Metin KONUŞ, CAN YILMAZ, NİZAMETTİN ÖZDOĞAN, Doğan ÇETİN, Nurhan KIZILKAN, Abdussamet KAYHAN

Yaygın Kullanılan Beş Farklı Antioksidan Kapasite Metodunun Şalgam Suyu Üzerinde Tekrarlanabilirliğinin ve Tutarlığının Test Edilmesi

Antioksidanlar, serbest radikallerin oluşmasını ya da radikalleri süpürerek hücrenin hasar görmesini engelleyen ve genellikle yapısında fenolik grup taşıyan moleküllere denmektedir. Antioksidan moleküller, vücut tarafından üretilebilmekte ya da gıdalar aracılığıyla vücuda alınabilmektedir. Günümüzde antioksidan kapasite ölçümleri için kullanılan birçok farklı metot bulunmaktadır. Bu metotlar genellikle test edilen maddelerin serbest radikalleri içeren bir çözelti içerisine eklenerek ölçülmesiyle gerçekleştirilmektedir. Bu yöntemler kullanılan tepkenin özelliğine bağlı olarak farklı sonuçlar verebilmektedir. Bu çalışmada, ticari olarak satılan ve ev yapımı olan şalgam numunelerinde beş farklı antioksidan kapasite metodunun (DPPH, ABTS, galvinoksil, fosfomolibden ve FRAP) tekrarlanabilirliği ve tutarlığı test edilmiştir. Çalışmanın sonucunda, test edilen şalgam suyu örneklerin antioksidan aktivitelerine bakılarak değerlendirme yapılmıştır. Bu örneklerinin antioksidan aktivitelerinin sıralamasına bakılarak yapılan (yüksekten düşüğe doğru) değerlendirme sonucunda DPPH, Galvinoksil, Fosfomolibden ve FRAP metodlarında ki sonuçların birbirine oldukça benzer olduğu belirlenmiştir. Buna karşın, ABTS metoduna göre elde edilen sıralama ise diğer metotlara göre farklılık göstermiştir. Çalışma sonucunda, DPPH, galvinoksil, fosfomolibden ve FRAP metotları sonuçlarının tutarlı ve tekrarlanabilir olduğu belirlenmiştir.

Testing of Reproducibility and Consistency of Commonly Used Five Different Antioxidant Capacity Methods on Turnip Juice

Antioxidants, usually contain phenolic groups, molecules may prevent the formation of free radicals or by blocking the radicals to prevent damage to the cell. Antioxidant molecules can be produced by the body or taken into the body through foods. Today, there are many different methods used to measure antioxidant capacity. In these methods, measurements are usually carried out by adding the tested substances into a solution containing free radicals. These methods can give different results depending on the characteristics of the reactant used. In this study, the reproducibility and consistency of five different antioxidant capacity methods (DPPH, ABTS, galvinoxil, phosphomolybdenum and FRAP) in commercially available and homemade turnip samples were tested. At the end of the study, antioxidant activities of the tested samples were evaluated. According to the evaluation of the antioxidant activities (from higher to lower) of these samples, the results of, DPPH, galvinoxyl, phosphomolybdenum and FRAP methods were very similar. However, ABTS method results showed difference compared to other method results. As a result of study, reproducibility and consistency of results of DPPH, galvinoxyl, phosphomolybdenum and FRAP methods were determined.

