Bazı kanatlıların dışkılarında salmonella türlerinin varlığı ve yaygınlığı ile antiyotiklere duyarlılıkları

Bu çalışmada, Van yöresinde tavuk, hindi, bıldırcın ve devekuşlarının dışkılarında Salmonella türlerinin varlığı ve yaygınlığı ile antibiyotiklere duyarlılıkları ilk kez araştırıldı. Tavuk (400), hindi (400), bıldırcın (200) ve devekuşlarının (200) kloakalarından steril sıvaplarla alman toplam 1200 adet dışkı örneği kullanıldı. Dışkı örneklerinden toplam %4.0S (49/1200) oranında Salmonella spp. izole ve identiflye edildi. İzole edilen Salmonella türlerinin 5 farklı seragrupta $(B, C_1, C_3, D_1, E_2)$ ve 9 farklı serolipte olduğu belirlendi. Tavuk dışkı örneklerinden izole edilen 28 (7%) Salmonella suşunun 10 (%35.71)'u S. gallinarum, 10 (%35.71)'u Salmonella enteritidix, 6 (%21.43)'sı Salmonella corvallis, l (%3.57)'i Salmonella typhimurium ve l (%3.57)'i de Salmonella agona olarak serotiplendirildi. Hindi dışkı örneklerinden 20 (%5) Salmonella suşu izole edildi. İzole edilen suşların 9 (%45)'u S. enteritidis, 4 (%20)'ü Salmonella augustenborg, 3 (%15)'ü Salmonella anatum var. 015+, 2 (%10)'si S. gallinarum, l (%5)'i Salmonella virchow, ve l (%5)'i de Salmonella Cambridge olarak serotiplendirildi. Bıldırcın dışkı örneklerinden sadece bir adet (%0.05) S. gallinarum susu izole ve identifiye edilirken devekuşu dışkılarından ise Salmonella izole edilemedi. Tavuk, hindi ve bıldırcınlardan izole edilen 49 adet Salmonella suşunun norfloksasin, danofloksasin ve streptomisine %100,florfenikole %97.96, oksitetrasikline %95.92, nitrofurantoin ve enrofloksasine %92.S3, ampisilin ve amoksisiline %89.80, nalidiksik aside %83.67, gentamisin ve tetrasikline %67.34, trimetoprim+sulfametaksasole %51.02, penisilin G'ye %30.61 oranında duyarlı; neomisin ve eritromisine ise %100 dirençli oldukları tespit edildi. Bu çalışmanın sonucunda; S. augustenborg, S. anatum var. O15+, S. virchow, ve S. Cambridge suşları Türkiye'de dışkıdan ilk defa izole edildi.

The occurance and prevalence salmonella species in faeces of certain fowls and their susceptibility to antibiotics

This study was carried out to investigate the prevalence and occurance of Salmonella species in faeces of certain fowls and to determine their susceptibility to antibiotics around Vanfor lite first lime. In the study a total of 1200 faeces samples taken fmm chicken (400), turkey (400), quail (200) and ostrich (200) were used as material. A total of 4,08% (49/1200) Salmonella spp. Were isolated and identified from poultry faeces. Salmonella strains were found to be of five different serogroups $(B, C_1, C_3, D_1, E_2)$ and nine different seroiypes. A total of 28 Salmonella spp. were isolated from chicken faeces. Of the 28 Salmonella isolates, 10 (35.71%) were serolyped as Salmonella gallinarum, 10 (35.71%) Salmonella enleritidis, 6 (21.43%) Salmonella corvallis, one (3,57%) Salmonella typhimuriunt and one as (3.57%) Salmonella agona. A total of 20 Salmonella spp. were isolated fmm turkey faeces. Of the 20 Salmonella isolates, 9 (45%) were semtyped as S. enlerilidis, 4 (20%) Salmonella augustenborg, 3 (15%) Salmonella anatum var. O15+, 2 (10%) S. gallinarum, one (5%) Salmonella virchow and one (5%) as Salmonella Cambridge. Only one (0.05%) Salmonella spp. was isolated from quail faeces and was serolyped as S. gallinarum. No Salmonella was isolated fmm. ostrich faeces. Salmonella strains isolated from poultry faeces Were found to be susceptible to iiorjloxacin, danoftoxacin and streptomycin 100%, florfenicol 97.96%, oxyletracycline 95.92%, nitrofurantoin and enrofloxacin 92.83%, ampicillin and amoxycillin 89.80%, nalidixic acid 83.67%, gentamicin and letracycline 67.34%, trimellioprim+sulfamethoxazole 51.02%, penicillin G 30.61%, neomycin and erythromycin 0%. To conclude, with this study; S. augustenborg, S. anatum var. O15+, S. virchow and S. Cambridge strains from faeces were isolated in Turkey for the first time.

