Bazı Orkide Türlerinin in vitro Simbiyotik Kültür Çalışmaları

Bu çalışmada Dactylorhiza iberica (Bieb. ex Willd.) Soó, Dactylorhiza umbrosa (Kar. et. Kir.) Soó ve Orchis palustris Jacquin türlerine ait in vitro kültüre alınmış tohumlardan protokorm ve sürgün oluşumları incelenmiştir. Simbiyotik kültürler, bitkilerin yumrularından izole edilen binükleik Rhizoctonia ve Rhizoctonia solani izolatları ile yulaf ortamı (YO) ve modifiye yulaf ortamından (MYO) oluşmaktadır. Protokorm ve sürgün oluşumunda en erken süre, sırasıyla, 42.67 gün ve 66 gün olarak YO’na ekilmiş olan D. umbrosa türünde belirlenmiştir. En yüksek protokorm gelişim ve en az kararan protokorm oluşum oranı sırasıyla % 60 oranında (YO) ve % 2.99 oranında (MYO) D. umbrosa türünden elde edilmiştir. Protokormlardan elde edilen sürgünler, en fazla YO’da gelişen D. iberica türünde % 35.04 olarak tespit edilmiştir. Tüm veriler, besi ortamlarında, binükleik Rhizoctonia izolatının kullanılması ile elde edilmiştir.

In vitro Symbiotic Culture Studies of Some Orchid Species

This study investigated the formation of protocorms and shoots from in vitro cultured seeds of Dactylorhiza iberica (Bieb. ex Willd.) Soó, D. umbrosa (Kar. and Kir.) Nevski, and Orchis palustris Jacquin. Culture conditions included binucleate Rhizoctonia and Rhizoctonia solani isolates, which were symbiotic cultures isolated from the tubers of these plants, and culture media consisting of an oat medium (OM) or a modified oat medium (MOM). The shortest times for protocorm and shoot development of D. umbrosa sowed in OM were 42.67 and 66 days, respectively. The highest rate of protocorm development and the lowest percentage of formation of darkened protocorms in D. umbrosa were 60% (in OM) and 2.99% (in MOM), respectively. The maximum percentage of shoots obtained from protocorms was 35.04% for D. iberica cultured in OM. All data were obtained using binucleate Rhizoctonia sp. inoculates in the nutrient media.