PDF

___

Anonim 2003. TS 11149 Şalgam Suyu Standardı. Türk Standartları Enstitüsü, https://intweb.tse.org.tr/standard/standard/Standard. aspx (Erişim Tarihi: 12.04.2019).
Aruoma OI, Grootveld M, Bahorun T. 2006. Free radicals in biology and medicine: from inflammation to biotechnology. Biofactors, 27(1‐4): 1-3.
Benzie IF, Strain JJ. 1996. The ferric reducing ability of plasma (FRAP) as a measure of “antioxidant power”: the FRAP assay. Analytical biochemistry, 239(1): 70-76.
Blois MS. 1958. Antioxidant determinations by the use of a stable free radical. Nature, 181(4617): 1199.
Büyüktuncel E. 2013. Toplam fenolik içerik ve antioksidan kapasite tayininde kullanılan başlıca spektrofotometrik yöntemler. Marmara Pharmaceutical Journal 17: 93-103
Frankel EN, Meyer AS. 2000. The problems of using one‐ dimensional methods to evaluate multifunctional food and biological antioxidants. Journal of the Science of Food and Agriculture, 80(13): 1925-1941.
Halliwell B, Gutteridge JM. 1986. Oxygen free radicals and iron in relation to biology and medicine: some problems and concepts. Archives of biochemistry and biophysics, 246(2): 501-514.
Hermsdorff HHM, Puchau B, Volp ACP, Barbosa KB, Bressan J, Zulet MÁ, Martínez JA. 2011. Dietary total antioxidant capacity is inversely related to central adiposity as well as to metabolic and oxidative stress markers in healthy young adults. Nutrition & metabolism, 8(1), 59.
Kırca A, Özkan M, Cemeroğlu B. 2006. Stability of blackcarrotanthocyanins in variousfruitjuicesandnectars. FoodChemistry, 97: 598-605.
Kong X, Zhou H, Hua Y. 2008. Preparation and antioxidant activity of wheat gluten hydrolysates (WGHs) using ultrafiltration membranes. Journal of the Science of Food and Agriculture, 88(5): 920-926.
Korkmaz AI, Akgul H, Sevindik M, Selamoglu Z. 2018. Study on determination of bioactive potentials of certain lichens. Acta Alimentaria. 47(1): 80-87.
Li Y, Jiang B, Zhang T, Mu W, Liu J. 2008. Antioxidant and free radical-scavenging activities of chickpea protein hydrolysate (CPH). Food chemistry, 106(2): 444-450.
Magalhães LM, Segundo MA, Reis S, Lima JL. 2008. Methodological aspects about in vitro evaluation of antioxidant properties. Analytica chimica acta, 613(1): 1-19.
Mazza G, Miniati E. 1993. Anthocyanin in fruits, vegetables and grains (p 32). Boca Raton, FL.CRC pres: (Alınmıştır: Kırca, A., Özkan, M. and Cemeroğlu, B., 2005. Stability of black carrotan thocyanins in various fruits juices and nectars. Food Chemistry. 97, 598-605.)
Miller NJ, Rice-Evans C, Davies MJ, Gopinathan V, Milner A. 1993. A novel method for measuring antioxidant capacity and its application to monitoring the antioxidant status in premature neonates. Clinical science, 84 (4): 407-412.
Nizamlıoğlu NM, Nas S. 2010. Meyve ve sebzelerde bulunan fenolik bileşikler; yapıları ve önemleri. Gıda Teknolojileri Elektronik Dergisi, Cilt 5(1): 20-35 s.
Özenç B. 2011. Fumaria Officinalis’ Un Antioksidan Aktivitesinin Belirlenmesi (Doktora tezi), Selçuk Üniversitesi Fen Bilimleri Enstitüsü, Konya, Türkiye.
Prakash A. 2001. Antioxidant activity. Med Lab Anal Prog 19(2):1–6
Prieto P, Pineda M, Aguilar M. 1999. Spectrophotometric Quantitation of Antioxidant Capacity Through the Formation of a Phosphomolybdenum Complex: Specific Application to the Determination of Vitamin E. Analitical Biochemistry. 269(2): 337-341.
Re R, Pellegrini N, Proteggente A, Pannala A, Yang M, RiceEvans C. 1999. Antioxidant biology and medicine, 26 (9-10): 1231-1237.activity applying an improved ABTS radical cation decolorization assay. Free radical
Sevindik M. 2019. The novel biological tests on various extracts of Cerioporus varius. Fresenius Environmental Bulletin, 28(5): 3713-3717.
Sevindik M. 2018. Antioxidant and antimicrobial activity of Cerrena unicolor. Mycopath. 16(1): 11-14
Shi H, Niki E. 1998. Stoichiometric and kinetic studies on Ginkgo biloba extract and related antioxidants. Lipids, 33 (4): 365.
Silva NKVD, Sabino LBDS, Oliveira LSD, Torres LBDV, Sousa PHMD. 2016. Effect of food additives on the antioxidant properties and microbiological quality of red guava juice. Revista Ciência Agronômica, 47(1): 77-85.
Tangüler H. 2010, Şalgam Suyu Üretiminde Etkili Olan Laktik Asit Bakterilerinin Belirlenmesi Ve Şalgam Suyu Üretim Tekniğinin Geliştirilmesi, (Doktora Tezi). Çukurova Üniversitesi, Fen Bilimleri Enstitüsü,Gıda Mühendisliği Anabilim Dalı,Adana
Üçok EF, Tosun H. 2012. Şalgam suyu üretimi ve fonksiyonel özellikleri. Celal Bayar Üniversitesi Fen Bilimleri Dergisi, 8(1): 17-26.
Yıldız L. 2007. Bazı bitki örneklerinde antioksidan kapasitenin spektrofotometrik ve kromatografik tayini. İstanbul Üniversitesi Fen Bilimleri Enstitüsü. Fen bilimleri estitüsü, Kimya anabilim dalı, Yüksek lisans tezi, İstanbul.