Çeşitli Balık Türlerinden İzole Edilen Patojen Bakteriler ve Antibiyotik Direnç Profilleri*

Antibiotic Resistance Profiles of Bacterial Pathogens Isolated from Various Fish Species

Abstract: The present study was performed to evaluate retrospectively the bacteriological identification results from wild, culture and aquarium fish admitted to the Fish Diseases Diagnostic Laboratory at the Veterinary Control Institute of Samsun for disease diagnose from 2009 to 2014 as well as the antimicrobial susceptibility profile of isolated bacteria. Vitek 2 automated systems were used following bacterial identifications with conventional culture methods. In the study, 132 samples were analyzed and a total of 19 isolates were identified. Of the isolates, 7 were isolated from Rainbow trout (4 Aeromonas sobria, 2 Yersinia ruckeri and 1 Hafnia alvei), 4 from Common carp (2 A. sobria and 2 A. salmonicida), 2 from Chub (1 A. sobria and 1 H. alvei), 2 from Discus fish (1 Citrobacter freundii and 1 Pseudomonas aeruginosa), 1 from Sea bass (Listonella anguillarum), 1 from Black Sea trout (P. fluorescens), 1 from Sturgeon (L. anguillarum), and 1 from Dolphin (A. salmonicida). The isolates were analyzed using 14 different antibiotics by Disc Diffusion method for in vitro susceptibility test. Among the antibiotics used, the highest resistance rates were detected against amoxicillin (89.5%), ampicillin (82.3%) and erythromycin (78.9%), while the lowest resistance rate was detected against enrofloxacin (5.3%). The remarkable finding of the study was two aquarium fish originated isolates showed antibiotic resistance against at least 11 antimicrobials. The present results showed the importance of choosing appropriate antimicrobial agents for treatment of fish diseases.

