Şap aşısı uygulanan besi sığırlarında antioksidan vitaminlerin klinik ve bazı hematolojik parametreler ile antioksidan enzim ve lipit peroksidasyon düzeylerine etkileri

Bu çalışmada; şap aşısı uygulanan besi tosunlarında aşılama öncesi ve sonrasında klinik ve hematolojik parametreler ile antioksidan enzimler ve lipit peroksidasyon düzeylerine antioksidan vitaminlerin etkisini belirlemek amaçlanmıştır. Araştırmada klinik olarak sağlıklı, montofon ırkı ve yaklaşık bir yaşında 48 baş besi tosunu kullanılmıştır. Bu hayvanlar 12'şerli dört gruba (A, B, C ve D) ayrılmıştır; A grubuna sadece şap aşısı yapılmış, B grubuna şap aşısı + aşılama sırası ve sonrası 3. günde vitamin C uygulanmış, C grubuna şap aşısı + aşılama sırasında vitamin AD3E uygulanmış, D grubuna ise şap aşısr + aşılama sırası ve sonrası 3. günde vitamin C + aşılama sırasında vitamin AD3E uygulanmıştır. Araştırmada kullanılan tüm hayvanların sistemik klinik muayeneleri yapıldıktan sonra laboratuvar muayeneleri için aşılama öncesi (0. gün) ve sonrası 3., 14. ve 21. günlerde V. jugularislerinden dört kez kan örnekleri alınmıştır.' Tüm gruplardaki hayvanlara ait klinik (vücut sıcaklığı, kalp ve solunum frekansı, rumen hareketleri) ve hematolojik (total lökosit sayısı, mikrohematokrit değer, hemoglobin miktarı, formül lökosit) muayene bulguları, antioksidan enzimler (süper oksit dismutaz, katalaz ve glutatiyon peroksidaz) ve lipit peroksidasyon (malondialdehit) düzeyleri belirlenmiştir.

The effects of antioxidants vitamins on clinical and some haemotological parameters, antioxidant enzyme and lipid peroxidation levels of beef cattle vaccinated with foot and mouth disease vaccine

The aim of this study to determine the effects of antioxidant vitamins on some clinical and haemotological parameters and antioxidant enzyme levels of beef cattle pre and post vaccinated with foot and mouth disease vaccine. In this study 48 healthy brown swiss beef cattle (approximately aged one year) were used. These animals were divided into four groups (A, B, C and D) each in including 12 animals; group A: only inactivated foot and mouth disease vaccine was applied, group B: inactivated foot and mouth disease vaccine and vitamin C were injected on day 0 and 3 of the experiment, group C: inactivated foot and mouth disease vaccine and vitamin AD3E were injected on day 0 of the experiment and group D: inactivated foot and mouth disease vaccine and vitamin AD3E and vitamin C were injected on.day 0 of the experiment, in addition vitamin C was also injected on day 3. All cattle were clinically examined and blood samples were obtained from a jugular vein of animals on day 0, 3, 14 and 21 of the experiment for the laboratory analysis. The result of clinic (body temperature, pulsus rate, respiration rate and rumen motion) and haemotologic examination (total leukocyte, hemoglobine, micro haemotocrit, formula leukocyte) antioxidant enzyme (super oksid dismutase, catalase and glutathyon peroxidase) and lipid peroxidation (malondialdehide) levels after aplication of the vaccine were determined.

