Doğal enfekte bir sürüde ELISA ve nested-PCR ile sığırların lösemi virüs enfeksiyonunun belirlenmesi

Bu çalışmada, doğal enfekte bir sürüde sığırların lösemi virüs (Bovine leukemia virus; BLV) enfeksiyonunun varlığı nested-polimeraz zincir reaksiyonu ve iki farklı ELISA kitiyle araştırılmıştır. Bu sürüde bulunan 65 hayvandan alınan serum örnekleri 2 farklı ELISA, kan örnekleri ise nested- PCR ile test edildi. Her iki ELISA sonucunda, 65 hayvanın 14 (% 21,5) tanesinde BLV seropozitifliği belirlendi. Nested-PCR neticesinde ise; toplam 16 (% 24,6) örnekte BLV proviral DNA varlığı tespit edildi. Çalışmanın bulguları, ELISA’nın avantajlarına rağmen, BLV’nin eradikasyonu programında tek başlarına serolojik testlerin yetersiz kalabileceği verilerini destekler niteliktedir.

Determination of bovine leukemia virus ınfection by ELISA and nested-PCR in A naturally ınfected cattle herd

In this study, the presence of bovine leukemia virus (BLV) infection in a naturally infected cattle herd was determined using nested-polymerase chain reaction (Nested-PCR) and enzyme linked immunosorbent assay (ELISA). Serum and blood samples from 65 animals in this herd were tested for BLV with nested-PCR and two different ELISA kits. According to ELISA examinations, 14 (21,5 %) of 65 animals were found as BLV seropositive. In the result of nested-PCR, 16 (24,6 %) of 65 samples were found positive for BLV proviral DNA. The findings of the present study suggest that despite several advantages of ELISA, serological tests when they were used alone might not be adequate in BLV eradication programmes.

___

  • 1. Zhao X, Buehring GC. Natural genetic variations in bovine leukemia virus envelope gene: possible effects of selection and escape. Virology 2007; 366: 150-165.
  • 2. Coulston J, Daniel RC, Lavin MF. Integration of bovine leukaemia virus at all stages of enzootic bovine leucosis. Arch Virol 1991; 119: 13-23.
  • 3. Gutierrez SE, Dolcini GL, Arroyo GH, et al. Development and evaluation of a highly sensitive and specific blocking enzyme-linked immunosorbent assay and polymerase chain reaction assay for diagnosis of bovine leukemia virus infection in cattle. Am J Vet Res 2001; 62: 1571-1577.
  • 4. Martin D, Arjona A, Soto I, et al. Comparative study of PCR as a direct assay and ELISA and AGID as indirect assays for the detection of bovine leukaemia virus. Vet Med B Infect Dis Vet Public Health 2001; 48: 97-106.
  • 5. Eaves FW, Molloy JB, Dimmock CK, Eaves LE. A field evaluation of the polymerase chain reaction procedure for the detection of bovine leukaemia virus proviral DNA in cattle. Vet Microbiol 1994; 39: 313-321.
  • 6. Fechner H, Kurg A, Geue L, et al. Evaluation of polymerase chain reaction (PCR) application in diagnosis of bovine leukaemia virus (BLV) infection in naturally infected cattle. Zentralbl Veterinarmed B 1996; 43: 621-30.
  • 7. Murtaugh MP, Lin GF, Haggard DL, Weber AF, Meiske JC. Detection of bovine leukemia virus in cattle by the polymerase chain reaction. J Virol Methods 1991; 33: 73- 85.
  • 8. Dusty WN, Tyler JW, Kleiboeker SB, Stoker A. Use of a polymerase chain reaction assay to detect bovine leukosis virus in dairy cattle. JAVMA 2003; 222: 983-985.
  • 9. Yılmaz K, Gül Y, Özdemir H, Bolat Y. Elazığ ve çevresindeki sığırlarda enzootik sığır lökozunun araştırılması Turk J Vet Anim Sci 1997; 21: 115-123.
  • 10. Licursi M, Inoshima Y, Wu D, et al. Genetic heterogeneity among bovine leukemia virus genotypes and its relation to humoral responses in hosts. Virus Res 2002; 86: 101-110.
  • 11. Fechner H, Blankenstein P, Looman AC, et al. Provirus variants of the bovine leukemia virus and their relation to the serological status of naturally infected cattle. Virology 1997; 237: 261-269.
  • 12. Kelly EJ, Jackson K, Marsolais G, Morrey J.D, Callan RJ. Early detection of bovine leukemia virus in cattle by use of the polymerase chain reaction. Am J Vet Res 1993; 54: 205-209.
  • 13. Roberts DH, Lucas MH, Wibberley G, Westcott D. Response of cattle persistently infected with bovine virus diarrhoea virus to bovine leukosis virus. Vet Rec 1988; 122: 293-296.
  • 14. Licursi M, Inoshima Y, Wu D, et al. Provirus variants of bovine leukemia virus in naturally infected cattle from Argentina and Japan. Vet. Microbiol 2003; 96,17-23.
  • 15. Kohara J, Konnai S, Onuma M. Experimental transmission of Bovine leukemia virus in cattle via rectal palpation. Jpn J Vet Res 2006; 54: 25-30.
Fırat Üniversitesi Sağlık Bilimleri Veteriner Dergisi-Cover
  • ISSN: 1308-9323
  • Yayın Aralığı: Yılda 3 Sayı
  • Yayıncı: Prof.Dr. Mesut AKSAKAL
Sayıdaki Diğer Makaleler

Kamu sağlığına yönelik veteriner halk sağlığı hizmetleri ve bu alandaki fırsatların değerlendirilmesi

Ethem ERGİNÖZ, Sibel CEVİZCİ

Ovariektomize ve diabetik ratlarda E vitamini ve 17-B;; estradiolün lipit peroksidasyon seviyesi ile plazma lipit değerleri üzerine etkileri

Mustafa ULAŞ, Mehmet ÇAY

Kayseri bölgesindeki sığırlarda bovine herpesvirus tip 1 (BHV-1) enfeksiyonunun seroprevalansı

Ayşe GENCAY, Seval Bilge DAĞALP, Kezban Can ŞAHNA, Dilek PINAR, Zeynep BAŞARAN

The effects of selenium and vitamin C supplementation on lipid peroxidation in broilers reared cold environment (15^oC) and diets of high energy

Pınar Tatlı SEVEN, Bestami DALKILIÇ, Seval YILMAZ, İsmail SEVEN

Doğal enfekte bir sürüde ELISA ve nested-PCR ile sığırların lösemi virüs enfeksiyonunun belirlenmesi

İbrahim SÖZDUTMAZ, İrem GÜLAÇTI, Hakan BULUT

Sığırların bazı ön mide hastalıklarında rumen sıvısı metilen mavisi indirgenme testi süresinin araştırılması

Murat DABAK

Fonksiyonel rumene sahip sağlıklı sığırlarda transketolaz test değerlerinin araştırılması

Tolga KARAPINAR, Murat DABAK

Bir köpekteki bağırsak invaginasyonu ve ultrasonografik tanısı

Ersoy BAYDAR, Mustafa KÖM, Tolga KARAPINAR

Ovulatory follicle size and mucus ferning level in relation to non-return rate during artificial ınsemination time in spontaneously oestrus signed cows

Mustafa GÜNDOĞAN

Random amplified polymorphic DNA (RAPD) analysis of Escherichia coli ısolated from chickens

Ayşe KILIÇ, Gökben ÖZBEY, Adile MUZ, Hasan Basri ERTAŞ