___

  • Weber R W S & Webster J (2001). Teaching techniques for mycology: 14. Mycorrhizal infection of orchid seedlings in the laboratory. Mycologist 15(2): 55-59
  • Vakkasoğlu F (1995). Orkidelerde mikorizal fungusların orkide tohumlarının çimlenmesi ve büyümeleri üzerine etkisi. Yüksek lisans tezi, Çukurova Üniversitesi Fen Bilimleri Enstitüsü (Basılmamış), Adana
  • Swarts N D & Dixon K W (2009). Terrestrial orchid conservation in the age of extinction. Annals of Botany 104(3): 543-556
  • Stewart S L, Zettler L W, Minso J & Brown P M (2003). Symbiotic germination and reintroduction of Spiranthes brevilabris Lindley, an endangered orchid native to Florida. Selbyana 24(1): 64-70
  • Stewart S L & Kane M E (2007). Symbiotic seed germination and evidence for in vitro mycobiont specificity in Spiranthes brevilabris (Orchidaceae) and its implications for species-level conservation. In Vitro Cellular & Developmental Biology-Plant 43(3): 178-186
  • Steinfort U, Verdugo G, Besoain X & Cisternas M A (2010). Mycorrhizal association and symbiotic germination of the terrestrial orchid Bipinnula fimbriata (Poepp.) Johnst (Orchidaceae). FloraMorphology, Distribution, Functional Ecology of Plants 205(12): 811-817
  • Shimura H & Koda Y (2005). Enhanced symbiotic seed germination of Cypripedium macranthos var. rebunese following inoculation after cold treatment. Physiologia Plantarum 123(3): 281-287
  • Sezik E (1984). Orkidelerimiz, Türkiye’nin Orkideleri. Sandoz Kültür Yayınları. No: 6, s. 166
  • Sebastián F, Vanesa S, Eduardo F, Graciela, T & Silvana S (2014). Symbiotic seed germination and protocorm development of Aa achalensis Schltr., a terrestrial orchid endemic from Argentina. Mycorrhiza 24(1): 35-43
  • Sazak A & Ozdener Y (2006). Symbiotic and asymbiotic germination of endangered Spiranthes spiralis (L.) Chevall. and Dactylorhiza osmanica (Kl.) Soó var. osmanica (endemic). Pakistan Journal of Biological Sciences 9(12): 2222-2228
  • Sazak A (2004). Bazı orkide türlerine ait tohumların simbiyotik ve asimbiyotik olarak çimlendirilmesi ve fide gelişimi. Yüksek lisans tezi, Ondokuz Mayıs Üniversitesi Fen Bilimleri Enstitüsü (Basılmamış), Samsun
  • Sathiyadash K, Muthukumar T, Murugan S B, Sathishkumar R & Pandey R R (2014). In vitro symbiotic seed germination of South Indian endemic orchid Coelogyne nervosa. Mycoscience 55(3): 183-189
  • Sari A O, Tutar M & Çiçek F (2011). Ege Tarımsal Araştırma Enstitüsü salep üretim çalışmaları. I. Salep Orkidesi Çalıştayı, 24-25 Mayıs, Kahramanmaraş, s. 65-86
  • Pereira O L, Kasuya M C M, Rollemberg C & Borges A C (2005). In vitro symbiotic seed germination of Oncidium flexuosum (Orchidaceae) by Rhizoctonialike mycorrhizal fungi. Revista Brasileira de Ciência do Solo 29(2): 199-206
  • Parmeter J R, Sherwood R T & Platt W D (1969). Anastomosis grouping among isolates of Thanatephorus cucumeris. Phytopathology 59(9): 1270-1278
  • Özkoç İ (1991). Serapias vomeracea (Burmfil.) Briq. Sub sp. laxiflora (Soo) Gölz et. Reinhard ve Orchis laxiflora Lam. (Orchidacea) tohumlarının simbiyotik ve asimbiyotik kültürlerde çimlenme ve gelişmesi üzerinde araştırılması. Doktora tezi, Ondokuz Mayıs Üniversitesi Fen Bilimleri Enstitüsü (Basılmamış), Samsun
  • Özdener Y (1994). Dactylorhiza urvilleana (Steudel) Bauman Künkele ve Dacytlorhiza iberica (Bieb. Ex Willd) Soo (Orchidaceae) türlerinin köklerinden fungusların izole edilmesi, bu türlere ait tohumların simbiyotik ve asimbiyotik kültür ortamlarında çimlenme ve gelişmesi üzerinde bir araştırma. Doktora tezi, Ondokuz Mayıs Üniversitesi Fen Bilimleri Enstitüsü (Basılmamış), Samsun
  • Ovando I, Damon A, Bello R, Ambrosio D, Albores V, Adriano L & Salvador M (2005). Isolation of endophytic fungi and their mycorrhizal potential for the tropical epiphytic orchids Cattleya skinneri, C. aurantiaca and Brassavola nodosa. Asian Journal of Plant Sciences 4(3): 309-315