___

  • 1. Akan M (2002): Türkiye'de Kanatlı Endüstrisi, Bölüm T, Kanatlı Hayvan Hastalıkları, 1. Baskı, 1-7, M İzgür ve M Akan (Editörler), Medisan Yayın Serisi No: 50, Medisan Yayınevi, Ankara.
  • 2. Al-nakli HM, al-Ogaly ZH, Nassar TJ (1999): Representative Salmonella serovars isolated from poultry and poultry environments in Saudi Arabia..Rev Sci Tech, 18 (3): 700-709,
  • 3. Antunes P, Reu C, Sousa JC, Peixe L, Pestana N (2002): Incidence of Salmonella from poultry products and their susceptibility to antimicrobial agents. Int J Food Microbiol, 82, (2): 97-103.
  • 4. Arora AK, Gupta SC and Kaushik RK (1988): Isolation of Salmonella gallinarum from turkeys. Indian Vet J, 65 (2): 171.
  • 5. Barrow PA (1991): Experimental infection of chickens with Salmonella enteritidis. Avian Pathol, 20: 145- 153.
  • 6. Bauer AW, Kirby WMM, Sherris JC and Turck M (1966): Antibiotic susceptibility testing by standardized single disc method. Am J Clin Pathol, 45: 493-496.
  • 7. Bekar M, Ayaz Y, Akman A, Yazıcıoğlu N, Uysal N, Tekin C, Korkut N, Miroğlu M, Aslan A, Ergün A ve İldeş Z (1993). Tavuk mezbahalarının Salmonella yönünden taranması. Etlik Vet Mikrobiyol Derg, 7: 1-23.
  • 8. Bilgehan H (1992): Salmonella. Klinik Mikrobiyoloji, Özel Bakteriyoloji ve Bakteriyel İnfeksiyonlar, 25-45, Barış Yayınları, Fakülte Kitabevi, İzmir.
  • 9. Blackburn OB, Schlater LK, Swanson MR (1984): Antibiotic resistance of members of THA genus Salmonella isolated from chickens, turkeys, cattle , and swine in the United States during October 1981 through September 1982. Am J Vet Res, 45 (6): 1245-1249. .
  • 10. Boynukara (Uslanoğlu) B ve Aydın F (1990): Tavuklardan izole edilen Salmonella suşlannm antibiyotiklere duyarlılıkları üzerinde bir araştırma. Türk Veteriner Hekimliği Dergisi, Bahar-90 (6): 21-23.
  • 11. Çarlı KT (1990): Bursa bölgesindeki yumurta ve broyler tipi tavuklardan izole edilen Salmonela türleri üzerinde bakteriyolojik ve serolojik çalışmalar. Doğa (Türk Veteriner ve Hayvancılık Dergisi), 14, (3): 428-438.
  • 12. Dreesen DW, Barnhart HM, Burke JL, Chen T and Johnson DC (1992): Frequency of Salmonlla enteritidis and other Salmonellae in the seca of spent hens at time of slaughter. Avian Dis, 36: 347-350.
  • 13. Durlu-Özkaya F (2000): Salmonella. Gıda Mikrobiyolojisi ve- Uygulamaları. M Akçelik, K Ayhan, İ Çakır, HB Doğan, V Gürgün, AK Halkman, D Kaleli, H Kuleaşân, F Durlu-Özkaya, N Tunail ve Ç Tükel (Editörler), 2. Baskı, 345-356, Sim Matbaacılık Ltd. Şti., Ankara.
  • 14. Gast RK (1997): Salmonella infections, Paratyphoid infections (in) Diseases of Poultry. BW Calnek, HC Bams, CW Beard, LR McDougald and YM Saif (Editors), 10th Ed.: 97-121, Iowa State University Press, Ames, Iowa, USA.
  • 15. Gökçen S ve Erganiş O (1996): İzmir mezbahalarında kesilen hayvanlardan Salmonella izolasyonu ve serotiplendirilmesi. Bornova Vet Kont Araşt Enst Müd Derg, 21 (3): 91-101.
  • 16. Gülyaz V ve Taştan II (1996): Erzurum ve Erzincan illerinde kanatlı hayvan mezbahalarının Salmonella yönünden taranması. Pendik Vet Mikrobiyol Derg, 27: 33-41.
  • 17. Holt JG, Krieg NR, Sneath PHA, Staley JT and Williams ST (1994): Facultatively Anaerobic Gram-negative Rods (in) Bergey's Manual of Determinative Bacteriology, 9th Ed., 175-290, Williams and Wilkins, 428 East Preston Street, Baltimore, Maryland 21202, USA.
