Songül ÇÖMLEKÇİOĞLU, Şebnem Gözde TAMDOGAN, Ayzin KÜDEN

Tesadüf Melezleri AK-1 ve AK-2 ile GF 677 Anaçlarının Doku Kültüründe Çoğaltılabilmesinin Araştırılması

Bu araştırmada, tesadüf çöğürü olarak bulunan (AK-1, AK-2) ile GF-677 anacının doku kültüründe canlılık, çoğalma ve köklenme özellikleri belirlenmiştir. Besin ortamı olarak Murashige ve Skoog (MS) kullanılmıştır. MS ortamına sürgün ucu canlılığı ve çoğaltım aşamalarında 0, 0.5, 1, 1.5 mg/l 6-benzil amino pürin (BAP) ve 0.1 mg/l giberellik asit (GA3) ve köklenme aşamasında ise 0, 0.5, 1, 1.5 mg/l indol bütirik asit (IBA) ve 0.1 mg/l GA3 ilave edilmiştir. En düşük canlılık, sürgün sayısı ve köklenme oranları, kontrol (hormonsuz) ortamında olmuştur. Bütün BAP + GA3 kombinasyonlarında %100 canlılık elde edilmiştir. Ortalama en düşük sürgün sayıları kontrol bitkilerinde saptanırken, en fazla sürgün sayısı 4.00 ile 1.5 BAP + 0.1 GA3 içeren ortamdaki AK-1 genotipinden elde edilmiştir. AK-1 genotipinden elde edilen ortalama sürgün sayıları daha fazla olurken bunu sırasıyla GF-677 ve AK-2 genotipleri takip etmiştir. En yüksek oranda köklenme %43.38 ile 1.0 mg/l IBA + 0.1 mg/l GA3 içeren ortamdaki AK-1 genotipinden elde edilirken, bunu sırasıyla %36 ile 0.5 IBA + 0.1 mg/l GA3 ve %35.50 ile 1.5 IBA + 0.1 mg/l GA3 içeren ortamdaki GF-677 anacı takip etmiştir. AK-2 anacının GF-677 kadar iyi köklenme göstermesi bu anacın alternatif bir anaç olarak ümitvar olduğunu ortaya koymuştur.

Investigation of Micropropagation of Coincidence Hybrids AK-1 and AK-2 and GF-677 Rootstocks

In this study, the viability, proliferation and rooting properties of AK-1 and AK-2 rootstocks found as coincidental seedling and GF-677 were determined in tissue culture. Murashige and Skoog (MS) was used as nutrient media. In viability and propagation stages, 0, 0.5, 1, 1.5 mg/l 6-benzyl amino purine (BAP) and 0.1 mg/l gibberellic acid (GA3), in rooting stage 0, 0.5, 1, 1.5 mg/l indole butyric acid (IBA) and 0.1 mg/l GA3, were added to MS medium. The lowest viability, shoot number and rooting rates were determined in the control (hormone-free) treatment. In all BAP + GA3 combinations 100% viability was obtained. While the mean the lowest number of shoot was determined in control plants, the highest shoot numbers (4.00 shoot/explant) was obtained from the AK-1 genotype in the medium containing 1.5 BAP + 0.1 GA3. The highest average shoot numbers were obtained from AK-1, GF-677 and AK-2 genotypes, respectively. The highest rooting rate (43.38%) was obtained from the AK-1 genotype in the medium containing 1.0 mg/l IBA + 0.1 mg/l GA3. Followed after AK-1 rootstock with the ratio of 36% and 35.50% in medium with 0.5 IBA + 0.1 mg/l GA3 and 1.5 IBA + 0.1 mg/l GA3 respectively. The results show that AK-2 genotype was as good as GF-677. This revealed that AK-2 is promising as an alternative rootstock.

