KIRMIZI PANCAR (Beta vulgaris L.) BETALAİNLERİ ÜZERİNE TERMAL DESTEKLİ ULTRASONİK EKSTRAKSİYONUN ETKİSİ

Bu çalışmada, kırmızı pancarın (Beta vulgaris L.) betalainlerinin ultrasonik banyoda, farklı sıcalık ve sürelerde (40-800C, 5-210 dk) değişimi incelenmiştir. Sıcaklık derecesi (T), süre (t) ve Txt interaksiyonun betalainler, toplam fenolik madde (TFM), DPPH radikal süpürme aktivitesi (DPPH-RSA), Hunter L, a ve b değerleri üzerine etkisi önemli (P <0.001) bulunmuştur. Termal destekli ultrasonik ekstraksiyonun (TDUE), 600C-40 dk ve 800C-25 dk uygulamaları ile betalainlerin en yüksek değere ulaştığı, daha sonra artan sürelerin ise azalmalara neden olduğu belirlenmiştir. TDUE’nun 400C uygulamasında ise betalainlerin yavaş artış gösterdiği fakat bu artışın diğer proseslere (60-800C) ait değerlerin altında kaldığı tespit edilmiştir. Diğer taraftan, betalainlerin değişiminin TFM, DPPH-RSA ve Hunter L, a ve b değeri değişimi ile ilişkili olduğu ve TDUE koşullarında elde edilen matematiksel eşitliklerin (R2 =%84-87), betalainlerdeki değişime ait optimum koşulları belirlemede kullanılabileceği ortaya çıkmıştır.

THE EFFECT OF THERMAL ASSISTED ULTRASONIC EXTRACTION ON THE RED BEETROOT (Beta vulgaris L.) BETALAINS

In this study, the change of red beet (Beta vulgaris L.) betalains was investigated in ultrasonic bath at different temperature and times (40-800C, 5-210 min). The effect of temperature (T), time (t) and Txt interaction on betalaines, total phenolic matter (TPM), DPPH radical scavenging activity (DPPH-RSA), Hunter L, a and b values were significant (P <0.001). It was determined that maximum betalain values were reached at 600C-40 min and 800C-25 min of thermal assisted ultrasonic extraction (TAUE) then decreased with increasing time. In the 400C application of TAUE, betalaines increased slowly but remained below the values of other processes (60-800C). On the other hand, it has been found that the change of betalaines is related to TFM, DPPH-RSA and Hunter L, a and b value changes, and the mathematical equations (R2 = 84-87%) obtained in TDUE conditions can be used to determine the optimum conditions for betalains changes.

___

  • Amirasgari, N., Mirsaeedghazi, H. (2015). Microfiltration of red beet juice using mixed cellulose ester membrane J Food Process Pres, 39, 614-623.
  • Amirasgari, N., Mirsaeedghazi, H. (2016). Non-thermal production of natural betalain colorant concentrate from red beet extract by using the osmotic distillation. Nutr Food Sci Res, 3(2): 27-34.
  • Cai, Y., Sun, M., Schliemann, W., Corke, H. (2001). Chemical Stability and Colorant Properties of Betaxanthin Pigments from Celosia argentea, J Agric Food Chem, 49, 4429-4435.
  • Castellanos-Santiago, E., Yahia, E.M. (2008). Identification and quantification of betalains from the fruits of 10 mexican prickly pear cultivars by high-performance liquid chromatography and electrospray ionization mass spectrometry, J Agric Food Chem, 56, 5758–5764.
  • Cardoso-Ugarte, G.A., Sosa-Morales, M.E., Ballard, T., Liceaga, A., San Martin-Gonzalez, M.F. (2014). Microwave-assisted extraction of betalains from red beet (Beta vulgaris). LWT- Food Sci Tech, 59, 276-282.
  • Cemeroğlu, B. (2010). Gıda Analizleri, Gıda Teknolojisi Derneği Yayınları, No: 34, Ankara, 657 s., ISBN 978-975-98578-6-8.
  • Delgado-Vargas, F., Jiménez, A.R., Paredes-López, O. (2000). Natural pigments: Carotenoids, anthocyanins, and betalains characteristics, biosynthesis, processing, and stability, Crit Rev Food Sci Nutr, 40, 173–289.
  • Düzgüneş, O., Kesici, T., Gürbüz, F. (1987). Araştırma ve deneme metotları. Ankara Ünv. Yayın No:1021, 381s. Ankara.
  • Gengatharan, A., Dykes, G.A., Choo, W.S. (2015). Betalains: Natural plant pigments with potential application in functional foods, LWT - Food Sci Tech, 64, 645-649.
  • Gliszczyńska-Świglo, A., Szymusiak, H., Malinowska, P. (2006). Betanin the main pigment of red beet- molecular origin of its exceptionally high free radical scavenging activity, Food Addit Contam, 23(11): 1079-1087.
  • Herbach, K.M., Stinzing, F.C., Carle, R. (2004). Impact of thermal treatment on color and pigment pattern of red beet (Beta vulgaris L.) prepations. J Food Sci, 69(6): 491-498.
  • Khan, M.I., Giridhar, P. (2015). Plant betalains: Chemistry and biochemistry, Phytochemistry, 117, 267-295.
  • Khan, M.I. (2016). Stabilization of betalains: A review, Food Chem, 197: 1280-1285
  • Khatabi, O., Hanine, H., Elothmani, D., Hasib, A. (2016). Extraction and determination of polyphenols and betalain pigments in the Moroccan Prickly pear fruits (Opuntia ficus indica), Arab J Chem, 9(1): 278-281.
  • Mc Guire, R.G. (1992). Reporting of objective color measurements. Hortscience, 27(12): 1254-1255.
  • Ninfali, P., Angelino, D. (2013). Nutritional and functional potential of Beta vulgaris and rubra. Fitoterapia, 89, 188-199.
  • Pérez-Loredo, M.G., García-Ochoa, F., Barragán Huerta B.E. (2016). Comparative analysis of betalain content in stenocereus stellatus fruits and other cactus fruits using principal component analysis, Int J Food Proper, 19, 326-338.
  • Ravichandran, K., Thaw Saw, N.M.M., Mohdaly, A.A.A., Gabr, A.M.M., Kastell, A., Riedel, H., Cai, Z., Knorr, D., Smetanska, I. (2013). Impact of processing of red beet on betalain content and antioxidant activity, Food Res Int, 50, 670-675.
  • Roy, K., Gullapalli, S., Roy Chaudhuri, U., Chakraborty, R. (2004). The use of a natural colorant based on betalain in the manufacture of sweet products in India, Int J Food Sci Tech, 39, 1087-1091.
  • Sıngleton, V.L., Rossi, J.A.Jr. (1965). Colorimetry of total phenolics with phophomolybdic-phosphotungustic acid reagents. Am J Enol Vitic, 6:144-158.
  • Stintzing, F.C., Carle, R. (2004). Functional properties of anthocyanins and betalains in plants, food, and in human nutrition, Trends Food Sci Technol, 15(1): 19-38. Strack, D., Vogt, T., Schliemann W. (2003). Recent advances in betalain research, Phytochemistry, 62, 247-269.
  • Swarna, J., Lokeswari, T.S., Smita, M., Ravindhran, R. (2013). Characterisation and determination of in vitro antioxidant potential of betalains from Talinum triangulare (Jacq.) Willd, Food Chem, 141(4): 4382-90.
Gıda-Cover
  • ISSN: 1300-3070
  • Yayın Aralığı: Yılda 6 Sayı
  • Başlangıç: 1976
  • Yayıncı: Prof. Dr. İbrahim ÇAKIR
Sayıdaki Diğer Makaleler

