Solanum melongena ve Solanum torvum’un Çiçek Tozu Çimlenme ve Canlılıklarının Belirlenmesi ve Solanum melongena x Solanum torvum Melezlerinden in vitro Koşullarda Bitki Elde Edilmesi

Dünyada ve Türkiye'de patlıcan üretimini kısıtlayan en önemli faktörlerin başında toprak kökenli fungal hastalıklar ve zararlılar gelmektedir. Fungal hastalıklardan Fusarium ve Verticillium, zararlılardan Nematod önemli verim kayıplarına neden olmaktadır. Bu patojenler hem açıkta hem de sera yetiştiriciliğinde zarar yapmakta, önemli verim kayıplarına neden olmaktadır. Mücadele yöntemleri içerisinde en güvenli yol dayanıklı çeşit veya anaç kullanmaktır. Her üç patojene dayanıklılığı sağlayan genler patlıcanın kültür formunda bulunmamakta, yabani akrabası olan Solanum torvum Sw'da mevcuttur. Ancak S. torvum'dan kaynaklanan uyuşmazlık nedeni ile türler arası melezleme gerçekleştirilememekte, doğal yollardan kültür formuna dayanıklılığı sağlayan genler aktarılamamaktadır. Türler arası melezlemelerde başarısızlığın nedenlerini anlamak için öncelikli olarak çiçek tozu canlılıkları ve çimlenme oranlarının tespit edilmesi gerekmektedir. Bu araştırmada, Aydın siyahı ve Kemer çeşitleri ile Solanum torvum yabani formunda çiçek tozu canlılıkları ve çimlenme oranları tespit edilmiştir. Çiçek tozu canlılık oranları TTC testi yöntemi kullanılarak belirlenmiştir. Petride agar yöntemi ise çiçek tozu çimlenme oranlarının belirlenmesinde kullanılmıştır. In vitro koşullarda melez bireyler elde etmek amacıyla Kemer ve Aydın Siyahı çeşitleri ile S. torvum arasında resiprokal melezlemeler yapılmıştır. Melezlemeden 25, 30 ve 35 gün sonra meyveler in vitro koşullarda açılarak embriyo kurtarma tekniği uygulanmış ve elde edilen embriyo sayısı ve bitkiye dönüşüm oranları belirlenmiştir.

Determination of Pollen Viability and Germination of Solanum melongena ve Solanum torvum and Obtaining Plants from Solanum melongena x Solanum torvum Hybrids Using in vitro Techniques

The most important factors those are limiting the production of eggplant in Turkey and the world are soil borne fungal diseases and pests. Fusarium and Verticillium as fungal diseases and nematodes as pests cause significant yield losses. Those pathogens cause significant yield losses both in open field and greenhouse cultivation. The most efficient way to avoid those deases is using resistant varieties or rootstocks. Although resistant genes to all these three pathogenes do not exist in eggplant cultivars, wild eggplant, Solanum torvum Sw can contain them. . However interspecific crosses cannot be achieved because of the sexual incompatibility between Solanum torvum and Solanum melongena. Thus resistant genes cannot be transferred by classical breeding. For this purpose, in order to understand the reasons of the failure in interspecific crosses, polen viability and germination percentage should be determined as a priority. For this purpose, pollen viability and germination levels of Aydın siyahı and Kemer eggplant cultivars and one wild form (Solanum torvum) were determined. Pollen viability and polen germination percentage were determined by TTC and ‘agar in Petri’ methods, respectively. In vitro reciprocal crosses were made between Kemer and Aydın Siyahı cultivars in order to obtain hybrids. In this study, in vitro embryo rescue technique was used in 25, 30 and 35 days after pollination. The embryo number obtained and plants regenerated were recorded.