  • Oğuz B, Sari A O & Bilgiç A (2005). Ege Bölgesi’nde Yayılış Gösteren Bazı Salep Orkidelerinin Üretim Olanaklarının Araştırılması. Tagem Proje Sonuç Raporu, Proje No: Tagem/Ta/02/02/03/010
  • Mitchell R B (1989). Growing hardy orchids from seeds at Kew. The Plantsman 1: 152-169
  • Masuhara G, Katsuya K & Yamaguchi K (1993). Potential for symbiosis of Rhizoctonia solani and binucleate Rhizoctonia with seed of Spiranthes sinensis var. amoena in vitro. Mycological Research 97(6): 746-752
  • Masuhara G & Katsuya K (1994). In situ and in vitro specificity between Rhizoctonia spp. and Spiranthes sinensis (Persoon) Ames. var. amoena (M. Bieberstein) Hara (Orchidaceae). New Phytologist 127(4): 711-728
  • Ingold C T & Hudson H J (1993). The Biology of Fungi, Sixth Edition (Chapman & Hall). London, pp. 224
  • Hudson H J (1986). Fungal Biology. Edward Arnold, London, pp. 298
  • Hayakawa S, Uetake Y & Ogoshi A (1999). Identification of symbiotic Rhizoctonias from naturally occurring protocorms and roots of Dactylorhiza aristata (Orchidaceae). Journal of the Faculty of Agriculture Hokkaido University 69(2): 129-141
  • Hajong S, Kumaria S & Tandon P (2013). Compatible fungi, suitable medium, and appropriate developmental stage essential for stable association of Dendrobium chrysanthum. Journal of Basic Microbiology 53(12): 1025-1033
  • Garrett S D (1981). Soil Fungi and Soil Fertility. 2nd. Edition, Perganon. Oxford, pp. 150
  • Esitken A, Ercisli S & Eken C (2005). Effects of mycorrhiza isolates on symbiotic germination of terrestrial orchids (Orchis palustris Jacq. and Serapias vomeracea subsp. vomeracea (Burm. f.) Briq.) in Turkey. Symbiosis 38(1): 59-68
  • Esitken A, Ercisli S, Eken C & Tay D (2004). Seed priming effect on symbiotic germination and seedling development of Orchis palustris Jacq. HortScience 39(7): 1700-1701
  • Clements M A, Muir H & Cribb P J (1986). A preliminary report on the symbiotic germination of European terrestrial orchids. Kew. Bulletin 41(2): 437-445
  • Clements M A & Ellyard R K (1979). The symbiotic germination of Australian terrestrial orchids. American Orchid Societly Bulletin 48: 810-816
  • Chutima R, Dell B, Vessabutr S, Bussaban B & Lumyong S (2011). Endophytic fungi from Pecteilis susannae (L.) Rafin (Orchidaceae), a threatened terrestrial orchid in Thailand. Mycorrhiza 21(3): 221-229
  • Chang D C-N & Chou L-C (2007). Growth responses, enzyme activities, and component changes as influenced by Rhizoctonia orchid mycorrhiza on Anoectochilus formosanus Hayata. Botanical Studies 48: 445-451
  • Burges A (1939). The defensive mechanism in orchid mycorrhizas. New Phytologist 38(3): 273-283
  • Bonnardeaux Y, Brundrett M, Batty A, Dixon K, Koch J & Sivasithamparam K (2007). Diversity of mycorrhizal fungi of terrestrial orchids: compatibility webs, brief encounters, lasting relationships and alien invasions. Mycological Research 111: 51-61
  • Beyrle H, Pennigsfeld F & Hock B (1985). Orchid mycorrhiza: Symbiotic propagation of the some Dactylorhiza species. Zeitscrift-fur-Mykologie 51(2): 185-198
  • Athipunyakom P, Manoch L, Piluek C, Artjariyasripong S & Tragulrung S (2004). Mycorrhizal fungi from Spathoglottis plicata and the use of these fungi to germinate seeds of S. plicata in vitro. Kasetsart Journal (Natural Sciences) 38(1): 83-93
  • Andersen F T & Rasmussen H N (1996). The Mycorrhizal Species Of Rhizoctonia, Rhizoctonia Species, Taxonomy, Molecular Biology, Ecology, Patology, And Disease Control (B. Sneh, S. Jabaji-Hare, S. Neate & G. Dijst). Kluwer Academic Publishers, Dordrecht. pp. 379-390
  • Aggarwal S & Zettler L W (2010). Reintroduction of an endangered terrestrial orchid, Dactylorhiza hatagirea (D. Don) Soo, assisted by symbiotic seed germination: First report from the Indian subcontinent. Nature and Science 8(10): 139-145
Tarım Bilimleri Dergisi-Cover
  • Yayın Aralığı: Yılda 4 Sayı
  • Yayıncı: Halit APAYDIN