Vitis vinifera L.’de Floral Gelişme Aşamaları ve Fenolojik Safhalar ile İlişkilendirilmesi

Asmada çiçek salkımı taslaklarının (primordiyumlarının) birincisezonda gelişmesini takiben ikinci gelişme sezonunda çiçek ve çiçekorgan taslakları farklılaşmaktadır. Bu çalışmanın amacı, Merlot(Vitis vinifera L.) üzüm çeşidinde sürme sırasında ve sonrasındagözlerde ve çiçeklerde farklılaşma adına gerçekleşen olaylarıntanımlanması ve bu olayların fenolojik safhalar ileilişkilendirilmesidir. Ayrıca, çiçek organlarının farklı gelişmeaşamalarındaki boyutları mikroskop altında belirlenmiştir. 2016yılının 20 Mart ve 10 Mayıs tarihleri arasında her 5-10 günde biralınan örneklerin mikroskop altında dikkatlice incelenmesindensonra, asma floral gelişme aşamalarına 5 ara aşama eklenmiştir (taçyaprak taslağının görünmesini takiben erkek ve dişi organtaslaklarının tam olarak şekillenmesi). Bulgulara göre, çiçek salkımıile salkım üzerindeki her bir çiçeğin farklılaşmasının bahardagözlerin şişmesiyle birlikte olduğu görülmüştür. Çiçek salkımıtaslağının görünür hale gelmesinden yaklaşık olarak 3 hafta sonraerkek organlar ve dişi organ görülebilmiştir. Gelişim sonraki 3 haftaiçerisinde tamamlanmıştır. Çiçek taslağı 1 Nisan’da görülmüş vesonraki 5-6 haftalık dönemde boyutlarını %900’den fazla arttırmıştır.Generatif organ taslakları, 2-4 yaprak sürgünden ayrıldığı zamandagörülebilmiştir. Dişi organ tam şeklini aldığı dönemde, sürgünde 6-8yaprak büyümüş ve çiçek salkımları çıplak gözle ayırt edilebilirduruma gelmiştir.

Floral Development Stages in Vitis vinifera L. and Association With Phenological Stages

After the development of inflorescence primordia in the first season in Vitis, flower and floral organ differentiation take place in the second season. Aim of this study was to describe the differentiation events which occur in the compound buds and flowers during and after budbreak, and to associate these events with the phenological stages in Merlot (Vitis vinifera L.) grape cultivar. In addition, size of the floral organs was determined using microscopy, after careful examination of samples collected as buds and flowers under microscope at every 5 to 10 days. Between March 10 and May 10 in 2016, five interval stages (complete shaping of stamen and pistil primordia following petal primordia formation) were added. According to the results, differentiation of inflorescence and flower primordia occurred after bud swelling in the spring. Approximately 3 weeks after the appearance of inflorescence primordia, stamen and pistil were visible. The development was complete in the following 3 weeks. Flower primordium was sighted on April 1 and increased its size more than 900% in 5-6 weeks. Primordia of reproductive organ was seen when the 2-4 leaves separated from the shoot. By the time of pistil taking its final shape, there were 6-8 full leaves grown from the shoot and inflorescences were easily distinguishable by the naked eye.