YÜKSEK BASINÇ UYGULANMIŞ ETLE HAZIRLANAN ÇİĞ KÖFTELERİN BAZI FİZİKOKİMYASAL VE MİKROBİYOLOJİK KALİTE PARAMETRELERİNİN DEĞERLENDİRİLMESİ

Sinan UZUNLU

BAZI TATLANDIRICI VE ŞEKERLERİN ZAYIFLATILMIŞ TOPLAM YANSIMA-FOURIER DÖNÜŞÜMLÜ KIZILÖTESİ (ATR-FTIR), YAKIN KIZILÖTESİ (NIR) VE RAMAN SPEKTROSKOPİSİ İLE HIZLI TANIMLANMASI

Burcu GUVEN, Serap DURAKLİ-VELİOGLU, İsmail Hakki BOYACİ

TAZE KARİDESLERİN RAF ÖMRÜNÜN UZATILMASINDA SOĞAN KABUĞU EKSTRAKTININ ETKİSİ

İlknur UÇAK

LİMON (Citrus limon) VE ACI PORTAKAL (Citrus aurantium) UÇUCU YAĞLARININ 4±1°C’DE MUHAFAZA EDİLEN GÖKKUŞAĞI ALABALIKLARININ (Oncorhynchus mykiss) MİKROBİYOLOJİK KALİTESİ ÜZERİNE ETKİLERİ

Emine ÖZPOLAT

KIRMIZI PANCAR (Beta vulgaris L.) BETALAİNLERİ ÜZERİNE TERMAL DESTEKLİ ULTRASONİK EKSTRAKSİYONUN ETKİSİ

Atilla ŞİMŞEK

SOĞUK PRES FINDIK POSALARINDAN ÜRETİLMİŞ TRİPTİK PEPTİTLERİN IN VITRO ACE İNHİBE EDİCİ AKTİVİTELERİ ÜZERİNE ÖN INCELEMELER

İbrahim GÜLSEREN, Bilal ÇAKIR

NAR KABUĞUNDAN ANTİMİKROBİYAL VE ANTİOKSİDAN AKTİVİTEYE SAHİP FENOLİK BİLEŞİKLERİN EKSTRAKSİYON KOŞULLARININ OPTİMİZASYONU

Tuğba DEMİR, Özlem AKPINAR, Haki KARA, Hüseyin GÜNGÖR

FARKLI KAYNAKLARDAN İZOLE EDİLMİŞ LAKTİK ASİT BAKTERİLERİNİN EKZOPOLİSAKKARİT ÜRETİMİ VE KOLESTEROL ASİMİLASYON YETENEKLERİNİN BELİRLENMESİ

Duygu ALP, Hakan KULEAŞAN

FARKLI MİKRODALGA GÜÇLERİNİN KÖPÜK KURUTMA YÖNTEMİ İLE KURUTULMUŞ YUMURTA BEYAZI TOZLARININ KURUMA KİNETİĞİ VE TOZ ÜRÜN ÖZELLİKLERİ ÜZERİNE ETKİSİ

Gülşah ÇALIŞKAN KOÇ, Burcu ÇABUK

PROBİYOTİK BİTTER ÇİKOLATA ÜRETİMİNDE MİKROENKAPSÜLE LACTOBACILLUS RHAMNOSUS KULLANIMI

Emel ÜNAL TURHAN, Zerrin ERGİNKAYA, Ezgi SARIKODAL, Serya Tülin ÖZKÜTÜK, Gözde KONURAY