Maxma 14 kiraz anacının in vitro üretimi

Bu araştırmada, P. mahaleb x P. avium melezi olan MxM klonlarından olan MaxMa 14 kiraz anacının doku kültürü ile çoğaltma olanakları araştırılmıştır. Sürgün uçları, farklı hormon tipi ve konsantrasyonu içeren 18 farklı MS (Murashige-Skoog) besin ortamında kültüre alınmıştır. Genel olarak çoğalma ve gelişme üzerine GA3 düşük konsantrasyonda her hangi bir etkide bulunmamıştır. Ancak, konsantrasyonun 0,25 mg $l^{-1}$ olması çoğalmanın azalmasına neden olmuştur. Oksin olarak IB A veya NAA arasında önemli bir farklılık olmazken, bu hormonların konsantrasyonlarının 0,1 mg $l^{-1}$ olması, 0,25 veya 0,5 mg $l^{-1}$ olmasına göre daha olumlu sonuç vermiştir. En yüksek köklenme 4 $mu$ M IB A / NAA içeren MS ortamında gerçekleşmiştir. Ayrıca, besin ortamlarına dikimden önce, in vitro sürgünlerin NAA çözeltisine batırılmaları köklenmeyi arttırmıştır. Köklü in vitro bitkilerin dış ortama aktarılması sırasında kullanılabilecek en iyi ortam olarak torf ve harç bulunmuştur.

Anahtar Kelimeler:

çoğaltma, benziladenin, giberellik asit, NAA, IBA, bitki büyüme düzenleyicileri, anaçlar, kiraz, in vitro, doku kültürü, yetiştirme yöntemleri, büyüme ortamı, köklenme, filiz

In vitro propagaton of maxma 14 sweet cherry rootstock

In this study, the possibilities of propagation of the one of the MxM clones cherry rootstocks MaxMa 14 by tissue culture was investigated. Shoot tips of MaxMa 14 were cultured on 18 different MS (Murashige-Skoog) medium containing different kinds of hormones and concentrations. In general, GA3 remained quite Ineffective in the development of newly formed shoots, but higher concentration (0.25 mg $l^{-1}$) 'was affected negatively. There was no significant difference between the two auxins IBA and NAA used, however concentrations of 0.1 mg $l^{-1}$ gave better results then 0.25 or 0.5 mg $l^{-1}$. The highest rooting was obtained on MS medium with the 4 $mu$M IBA or NAA, Rooting was improved by immersing in vitro shootlets to NAA solution prior to rooting medium. Peat and soil-sand-manure mixture were the most effective media in acclimatization of rooted in vitro shootlets to outside conditions.

Keywords:

propagation, benzyladenine, gibberellic acid, NAA, IBA, plant growth regulators, rootstocks, cherries, in vitro, tissue culture, cultural methods, growing media, rooting, shoots,

PDF

___

Aksoy, U. ve S. Hepaksoy. 2004. Seçilmiş üstün nitelikli Sarılop incir klonlarının çoğaltılması üzerinde araştırmalar. Ege Ü. Bilimsel Araştırmalar Koordinatörlüğü 2000 ZRF 016 no'lu Proje Sonuç Raporu. Bornova, İzmir.
Borkowska, B., and J. Szczerba. 1991. Influence of different carbon sources on invertase activity and growth of sour cherry (Prunus cerasus L.) shoot cultures. Journal of Experimental Botany 240 (42): 911-915.
Dunston, A. I. 1981. Transplantation and post-transplantation of micropropagated tree-fruit rootstocks. Intern. Plant prop. Soc. Combined Proa, 31: 39-45.
Goudarzi, R., A. Majedi, A. R. Talaie, and M. Mostafavi. 1997. Micropropagation of cherry rootstock (Prunus avium ev F12/1) by shoot tip culture. Iranian Journal of Agricultural Sciences, 28 (3): 133-143.
Hammatt, N., and N. J. Grant. 1993. Apparent rejuvenation of mature wild cherry (Prunus avium L.) during micropagation. Journal of Plant Physiology. 141 (3): 341-346.
Iezzoni, A., Schmidt, H. and Albertini, A., 1991. Cherries (Prunus). Acta Horticulturae, 290-III: 111-173.
Jiangang, H. and Jishan, G., 1994. A study on tissue culture of Fiats carica. Journal of Nanjing Forestry University 18 (3): 73-76.
Köksal, İ., 1979. Anaç ve Çeşit Arasındaki Etkileşmenin Meyve Yetiştiriciliğindeki Önemi. A.Ü.Z.F. Yayınları. No. 702, Derlemeler, 21. Ankara.
Morini, S., Sciutti, and P. Fortuna. 1992. In vitro growth response of Primus cerasifera shoots as influenced by different light-dark cycles and sucrose concentrations. Plant Cell, Tissue and Organ Culture, 28 (3): 245-248.
Murashige, T. and F. Skoog. 1962. A revised medium for rapid growth and bioassays with tabacco tissue culture. Physiol Plant., 15: 473-497.
Muriithi, L. M., T. S. Rangan, and B.. H. Waite. 1982. In vitro propagation of fig through shoot tip culture. HortScience, 17 (1): 86-87.
Paul, L. and W. Feucht. 1985. Rooting sweeting sweet and sour cherry cultivars and clones in vitro. Mitteilungen Klosterneuburg. Rebe und wein, 35 (2): 69-74.
Phillion, B. J., J. deWitt, and W. R. Bunting. 1983. Propagation of juvenile scots pine cuttings under a 24-hour photoperiod. Tree Planters' Notes. 34: 39-42.
Ranjit, M., and D. E. Kester. 1988. Micropropagation of cherry roktstocks. II. Invigoration and enhanced rooting of 46-1. Mazzard by co-culture with colt.. J. Amer. Soc. Hort. Sci. 113 (1): 150-154.
Sauer, A. 1985. In vitro propagation of Prunus avium L. and storage of in vitro derived plantlets. Acta Horticulturae, 169: 351.
Skirvin, R. M. 1984. Stone Fruits. (Handbook of plant Cell Culture, Vol. 3 Crop Species, Ed. by P. V. Ammirato, D. A. Evans, W. R. Sharp and Y. Yamado) Mc. Millan Publishing Comp. NewYork.
Skirvin, R. M., and M. C. Chu. 1979. In vitro propagation of "Forever Yours" rose. Hort. Science 15(4): 608-610.
Smith, D. R., and T. A. Thorpe. 1975. Root initiation in cuttings of Pinus radiata seedlings. II. Growth regulator interactions. J. Exp. Bot. 26: 193-202.