___

  • 1. Subasinghe R., 2009. Disease control in aquaculture and the responsible use of veterinary drugs and vaccines: the issues, prospects and challenges. Options Mediterraneennes, 86, 5-11. 2. Harlioglu AG., 2011. Present status of fisheries in Turkey. Reviews in Fish Biology and Fisheries, 21, 667-680. 3. Türkiye İstatistik Kurumu (TUİK), 2012. Su Ürünleri İstatistikleri 2011, Türkiye İstatistik Kurumu Matbaası, Ankara. 4. Türkiye İstatistik Kurumu (TUİK), 2013. Su Ürünleri İstatistikleri 2012, Türkiye İstatistik Kurumu Matbaası, Ankara. 5. Arda M., Seçer S., Sarıeyyüpoğlu M., 2005. Balık hastalıkları, II. Baskı, 209-218, Medisan Yayınevi, Ankara. 6. Tanrıkul TT., Çağırgan H., 2001. Doğadaki kefal balıklarında görülen Pasteurellosis salgını. Ege Üniversitesi Su Ürünleri Dergisi, 18, 509-512. 7. Akayli T., Korun J., 2004. Bir lepistes üretim ünitesindeki balıklarda (Poeciltia reticulata) Pseudomonas fluorescens ile birlikte görülen flavobacteriosis olgusu. İstanbul Üniversitesi, Veteriner Fakültesi Dergisi, 30, 133-142. 8. Korun J., Toprak BH., 2007. Japon (Carassius auratus) balıklarından izole ve identifiye edilen Aeromonas hydrophila, A. caviae ve A. sobria türlerinin antibiyotik hassasiyetleri, hemolitik aktiviteleri ve siderofor üretimleri üzerine bir çalışma. Türk Sucul Yasam Dergisi, 3, 776-782. 9. Avsever ML., Türk N., Tunalıgil S., 2010. Akuakültür sektöründe artan antibiyotik dirençliliği ve insan sağlığına etkileri. Bornova Veteriner Kontrol Araştırma Enstitüsü Dergisi, 32, 19-23. 10. Onuk EE., Çiftçi A., Fındık A., Çiftçi G., Altun S., Balta F., Özer S., Çoban AY., 2011. Phenotypic and molecular characterization of Yersinia ruckeri isolates from Rainbow Trout (Oncorhynchus mykiss, Walbaum, 1792) in Turkey. Berliner und Munchener Tierarztliche Wochenschrift, 124, 320-328. 11. Avsever ML., Onuk EE., Türk N., Tunalıgil S., Eskiizmirliler S., İnçoğlu Ş., Yabanlı M., 2012. Ege bölgesinde kültüre edilen levrek ve çipuralardaki pasteurellozis vakaları ve bu vakalardan izole edilen diğer bakteriler. Bornova Veteriner Bilimleri Dergisi, 34, 9-16. 12. Durmaz Y., Onuk EE., Çiftçi A., 2012. Orta ve Doğu Karadeniz Bölgesi gökkuşağı alabalığı çiftliklerinde (Oncorhynchus Mykiss Walbaum, 1792) Flavobacterıum psychrophilum varlığının ve antibiyotik duyarlılıklarınının incelenmesi. Ankara Üniversitesi Veteriner Fakültesi Dergisi, 59, 141- 146. 13. Altun S., Onuk EE., Çiftci A., Büyükekiz AG., Duman M., 2013. Lactococcus garvieae suşlarının fenotipik, genotipik karakterizasyonu ve antimikrobiyal duyarlılıklarının belirlenmesi. Kafkas Universitesi Veteriner Fakültesi Dergisi, 19, 375-381. 14. Onuk EE., Fındık A., Turk N., Altun S., Korun J., Ozer S., Avsever ML., Ciftci A., 2013. Molecular identification and determination of some virulence genes of Aeromonas spp. in fish and water from Turkish coastal regions. Revue de Medecine Veterinaire, 164, 200-206. 15. Smith P., Hiney MP., Samuelsen OB., 1994. Bacterial resistance to antimicrobial agents used in fish farming: a critical evaluation of method and meaning. Annual Review of Fish Diseases, 4, 273-313. 16. Björklund HV., Rabergh CMI., Bylund G., 1991. Residues of oxolinic acid and oxytetracycline in fish and sediments from fish farms. Aquaculture, 97, 85-96. 17. Inglis V., Robertson D., Miller K., Thompson KD., Richards RH., 1996. Antibiotic protection against recrudescence of latent Aeromonas salmonicida during furunculosis vaccination. Journal of Fish Diseases, 19, 341-348. 18. Heuer OE., Kruse H., Grave K., Collignon P., Karunasagar I., Angulo FJ., 2009. Human health consequences of use of antimicrobial agents in aquaculture. Clinical Infectious Diseases, 49, 1248-1253. 19. Waltman WD., Shotts EB., 1984. A medium for the isolation and differentiation of Yersinia ruckeri. Canadian Journal of Fisheries and Aquatic Sciences, 41, 804-808. 20. Austin B., Austin DA., 2007. Bacterial Fish Pathogens: disease of farmed and wild fish, 4th ed., 215-235, Praxis Publishing, Chichester, UK. 21. Buller NB., 2004. Bacteria from fish and other aquatic animals: A practical identification manual. 117-138, CABI Publishing, Wallingford. 22. Bauer AW., Kirby WM., Sherris JC., Turck M., 1966. Antibiotic susceptibility testing by a standardized single disk method. American Journal of Clinic Pathology, 45, 493-496. 23. CLSI, 2013. Performance standards for antimicrobial susceptibility testing; Twenty-third informational supplement. CLSI document M100- S23. Wayne, PA: Clinical and Laboratory Standards Institute. 24. Subasinghe RP., 2005. Epidemiological approach to aquatic animal health management: opportunities and challenges for developing countries to increase aquatic production through aquaculture. Preventive Veterinary Medicine, 67, 117-124. 25. Özkök S., 2005. Gökkuşağı alabalıklarında (Oncorhynchus mykiss) görülen önemli bakteriyel etkenlerin tespiti ve antibiyotiklere duyarlılıklarının saptanması. Etlik Veteriner Mikrobiyoloji Enstitüsü Dergisi, 16, 1-11. 26. Tel OY., İrgare G., Karahan M., Keskin O., 2007. Şanlıurfa Balıklıgöl balıklarından Aeromonas hydrophila izolasyonu ve antibiyotik duyarlılıklarının saptanması. Etlik Veteriner Mikrobiyoloji Dergisi, 18, 1-4. 27. Timur G., Akayli T., Korun J., Yardimci RE., 2010. Türkiye'de genç kültür Rus Mersin balıklarında (Acipencer gueldenstaedtii) görülen bakteriyel hemorajik septisemi üzerinde bir çalışma. İstanbul Üniversitesi Su Ürünleri Dergisi, 25, 19- 27. 28. Murray AG., Peeler EJ., 2005. A framework for understanding the potential for a emerging diseases in aquaculture. Preventive Veterinary Medicine, 67, 223-235. 29. Baş B., 2013. Japon balıklarında (Carrasius auratus) Mycobacterıum spp. izolasyonu. Bornova Veteriner Bilimleri Dergisi, 5, 25-30. 30. Akşit D., Kum C., 2008. Gökkuşağı alabalıklarında (Oncorhynchus mykiss, Walbaum 1792) sık görülen patojen mikroorganizmaların tespiti ve antibiyotik duyarlılık düzeylerinin belirlenmesi. Yüzüncü Yıl Üniversitesi Veteriner Fakültesi Dergisi, 19, 1-7. 31. Korun J., Toprak BH., 2010. Kültürü yapılan gökkuşağı alabalıkları (Oncorhynchus mykiss)’nın barsağından izole edilen hareketli Aeromonas suşlarının antibiyotik hassasiyetleri üzerine NaCl’ün etkisi. Kafkas Üniversitesi Veteriner Fakültesi Dergisi, 16, 193-198. 32. Çiftçi A., Onuk EE., Çiftçi G., Fındık A., Söğüt MÜ., Gülhan T., 2015. Gökkuşağı alabalıklarından (Oncorhynchus mykiss, Walbaum, 1972) izole edilen Aeromonas sobria suşlarının fenotip ve genotip yönünden karşılaştırmalı analizi. Kafkas Üniversitesi Veteriner Fakültesi Dergisi, 21, 585- 592.
Atatürk Üniversitesi Veteriner Bilimleri Dergisi-Cover
  • ISSN: 1306-6137
  • Yayın Aralığı: Yılda 3 Sayı
  • Yayıncı: Atatürk Üniversitesi Veteriner Fakültesi
Sayıdaki Diğer Makaleler