PDF

___

Ahmad, T., Rahman, H., Ahmed, C.H., M.S., Laghari, M.H., 2003. Effect of Culture Media and Growth Regulators on Micropropagation of Peach Rootstock GF-677. Pakistan Journal of Botany, 35(3):331-338.
Arıcı, Ş.E., 2008. Bazı Sert Çekirdekli Meyve Anaçlarının Doku Kültürü ile Çoğaltılması. Süleyman Demirel Üniversitesi Ziraat Fakültesi Dergisi, 3(1):19-23.
Antonopoulou, C., Dimassi, K., Therios, I., Chatzissavvidis, C., 2004. The Influence of Radiation Quality on the In vitro Rooting and Nutrient Concentration of Peach Rootstock GF-677. Biologia Plantarum, 48: 549-553.
Battistini, A., De Paoli, G., 2002. Large Scale Micropropagation of Several Peach Rootstocks. V. International Peach Symposium. ISHS Acta Horticulturae, 592: 29-33.
Çelik, M., 1983. Meyve Yetiştiriciliğinde Anacın Önemi ve Türkiye Meyveciliğinde Anaç Sorunu. Ankara Üniv. Zir. Fak. Yay. 886, Derleme: 47.
Dimasi-Theriou, K., Economou, A. S. 1995. Ethylene Enhances Shoot Formation in Cultures of the Peach Rootstock GF-677 (Prunus persica x P. amygdalus). Plant Cell Reports., 15: 87–90. http://dx.doi.org/10.1007/BF01690260
Dobranszki, J., Silva, J. A. T., 2010. Micropropagation of apple – A review. Biotechnology Advances, 28: 462-488. Fotopoulos, S., Sotiropoulos, T. E., 2005. In vitro Rooting of PR 204/84 Rootstock (P. persica x P. amygdalus) as Influenced by Mineral Concentration of the Culture Medium and Exposure to Darkness for a Period. Agronomy Research, 3(1): 3-8.
Gangal, G., 2004. Farklı IBA Dozlarının GF677, AK-1 ve AK-2 Anaçlarına Ait Odun Çeliklerinin Köklenmeleri Üzerine Etkileri. Ç.Ü. Z. F. Bahçe Bitkileri Bölümü. Mezuniyet Tezi, 15 s.
Güler, S., 2017. In vitro Şartlarında BBAR Uygulamalarının GF-677 İle Maxma14’ün Köklenmesi Üzerine Etkisi. Selçuk Üniversitesi Fen Bilimleri Enstitüsü, Bahçe Bitkileri Anabilim Dalı, Yüksek Lisans Tezi, 35 s.
Gürel, S., Gülşen, Y., 1998. The Effects of IBA and BAP on In vitro Shoot Production of Almond (Amygdalus communis L.). Turkish Journal of Botany, 22: 375-379.
Hepaksoy, S., 2017. GF 677 (P. amygdalus x P. persica) Klon Anacının Doku Kültüründe Sürgünucu Tekniği ile Çoğaltılması. Ege Üniv. Ziraat Fak. Derg., 54 (4):447-451.
Jain, S. M., Haggman, H. (Eds.). 2007. Protocols for Micropropagation of Woody Trees and Fruits. p:1- 19. doi:10.1007/978-1-4020.
Kamali, K., Majidi, E., Zarghami, R., 2001. Micropropagation of GF- 677 Rootstocks (P. amygdalus x P. persica). 11. GREMPA Seminar on Pistachios and Almonds CIHEAM-IAMZ. 56: 175-177.
Kester, D. E., 1970. Growth In vitro of Tissue of Almond, Almond Hybrids and Some Other Prunus.- Horticulture Science, 5(4): 349.
Küden, A.B., 2000. Şeftali Yetiştiriciliği. TÜBİTAK-TARP Yayınları, 20 s.
Murashige, T., Skoog, F., 1962. A Revised Medium for Rapid Growth and Bioassay of Tobacco Tissue Cultures. Physiol Plant., 15, 473-497.
Özden, A.N., AK, B.E., Özden, M., 2011. In vitro Regeneration and Micropropagation of GF-677 Hybrid (Prunus amygdalus × P. persica) Rootstock. Proc. V. IS on Pistachios and Almonds. Acta Horticulture. 912: 653-656.
Rodrigues, A.C., Silveira, C.A.P., Fortes, G.R. De L., Fachinello, J.C., Silva, J.B., 2003. Establishment and Multiplication In vitro of Prunus sp. in Different Culture Media. Revista Brasileira de Fruticultura, Jaboticabal, 25 (1): 131-133.
Sutter, E. G., 1996. General Laboratory Requirements, Media and Sterilization Methods. In: Trigiano RN, Gray DJ (eds) Plant Tissue Culture Concepts and Laboratory Exercises, CRC Press, New York, p: 11-25.
Tabachnik, L., Kester, D. E. 1977. Shoot Culture for Almond and Almond Peach Hybrid Clones In vitro. Hort Science., 12(6): 545-547.
Trefois, R., 1985. Dwarfing Rootstocks for Sweet Cherries. Acta Hort., 169: 147- 155.
Yılmaz, M., 1992. Bahçe Bitkileri Yetiştirme Tekniği Ders Kitabı, Ç.Ü. Basımevi, 151 s.