PDF

___

1. Aebi H. Katalase in vitro. Methods in enzymology. Volume 105. New York. Academic Pres 1984; 121-126.
2. Aksın M, Adıbeş M, Erdem H ve ark. Şap Hastalığı ile Mücadele. Ankara. Şap Enstitüsü, 1997; 5-20.
3. Batmaz H. Klinik olarak normal sığırlar ile retikuloperitonitis travmaticalı sığırların teşhis ve prognozunda serum protein elektroforezi ve SGOT, SGPT ile LDH enzim düzeyleri üzerinde karşılaştırmalı araştırmalar. Doğa Tr J Vet Anim Sci 1990; 14: 467-478.
4. Beutler E. A Manual of Biochemical Methods. 2nd ed. New York. Grunef Strotton, 1975.
5. Blood DC, Radostits DM and Handerson JA. Veterinary Medicine. London. Bailliere Tindall,1990.
6. Bradfort PS. Large Animal Internal Medicine. Philadelphia. The C.V. Mosby Company, 1990.
7. Keçeci T, Keskin E ve Durgun Z. Çevre ısısı ve vitamin C’nin İsviçre esmeri boğalarda kan serumu tiroit hormon düzeyleri ile bazı hematolojik değerler üzerindeki etkileri. Tr J Anim Sci 2000; 24: 353-359.
8. Kyaw A. A simple colorimetric method for ascorbic acid determination in blood plasma. Clin Chim Acta 1978; 16: 151-157.
9. Lanhance PA, Nakat Zeina BS and Woo-Sik Jeong MS. Antioxidants: An integrative approach. Nutr. 2001; 17: 835-838.
10. Martinek RG. Method for determination of vitamin E (total tocopherols) in serum. Clin Chem 1964; 10(12): 1078-1086.
11. Miller JK and Slebodzinska EB. Oxidative stress, antioxidants and animal functions. J Dairy Sci 1993; 76: 2812-2823.
12. Ozan ST, Yaralıoğlu S, Yılmaz S, ve ark. Theileria annulata ile enfekte sığırlarda GSHPx, G6PD, Arginaz aktiviteleri ile bazı biyokimyasal parametreler. Tr J Vet Anim Sci 1999; 23(3): 552-557.
13. RANSOD Superoksid dismutase kiti, RANDOX Laboratories Ltd, Ardmore, United Kingdom. Diamond Road, Crumlin Co.
14. Reddy PG, Morrill JL and Frey RA. Vitamin E requirements of dairy calves. J Dairy Sci 1987; 70: 123-129.
15. Reddy PG, Morrill JL, Minocha HC et al. Effect of supplemental vitamin E on the immune system of calves. J Dairy Sci 1986; 69: 164-171.
16. Regina BL and Traber MG. Vitamin E: Function and Metabolism. The FASEB Journal 1999; 13: 1145-1155.
17. Rosenberger G. Krankheiten des Rindes. Berlin. Verlag Paul Parey, 1994.
18. Roth JA, Kaeberle ML. In vivo effect of ascorbic acid on neutrophyl function in health and dexamethasone-treated cattle. Am J Vet Res 1985; 46: 2434-2437.
19. Satoh K. Serum Lipid peroxidase in cerebrovascular disorders determined by a new colorimetric method. Clin Chim Acta 1978; 90: 37-43.
20. Scholz RW, Todhunter DA and Cook LS. Disturibution of selenium dependent and selenium nondependent gluthation peroxidase activity in tissues of young cattle. Am J Vet Res 1981; 42 (10):1724-1729.
21. Sies H and Stahl WM. Vitamin E and C, β-carotene and other carotenoids as antioxidants. Am J Clin Nutr 1995; 62: 1315-1321.
22. Suzuki J and Katoh N. A simple and cheap methods for measuring serum vitamin A in cattle using only a spectrofotometer. Jpn J Vet Sci 1990; 52 (6): 1281-1283.
23. Waldner C, Campbell J, Jim GK and al. Comparison of three methods selenium assesment in cattle. Can Vet J 1998; 39: 225-231.
24. Wilson PS and Judson GJ. Gluthation peroxidase activity in bovine and ovine erytrocytes in relation to blood selenium concentration. Br Vet J 1976; 132:428-434.
25. Yaralıoğlu S. Ruminantlarda Kan ve Karaciğer Dokusu Antioksidan Enzim Düzeyleri ve Lipit Peroksidasyon Üzerine Etkileri. Doktora Tezi, Elazığ. 2000.
26. Yogi K. Assay for Blood Plasma or Serum. Methods in Enzymol. 1984; 105: 328-331.
27. Yılmaz K ve Otlu A. Veteriner Hematoloji El Kitabı. Hatipoğulları Yayınları. No:54, Ankara. 1989.