Erzurum Bölgesinde Sığırlarda Respiratorik Coronavirus Enfeksiyonunun RT-PCR ile Tespiti ve Moleküler Karakterizasyonu

Hakan AYDIN, Sema BELEN, Mehmet Özkan TİMURKAN

İneklerde Postpartum Dönemde Endometritisin Sınıflandırılması ve Tanımlanmasında Kullanılan Muayene Yöntemleri

Bülent POLAT, Orçun CANNAZİK

Etlik Piliç Yemlerine İlave Edilen Yarpuz'un (Mentha Pulegıum L) Doku Yağ Asidi Kompozisyonu ve Raf Ömrüne Etkileri

Hilal ÜRÜŞAN, Kuddusi ERHAN, Canan AKTAŞ BÖLÜKBAŞI

Çeşitli Balık Türlerinden İzole Edilen Patojen Bakteriler ve Antibiyotik Direnç Profilleri*

Ertan Emek ONUK, Alper ÇİFTÇİ, Gökmen Zafer PEKMEZCİ, Yunus KILIÇOĞLU, Yüksel DURMAZ

Eimeria zuernii ile Doğal Enfekte Buzağılarda Kış Koksidiyozisi Olgusu

Mükremin Özkan ARSLAN, Ali Haydar KIRMIZIGÜL, Ekin Emre ERKILIÇ, Nilgün PARMAKSIZOĞLU

Determination of Aflatoxin Levels of Feeds Used in Dairy Cow Farms and Their Effects on Blood Parameters and Milk Aflatoxin Levels in Hatay

Taylan AKSU, Ferhat POLAT

Sığırlarda Östrus Senkronizasyonu ile Birlikte Kullanılan Döl Tutma Oranını Etkileyen Faktörler*

Emrah Hicazi AKSU, Deniz PEKÇOK

MikroRNA Biyogenezi

Mustafa HİTİT, Ercan KURAR, Aydın GÜZELOĞLU

Kazeöz Lenfadenitise Karşı Aşılanan Kuzularda E Vitamini ve Selenyum Kombinasyonunun Oksidatif Cevap Üzerine Etkileri*

Kayacan SEYRANOĞLU, Öznur ASLAN

SarıkamışYöresindeYetiştiriciBilgilerineDayanarakBüyükbaşHayvan BeslenmeDurumununDeğerlendirilmesi*

Berna AKMAN, İlkay YALÇINKAYA