Fırat Doğan, Yaşar Ergün, Seval Bilge Dağalp, Veysel Soydal Ataseven

Doğu Akdeniz bölgesinde küçük ruminant lentivirus enfeksiyonlarının serolojik ve moleküler yöntemlerle araştırılması

Amaç: Yapılan bu çalışma ile keçi ve koyun işletmelerinden alınan örneklerde küçük ruminant lentivirus enfeksiyonlarının varlığının araştırılması amaçlandı. Gereç ve Yöntem: Bu çalışmada Doğu Akdeniz bölgesinden (Hatay, Kahramanmaraş ve Osmaniye) 2015-2017 yılları arasında toplanan halk elindeki keçi ve koyun işletmelerinden 6 ay ve üzeri yaştaki 260 koyun ve 440 keçi olmak üzere toplam 700 hayvandan alınmış lökosit ve kan serum örnekleri kullanıldı. Küçük ruminant lentivirus varlığının ortaya konulması için serolojik (ELISA) ve moleküler yöntem (PCR) testleri kullanıldı. Bulgular: ELISA ve/veya PCR testleri sonuçlarına göre koyunlarda %9,62 (25/260), keçilerde %9,32 (41/440) ve tüm hayvanlarda %9,43 (66/700) oranında pozitiflik tespit edildi. Ayrıca gag gen bölgesinin kısmi dizin analizi sonucunda hem koyunlarda hem de keçilerde küçük ruminant lentiviruslarının B genotipinin varlığı tespit edildi. Öneri: Sonuç olarak Doğu Akdeniz (Hatay, Kahramanmaraş, Osmaniye) bölgesinde küçük ruminant lentiviruslarının yakın geçmişteki bölgedeki durumu ortaya konulmuş oldu. Bu çalışmada küçük ruminant lentivirus enfeksiyonlarının teşhisi ve sürü bazlı tam eradikasyonu için ELISA ve PCR testlerinin birlikte kullanılması gerektiği kanısına varıldı. Ayrıca moleküler çalışmaların arttırılması, farklı gen bölgelerine ve tam genom analizlerine yönelik detaylı araştırmaların da yapılarak farklı alt tiplerin ortaya konulması, böylece ülkede sirküle olan alt tiplerin belirlenmesi önemli olabilecektir.

Investigation of small ruminant lentivirus infections by serological and molecular methods in Eastern Mediterranean region

Aim: The aim of this study was to investigate the presence of small ruminant lentivirus infections in samples taken from goat and sheep farms. Materials and Methods: In this study, leukocyte and blood serum samples were taken from a total of 700 animals, including 260 sheep and 440 goats aged 6 months and over, from public-owned goats and sheep farms collected from the Eastern Mediterranean region (Hatay, Kahramanmaraş and Osmaniye) between 2015-2017 year. Serologic (ELISA) and molecular method (PCR) tests were used to reveal the presence of small ruminant lentivirus. Results: According to the results of ELISA and / or PCR tests, positivity was detected at a rate of 9.62% (25/260) in sheep, 9.32% (41/440) in goats and 9.43% (66/700) in all animals. In addition, as a result of the partial sequence analysis of the gag gene region, the presence of the B genotype of small ruminant lentivirus was detected in both sheep and goats. Conclusion: As a result, the situation of small ruminant lentiviruses in the Eastern Mediterranean (Hatay, Kahramanmaraş, Osmaniye) region in the recent past has been revealed. In this study, it was concluded that ELISA and PCR tests should be used together for the diagnosis of small ruminant lentivirus infections and complete herd-based eradication. In addition, it may be important to increase molecular studies, to reveal different subtypes by conducting detailed researches on different gene regions and full genome analysis, thus determining the subtypes circulating in the country