___

.Abak, K., Güler, H.,Y., Eti, S., 1993. Studies on the Pollen Viability and Germination Ability Estimation Techniques in Eggplant. Doğa Tr. Agric. Forestry.
Açıkgöz, N., 1990. Tarımda Araştırma ve Deneme Metotları (II. Basım). Ege Üniversitesi Ziraat Fakültesi. Yayın No: 478. Bornova, İzmir.
Ali, M., Matsuzoe, N., Okubo, N., Fujieda, K., 1992. Resistance of Non-tuberous Solanum to Root-knot Nematode. J. Japan Soc. Hort. Sci. 60(4):921-926.
Bletsos, F.A., Roupakias, D.G., Tsaktsira, M.L., Scaltsojannes, A.B., Thanassoulopoulos, C.C., 1998. Interspecific hybrids between three eggplant (Solanum melongena L.) cultivars and two wild species (Solanum torvum Sw. and Solanum sisymbriifolium Lam.). Plant Breeding 117, 159–164.
Boyacı, HF, Oğuz, A, Ünlü, M, Eren, A, Topçu, V, Erkal, S. 2009. Partenokarp ve Partenokarp Olmayan Patlıcanların Bazı Vejetatif ve Generatif Gelişme Parametleri Arasında İlişkiler. Derim Dergisi. Cilt 26, Sayı 2: 28-39, ISSN 1300- 3496.
Collonnier, C., Fock, I., Kashyap, V., Rotino, G.L., Daunay, M.C., Lian, Y., Mariska, I.K., Rajam, M.V., Servaes, A., Ducreux G., Sihachakr D., 2001. Applications of Biotechnology in Eggplant. Plant Cell, Tiss. Org. Cult. 65(2): 91-107.
Çürük, S., 2010. Patlıcanda Türler Arası Melez Tohumların İn Vitro Çimlendirilmesi. VIII. Sebze Tarımı Sempozyumu, YYÜ. Ziraat Fakültesi Bahçe Bitkileri Bölümü, 23-26 Haziran Van, s.564-568.
Ellialtıoğlu, Ş., 2010. Patlıcan Islahı. Ankara Üniversitesi Ziraat Fakültesi Bahçe Bitkileri Bölümü Ders Notları. http://www.agri.ankara.edu.tr/bahce/1099_patlican_islahi.pd f.
Hatipoğlu, R., 1993. Biyoteknolojiye Giriş. Çukurova Ünv. Ziraat Fak. Ders Kitabı, No:129.
Kalloo, Dr., 1986. Vegetable Breeding Volume III, CRC Press, Inc. Boca Raton, Florida 136-140.
Kashyap, V., Vinod Kumar, S., Collonnier, C., Fusari, F., Haicour, R., Rotino, G.L., Sihachakr, D., Rajam, M.V., 2003. Biotechnology of eggplant. Scientia Hort. 97(1): 1-25.
Kumar, P.A., Mandaokar, A.D., Sharma, R.P., 1998. Genetic engineering for the crop improvement of eggplant (Solanum melongena L.) . AgBiotech Newsand Information, 10:10, 329-332.
Luc, M., Sikera, R. A., Bridge, J., 2005. Reflections on Nematology in Subtropical and Tropical Agriculture. Plant Parasitic Nematodes in Subtropical and Tropical Agriculture 2nd Edition (eds M. Luc, R. A. Sikera, J. Bridge).
Magioli, C., Mansur, E. 2005. Eggplant (Solanum melongena L.): tissue culture, genetic transformation and use as an alternative model plant. Acta Bot. Bras. 19(1): 139-148. Monma, S., Sato, T., ve Matsunaga, H., 1996. Evaluation of resistance to bacterial, fusarium, and Verticillium wilt in eggplant and eggplant-related species collected in Ghana. Capsicum and Eggplant Newslatter, 16:71-72.
Murashige, T., and Skoog, F., 1962. A revised medium for rapid growth and bioassy with tobacco tissue cultures. Physiol. Plant, 15:473-497. Salam, M.A., Rashid, M.A., Rahman, M.A., Masud, M.A.T.,
Masum, A.S.M.H., Hossain, M.M., 2002. Performance of Some Grafted Eggplant Genotypes on Wild Solanum Root Stocks Against Root-Knot Nematode. Journal of Biological Sciences, 2(7):446-448.
Sekara, A., Cebula S., Kunicki E., 2007. Cultivated eggplants – origin, breeding objectives and genetic resources, a review. Folia Horticulturae Ann. 19/1, 97-114.
Toppino, L., Vale, G., Rotino, G. L., 2008. Inheritance of Fusarium wilt resistance introgressed from Solanum aethiopicum Gilo and Aculeatum groups into cultivated eggplant (S. melongena) and development of associated PCR-based markers. Mol. Breeding DOI 10.1007/s11032- 008-9170-x.
Yamakawa, K., Mochizuki, H., 1979. Nature and inheritance of Fusarium wilt resistance in eggplant cultivars and related wild Solanum species, Bull. Vegatable and Ornamental Crops, Station A (Yasai Shibenko Hokoku, A), No. 6:19