplarının iyileştirilmesi. Doktora tezi, Ege Üniversitesi Fen Bilimleri Enstitüsü, İzmir.
  • Jalink H., 1996. Werkwijze Voorhetbepalenvan de rijpheid en kwaliteit van zaden middelshet chlorofylgehalte en enrichtingvoorhetselecterenvan zaden met behulpvaneendergelijkewerkwijze.
  • Jalink H., Frandas A., van Der Schoor R andBino JB., 1998. Chlorophyll fluorescence of the testa of Brassica oleracea seeds as an indicator of seed maturity and seed quality. Scientia Agricola, 55: 88-93.
  • Khanal R., 1990. Literature Review on Vegetable Seed Storage and Packing, PAC Occasional Paper (6), Nepal.
  • Konstantinova P., Van der Schoor R., Van den Bulk R and Jalink H., 2002. Chlorophyll fluorescence sorting as a method for improvement of barley seed health and germinaton. Seed Science and Technology, 30: 411- 421.
  • Kwong FY., 1991. Research needs in the production of high quality seeds. Horticulture, New Technologies and Applications, (Eds. Prakash J And Pierek RLM), Kluwer Academic Publishers, Dordrecht, pp. 13-20.
  • McDonald MB., 1998. Seed quality assessment. Seed Science and Technology, 8: 265-275.
  • Neergaard P. 1988. Seed Pathology Vols. I and II, MacMillan Press, Hong Kong.
  • Nishikawa J., Kobayashi T., Shirata K., Chibana T. and Natsuaki KT. 2006. Seedborne fungi detected on stored solanaceous berry seeds and their biological activities, Journal of General Plant Pathology, 72(5): 305-313.
  • Noots I., Delcour JA and Michiels CW., 1998. From field barley to malt: detection and specification of microbia lactivity for quality aspects. Critical Reviews in Microbiology, 25: 121-153.
  • Oluoch MO and Welbaum GE., 1996. Effect of postharvest washing and post-storage priming on viability and vigour of six-year-old muskmelon (Cucumis melo L.) seeds from eight stages of development, Seed Scince and Technology, 24(2): 195-209.
  • Sharfun, N., Mushtaq M. and Pathan IH., 2004. Seed-borne mycoflora of Capsicum annuum imported from India. Pakistan Journal of Botany, 36(1): 191-197.
  • Schwarz PB.,Casper HH., 1995. Fate and development of naturally occurring Fusarium mycotoxin during malting and brewing. Journal of the American Society of Brewing Chemistry, 53: 121-125.
  • Sultana N., Azeem T. and Ghaffar A., 2009. Location of Seed-borbe Inoculum of Macrophomina phaseolina and its Transmission in Seedlings of Cucumber. Pakistan Journal of Botany, 41(5): 2563-2566.
  • Steckel JRA., Gray D and Rowse HR., 1989. Relationships between indices of seed maturity and carrot seed quality. Annals of Applied Biology, 114: 177-183. Sehirali S. 1989. Tohumluk ve Teknolojisi. Ankara Üniversitesi Ziraat Fakültesi Basımevi, Ankara.
  • TÜİK 2017. Bitkisel üretim istatistikleri. http://tuikapp.tuik.gov.tr/bitkiselapp/bitkisel.zul. [Erişim: 1 Temmuz 2017].
  • Ward K., Scarth R., McVetty PBE and Daun J., 1992. Effects of genotype and enviroment on seed chlorophyll degradation during ripening in four cultivars of oilseed rape (Brassica napus). Canadian Journal of Plant Science, 72(3): 643-649.
  • Ward K., Scarth R., Daun JK., Vessey JK., 1995. Chlorophyll degradation in summer oilseed rape and summer turnip rap during seed ripening. Canadin Journal of Plant Science, 75: 413-420.
Uluslararası Tarım ve Yaban Hayatı Bilimleri Dergisi-Cover
  • ISSN: 2149-8245
  • Başlangıç: 2015
  • Yayıncı: BOLU ABANT İZZET BAYSAL ÜNİVERSİTESİ > ZİRAAT VE DOĞA BİLİMLERİ FAKÜLTESİ
Sayıdaki Diğer Makaleler

Fasulye Tohumunun Biyofortifikasyonu için Mineral İçerik Vasyasyonlarının Değerlendirilmesi

Tolga KARAKÖY, Mehmet Zahit YEKEN, Vahdettin ÇİFTÇİ, Hacer AKPOLAT

Tıbbi Adaçayı (Salvia officinalis L.)’nda Uçucu Yağ Oranı ve Kompozisyonu Üzerine Ontogenetik Varyabilitenin Etkisi

Nimet KATAR, DURAN KATAR, Doğan AYDIN, MURAT OLGUN

Kışlık Buğday Genotiplerinin Türkiye’ de Kök Çürüklüğü Etmeni Fusarium culmorum’a Karşı Dayanıklılığı’nın Belirlenmesi

Abdelfattah Adnan DABABAT, Gul ERGINBAS ORAKCI, Alexey MORGOUNOV

Tuz Stresinin Sorgum×Sudanotu Melezinde Çimlenme ve Fide Gelişim Özelliklerine Etkisi

AYŞE ÖZGE ŞİMŞEK SOYSAL, GÜRKAN DEMİRKOL, ÖZLEM ÖNAL AŞCI, YELİZ KAŞKO ARICI, ZEKİ ACAR, NURİ YILMAZ

Marulda Bitkisel Özellikler, Bazı Kalite Özellikleri ve Elementler Arasındaki İlişkilerin Belirlenmesi

BEYHAN KİBAR

Organik Kestane Kabağı Yetiştiriciliğinde Farklı Budama Uygulamalarının Verim ve Kalite Üzerine Etkisi

HARUN ÖZER, AYSUN PEKŞEN

Bolu İli Patates Üretim Alanlarında Bitki Paraziti Nematodların Belirlenmesi

Mustafa İMREN

Assessment of Mineral Content Variations for Biofortification of the Bean Seed

MEHMET ZAHİT YEKEN, Hacer AKPOLAT, TOLGA KARAKÖY, VAHDETTİN ÇİFTÇİ

Bursa Bölgesinde Faaliyet Gösteren Üç Adet Broyler İşletmesinin Karbon Ayak İzinin Tahminlenmesi

İLKER KILIÇ, BÜŞRA YAYLI, Aydın ELEKBEROV

Orta Karadeniz Bölgesi’nden Toplanan Kaldırayak (Trachystemon orientalis (L.) G. Don.) Genotiplerinin Morfolojik Karakterizasyonu

Mehtap ÖZBAKIR ÖZER, BEYHAN KİBAR