PDF

___

Adams DS, Klevjer-Anderson P, Carlson JL, McGuire TC, et al., 1983. Transmission and control of caprine arthritis-encephalitis virus. Am J Vet Res, 44, 1670–1675.
Adams DS, Oliver RE, Ameghino E, DeMartini JC, et al., 1984. Global survey of serological evidence of caprine arthritisencephalitis virus infection. Vet Rec, 115, 493-495.
Akkan HA, Karaca M, Tütüncü M, Keles I, et al., 2009. Investigation of the seroprevalance of maedi-visna in the region of Van using Elisa and histopathological findings. JAVA-MJ, 8(8), 1595-1598.
Albayrak H, Yazici Z, Okur-Gumusova S, Ozan E 2012. Maedivisna virus infection in Karayaka and Amasya Herik breed sheep from provinces in northern Turkey. Trop Anim Health Prod, 44(5), 939-41.
Ameen PM, 2016. Van ili ve çevresinde Visna-MAedi Virus (VMV) ve Bordes Disease Virus (BDV) enfeksiyonlarının seroprevalansı. Yüksek Lisans Tezi. Yüzüncü Yıl Üni. Sağlık Bilimler Enstitüsü, Van, Türkiye.
Arık C, 2013. Afyonkarahisar ili ve çevresinde Visna-Maedi Virus enfeksiyonunun klinik ve serolojik olarak araştırılması. Yüksek Lisans Tezi, Afyon Kocatepe Üni. Sağlık Bilimler Enstitüsü. Afyonkarahisar, Türkiye.
Aslantaş Ö, Pınar D, Güngör B, 2002. Hatay yöresinde maedi-visna enfeksiyonunun serolojik olarak araştırılması. Vet Hek Mikrob Derg, 2(2), 31-34.
Bertolotti L, Mazzei M, Puggioni G, Carrozza ML, et al., 2011. Characterization of new small ruminant lentivirus subtype B3 suggests animal trade within the Mediterranean Basin. Gen Virol, 92(8), 1923-1929.
Brodie SJ, de la Concha-Bermejillo A, Snowder GD, DeMartini JC, 1998. Current concepts in the epizootiology, diagnosis, and economic importance of ovine progressive pneumonia in North America. Small Rumin Res, 27,1–17.
Burgu İ, Toker A, Akça Y, Alkan F, et al., 1990. Türkiye’de Visna-Maedi enfeksiyonunun serolojik olarak araştırılması. AÜ Vet Fak Derg, 37(3), 538-553.
Burgu İ, Akça Y, Alkan F, Özkul A, et al., 1994. Antibody prevalence of Caprine Arthritis Encephalitis Virus (CAEV) in goats in Turkey. Dtsch Tierarzti. Wschr 101, 390-391.
Cimtay İ, Keskin O, Şahin T, 2004. Şanlıurfa yöresinde koyun ve keçilerde bazı lentivirus enfeksiyonlarının araştırılması. Uludag Univ J Fac Vet Med, 23 (1-2-3), 33-38.
Clements JE, Gdovin SL, Montelaro RC, Narayan O, 1988. Antigenic Variation in Lentiviral Diseases. Ann Res Immunol, 6,139-59.
Clements JE, Wall RJ, Narayan O, Hauer D, et al., 1994. Development of Transgenic Sheep That Express the Visna Virus Envelope Gene. Virology 200, 370-80.
Chebloune Y, Sheffer D, Karr BM, Stephens E, et al., 1996. Restrictive type of replication of ovine/caprine lentiviruses in ovine fibroblast cell cultures. Virology, 222, 21-30.
Cork LC, Hadlow WJ, Crawford TB, Gorham JR, et al., 1974. Infectious leukoencephalomyelitis of young goats. J Infect Dis, 129(2), 134-141.
Cork LC, Narayan O, 1980. The pathogenesis of viral leukoencephalomyelitis-arthritis of goats. I. Persistent viral infection with progressive pathologic changes. Lab Invest, 42, 596-602.
Crawford T, Adams DS, Cheevers WP, Cork LC, 1980. Chronic arthritis in goats caused by a retrovirus. Science, 207, 997- 999.
Cutlip RC, Jackson TA, Laird GA, 1977. Immunodiffusion test for ovine progressive pneumonia. Am J Vet Res, 38, 1081– 1084.
Dawson M, 1987. Pathogenesis of Maedi-Visna Virus. Vet Rec, 120, 451-454.
Garey N, Dalziel RG, 1993. The Biology of Maedi-Visna VirusAn Overview. Br Vet J, 149, 437-54.
Granoff A, Webster RG, 1999. Encyclopedia of Virology. Second Edition. 223-229. Gürçay M, Parmaksız A, 2013. An Investigation of Visna-Maedivirus Infection in Şanlıurfa Province, Southeast Anatolia, Turkey. AVKAE Derg, 3(1), 46-50
Karaoğlu T, Alkan F, Burgu I, 2003. Küçük Aile işletmelerindeki Koyunlarda Maedi-Visna Enfeksiyonunun Seroprevalansı, AÜ Vet Fak Derg, 50(2), 123-126.
Karapınar BZ, 2010. Keçilerde caprine arthritis-encephalitis virus (CAEV) enfeksiyonunun kan ve süt örneklerinde ELISA ve PCR teknikleri ile tanısı ve yerel virusların moleküler karakterizasyonu. Doktora Tezi. Ankara Üni. Sağlık Bilimler Enstitüsü. Ankara, Türkiye.