  • 18. Hoover NJ, Kenney PB, Amick JD and Hypes WA (1997): Preharvest sources of Salmonella colonization in turkey production. Poult Sci, 76: 1232-1238.
  • 19. İzgür M (2002): Bakteriyel Enfeksiyonlar, Salmonella Enfeksiyonları, Bölüm 4. Kanatlı Hayvan Hastalıkları, 1. Baskı, 41-53, M İzgür ve M Akan (Editörler), Medisan Yayın Serisi No: 50, Medisan Yayınevi, Ankara.
  • 20. Kalender H ve Muz A (1999): Elazığ bölgesindeki tavuklardan izole edilen Salmonella türlerinin tiplendirilmesi. Tr J of Veterinary and Animal Sciences, 23, Ek Sayı 2: 297-303.
  • 21. Le Minor L (1984): Salmonella (in) Bergey's Manual of Systemic Bacteriology. NR Krieg and JG Holt (Editors), Vol. 1, 427-458, Williams and Wilkins, 428 East Preston Street, Baltimore, Maryland 21202, USA.
  • 22. Ley EC, Morishita TY, Brisker T and Harr BS (2001): Prevalence of Salmonella, Campylobacter, and Eschrichia coli on ostrich carcasses and the susceptibility of ostrich origin E. coli isolates to various antibiotics. Avian Dis, 45: 696-700.
  • 23. Matsumoto A, Miyama M and Murakami S (2001): Comparison of Salmonella isolation rates in different types of egg-layer hen houses in Chiba, Japan. Avian Dis, 45: 195-200.
  • 24. Osuchowska E, Jozwik E (1988): Occurrence of Salmonella saint-paul in poultry. Med Weter, 44 (1 1): 674- 676.
  • 25. Özdemir Ü (1996): Kanatlılardan izole edilen Salmonella suşlarının identifikasyonunda kullanılan metotlar üzerine araştırmalar. Pendik Vet Mikrobiol Derg, 27(2): 143- 162.
  • 26. Pedersen K, Hansen HC, Jorgensen JC, Borck B (2002): Serovars of Salmonella isolated from Dasnish turkeys between 1995 and 2000 and their antibiotic resistance. Vet Rec, 150 (4): 471-474.
  • 27. Poppe C, Irwin RJ, Forsberg CM, Clarke RC and Oggel J (1991): The Prevalence of Salmonella enteritidis and Other Salmonella spp. among Canadian registered commercial layer flocks. Epidemiol Infect, 106: 259-270.
  • 28. Poppe C, Kolar JJ, Demczuk WIIB and Harris JE (1995): Drug resistance and biochemical characteristics of Salmonella from turkeys. Can J Vet Res, 59: 241-248.
  • 29. Sander J, Hudson CR, Dufour-Zavala L, Waltman WD, Lobsinger C, Thayer SG, Otalora R, and Maurer JJ (2001): Dynamics of Salmonella contamination in a commercial quail operation. Avian Dis, 45: 1044-1049. .
  • 30. Sarma BJ, Dhanalakshymi K, Reddy BD, Chetty MS (1988): An outbreak due to Salmonella gallinarum in Japanese quails. Indian Vet J, 65 (1-2): 1139- 1140.
  • 31. Sojka VVJ, Wray C and McLaren I (1986): A survey of drug resistance in Salmonellae isolated from animals in England and Wales in 1982 and 1983. Br Vet J, 142 (4):-371-380.
  • 32. Sümbüloğlu K ve Sümbüloğlu V (1997): Biyoistatistik. 7. Baskı, 156-159, Hatiboğlu Yayınları, Ankara.
  • 33. Şanlı (1998): Kanatlılarda antibakteriyel sağaltım, Bilinçsiz ve amaç dışı ilaç kullanımından kaynaklanan sakıncalar, 844-855, 930-933, 2. Bölüm, Veteriner İlaç Rehberi ve Bilinçli İlaç Kullanımı El Kitabı, Ankara.
  • 34. Tayukçuoğlu F (1993): Bursa bölgesinde tavuklardan Salmonella gallinarum izolasyon ve identifikasyonu ile suşların antibiyotiklere duyarlılık üzerinde çalışmalar. Veterinarium, 4(1): 4-6.
  • 35. Verwoerd DJ (2000): Ostrich diseases. Rev Sci Tech, 19 (2): 638-661.
  • 36. Waltman WD, Ilorne AC, Pirkle C, and Dickson TG (1991): Use of delayed secondary enrichment for the isolation of Salmonella in poultry and poultry environments. Avian Dis, 35: 88-92.