___

  • Ağaoğlu YS 1971. A study on the differentiation and the development of floral parts in grapes (Vitis vinifera L. var.). Vitis 10:20-26.
  • Alleweldt G, Ilter E 1969. Untersuchungen über die Beziehungen zwischen Blütenbildung und Triebwachstum bei Reben. Vitis 8: 286-313.
  • Baggiolini M 1952. Les stades repères dans le développement annuel de la vigne et leur utilisation pratique. Revue romande d’Agriculture, de Viticulture et d’Arboriculture 8: 4-6.
  • Barnard C, Thomas JC 1933. Fruit bud studies II. The Sultana: Differentiation and development of the fruit buds. J. Counc. Sci. Ind. Res. Aust. 6: 285-294.
  • Caporali E, Spada A, Marziani G, Failla O, Scienza A 2003. The arrest of development of abortive reproductive organs in the unisexual flower of Vitis vinifera ssp. silvestris. Sex Plant Reprod. 15: 291- 300. doı:10.1007/s00497-003 0169-5.
  • Coombe BG 1995. Adoption of a system of identifying grapevine growth stages. Australian Journal of Grape and Wine Research 1: 104-110.
  • Considine JA, Knox RB 1979. Development and histochemistry of the pistil of the grape. Vitis vinifera. Ann. Bot. 43: 11-22.
  • Eichhorn KW, Lorenz H 1977. Phaenologische Entwicklungstadien der Rebe. Nachrichtenblatt des Deutschen Pflanzenschutzdienstes (Braunschweig) 2: 119-120.
  • Gerrath JM, Posluszny U 1988. Morphological and anatomical development in the Vitaceae. II. Floral development in Vitis riparia. Canadian Journal of Botany 66: 1334-1351.
  • Jackes BR 1984. Revision of the Australian Vitaceae. 1. Ampelocissus Planchon. Austrobaileya 2: 81-86.
  • Jones JE, Menary RC, Wilson SJ 2009. Continued development of V. vinifera inflorescence primordia in winter dormant buds. Vitis 48(3): 103-105.
  • Keller M 2015. The science of grapevines. Anatomy and Physiology. 2nd edn (Elsevier Academic Press: Burlington, MA, USA).
  • Li-Mallet A, Rabot A, Geny L 2016. Factors controlling inflorescence primordia formation of grapevine: their role in latent bud fruitfulness? A review.
  • Botany 94: 147-163, https://doi.org/10.1139/cjb2015-0108. Lorenz DH, the late Eichhorn KW, Bleiholder H, Klose R, Meier U, Weber E 1995. Phenological growth stages of the grapevine (Vitis vinifera L. ssp. vinifera)- Codes and descriptions according to the extended BBCH scale. Australian Journal of Grape and Wine Research 1: 100-110.
  • May P, Antcliff AJ 1973. The fruitfulness of grape buds. 1. Measuring bud fruitfulness on forced single-node cuttings. Annales de l'Amelioration des Plantes (Paris). 23(1): 1-12.
  • Noyce PW, Harper JDI, Steel CC, Wood RM 2015a. A new description and rate of development of inflorescence primordia over a full season in Vitis vinifera L. cv. Chardonnay. Am J Enol Vitic., ajev.2015.14050; published ahead of print September 03, 2015; DOI: 10.5344/ajev.2015.14050
  • Noyce PW, Harper JDI, Steel CC, Wood RM 2015b. A Practical Method of Staging Grapevine Inflorescence Primordia with Improved Description of Stages in Season One. Am J Enol Vitic., ajev.2015.14135; published ahead of print August 06, 2015; DOI: 10.5344/ajev.2015.14135
  • Ramos M, Coito J, Silva H, Cunha J, Costa M, Rocheta M 2014. Flower development and sex specification in wild grapevine. BMC Genomics 15: 1095.Scholefield PB, Ward RC 1975. Scanning electron microscopy of the developmental stages of the Sultana inflorescence. Vitis 14: 14-19.
  • Snyder JC 1933. Flower bud formation in the Concord grape. Bot. Gaz. 94: 771-779.
  • Spada A, Caporali E, Marziani G, Failla O, Scienza A 2003. The arrest of development of useless reproductive organs in the unisexual flower of Vitis vinifera ssp silvestris. Acta Hortic. 603: 225-228. doi: 10.17660/ActaHortic.2003.603.31
  • Srinivasan C, Mullins MG 1981. Physiology of flowering in the grapevine–A review. Am. J. Enol. Vitic. 32: 47-63.
  • Srinivasan C, Mullins MG 1976. Reproductive anatomy of the grapevine (Vitis vinifera L.): origin and development of the anlage and its derivatives. Annals of Botany 38: 1079-1084.
  • Swanepoel JJ, Archer E 1988. The ontogeny and development of Vitis vinifera L. cv. Chenin blanc inflorescence in relation to phenological stages. Vitis 27: 133-141.
  • Timmons SA, Posluszny U, Gerrath JM 2007. Morphological and anatomical development in the Vitaceae. IX. Comparative ontogeny and phylogenetic implications of Vitis rotundifolia Michx. Can J Bot 85(9): 850-859.
  • Watt AM, Dunn GM, May PB, Crawford SA, Barlow EWR 2008. Development of inflorescence primordia in Vitis vinifera L. cv. Chardonnay from hot and cool climates. Australian Journal of Grape and Wine Research 14: 46-53.
KSÜ Tarım ve Doğa Dergisi-Cover
  • ISSN: 2619-9149
  • Yayın Aralığı: Yılda 6 Sayı
  • Başlangıç: 2018
Sayıdaki Diğer Makaleler

Sulama Kanal Çeşitleri ve Uzunluklarının Sulama Performans Göstergelerine Etkisi

Si̇nan KARTAL, Hasan DEĞİRMENCİ, Fırat ARSLAN

Öncül Afidikolin ve Nokodazol Muamelesinin Kanserli ve Ölümsüzleştirilmiş Mezotelyum Hücrelerinde Kapsaisin Sitotoksitesine Etkisi

Sabahattin CÖMERTPAY, Gizem CEYLAN

Sulama Performansının Değerlendirilmesi: Kırıkhan Sulama Birliği Örneği

Mehmet GENÇOĞLU, Hasan DEĞİRMENCİ

Comparison of Conventional PCR Method With Cefoxitin Disc Diffusion, Automated System and Isolation on Chromogenic MRSA Medium Methods for The Detection of Meticillin Resistance In Staphylococcus aureus Strains Isolated From Various Clinical Specimens

Esra KAYA, Murat ARAL, ZERİFE ORHAN, Kezban Tülay YALÇINKAYA, Hacer UĞURLU

Determination of the Species of Tephritidae family (Diptera) on Cherry Orchards in Adana Province and Surroundings in Turkey

Burcu Özbek ÇATAL, Asime Filiz ÇALIŞKAN KEÇE, Mehmet Rıfat ULUSOY

Dorycnium pentaphyllum Ekstraktının İnsan Meme, Karaciğer ve Akciğer Kanseri Hücrelerindeki Seçici Sitotoksik Etkisi

İbrahim TURAN, Yüksel ALİYAZICIOĞLU, Sema MISIR, Selim DEMİR

Tuz Stresinin Yem Bezelyesi (Pisum sativum ssp. arvense L.) Seçilmiş Genotipinde Çimlenme ve Fide Gelişimi Üzerine Etkileri

GÜRKAN DEMİRKOL, Nuri YILMAZ, Özlem ÖNAL AŞCI

Katı Faz Fermantasyon Tekniği ile Bacillus circulans ATCC 4516’dan Ekstrasellüler βGalaktosidaz Üretimi

Besi SERİN, Nurullah AKCAN

Patlıcan Tohumlarında Bitki Büyüme Düzenleyici Rizobakteri Uygulamalarının Kurşuni Küf (Botrytis cinereaPers.: Fr.) Hastalığına Etkileri Pers.: Fr.) Hastalığına Etkileri Pers.: Fr.) Hastalığına Etkileri

Gülperi ÇİFTÇİ, Hacer Handan ALTINOK

Türkiye Florası İçin Yeni Dianthus (Caryophyllaceae) Kayıtları

ERGİN HAMZAOĞLU, MURAT KOÇ