Knight AP, Jokinen MP, 1982.Caprine arthritis-encephalitis. Compend Cont Educ Pract Vet, 4, 263-269.
Konishi M, Tsuduku S, Haritani M, Murakami K, et al., 2004. An epidemic of caprine arthritis encephalitis in Japan: Isolation of the virus. J Vet Med Sci, 66(8), 911-917.
Kumar S, Stecher G, Tamura K, 2016. MEGA7: molecular evolutionary genetics analysis version 7.0 for bigger datasets. Molecular biology and evolution 33(7), 1870-1874.
Kwang J, Torres J, 1994. Oligopeptide-based enzyme immunoassay for ovine lentivirus antibody detection. J Clin Microbiol, 32, 1813–1815.
Minguijón E, Reina R, Pérez M, Polledo L, et al., 2015. Small ruminant lentivirus infections and diseases. Vet Mic, 181(1-2), 75-89.
Muz D, 2009. Maedi- Visna enfeksiyonunun tanısında PCR tekniğinin kullanımı ve yerel virusların moleküler karakterizasyonu. Doktora Tezi. Ankara Üni, Sağlık Bilimler Enstitiüsü, Ankara, Türkiye.
Muz D, Oguzoglu TC, Rosati S, Reine R, Bertolotti L, et al., 2013. First Molecular Characterization of Visna/Maedi Viruses from Naturally Infected Sheep in Turkey. Arch Virol, 1583, 559-570,
Narayan O, Clements JE, 1989. Biology and pathogenesis of lentiviruses. J Gen Virol, 70, 1617–1639. OIE, 2017. Terrestrial Manual. Chapter 2.7.2/3. Caprine arthritis-encephalitis & Maedi-Visna
Oliver R, Carhcart A, Mcniven R, Poole W, et al., 1984. Transmission of caprine arthritis encephalitis virus to sheep. New Zealand Vet Journal, 32 (11), 199-200.
Özkan VC, 2012. Kronik solunum sistemi problemleri olan keçi sürülerinde caprine arthritis encephalitis virus (CAEV) enfeksiyonunun rolünün araştırılması. Yüksek Lisans Tezi. Afyon Kocatepe Üni. Sağlık Bilimler Enstitüsü. Afyonkarahisar, Türkiye.
Palsson PA, 1976. Maedi and visna in sheep. Front Biol, 44:17–43.
Perk K, Yaniv A, Gazit A, DeMartini JC, 1996. Evaluation of vaccines for ovine lentivirus infection. AIDS research and human retroviruses, 12(5), 425-426.
Peterhans E, Greenland T, Badiola J, Harkiss G, et al., 2004. Routes of transmission and consequences of small ruminant lentiviruses (SRLVs) infection and eradication schemes. Vet Res, 35(3), 257-274.
Ramírez H, Reina R, Amorena B, Andrés DD, et al., 2013. Small ruminant lentiviruses: genetic variability, tropism and diagnosis. Viruses, 5(4), 1175-1207.
Sanchez AB, Rodriguez D, Garzon A, Amorena B et al., 2002 Visna/maedi virus Env protein expressed by a vaccinia virus recombinant induces cell-to-cell fusion in cells of different origins in the apparent absence of Env cleavage: Role of glycosylation and of proteoglycans. Arch Virol, 147, 2377–2392.
Shah C, Huder JB, Böni J, Schönmann M, et al., 2004. Direct evidence for natural transmission of small-ruminant lentiviruses of subtype A4 from goats to sheep and vice versa. J Virol, 78 (14), 7518-7522.
Sıhvonen,L, 1980. Studies on Transmission of Maedi-Visna Virus in Lambs. Acta Vet Scand, 20, 1-10.
Smith MC, Sherman DM, 1994. Goat Medicine. Lea & Febiger Philadelphia, 73-79, 135-138.
Stamp JT, 1980, Slow Virus Infections of the Nervous System of Sheep. Vet Rec, 107, 529-30.
Tan MT, Alkan F, 2002. Türkiye’de Maedi-Visna Enfeksiyonunun Seroepidemiyolojisi ve Virus İzolasyonu. AÜ Vet Fak Derg, 49, 45-50.
Ün H, Özgünlük İ, Çabalar M, 2018. Şanlıurfa Yöresinde Maedi-Visna Virus (MVV) Enfeksiyonunun Serolojik Olarak Araştırılması. Harran Üniv Vet Fak Derg, 7(2), 144-148.
Yavru S, Şimşek A, Kale M, Levent O, 2001. Comparision of AGID and ELISA tests for serodiagnosis of Caprine Arthritis –Encephalitis Virus (CAEV) infection in goats in Turkey. X.International Symposium of Veterinary Laboratory Diagnosticians and OIE Seminar on Biotecnology. Salsomaggiore- Parma, Italy, 4-7 July
Yavru S, Simsek A, Bulut O, Kale M, 2002. Koyunlarda maedi-visna virus (MVV) enfeksiyonu üzerine serolojik araştırma. 5. Ulusal Vet Mikrobiyoloji Kong 24-26 Eylül 2002, 114-115.
Yılmaz H, Gürel A, Özgür Y, Turan N, et al., 2002. Abottoir study of maedi-visna virus infection in Turkey. Vet Rec, 151 (12): 358-360.
Zanoni RG, 1998. Phylogenetic analysis of small ruminant lentiviruses. J Gen Virol, 79, 1951-1961.