Diagnostic Efficacy of Copro-ELISA for Detection of Fasciolosis in Cattle and Buff aloes in Punjab Province, Pakistan

Fasciolosis is a food borne zoonotic trematode disease that causes liver damage in ruminants and humans. The information recorded on the prepatent diagnostic methods is limited with low sensitivity. The study aimed to investigate the diagnostic efficacy of coproantigens by using in house developed indirect enzyme linked immunosorbent assay (ELISA). Adult helminths were collected from the bile duct of buff aloes for the extraction of excretory secretory (ES) and somatic (SA) antigens. The polyclonal antibodies were produced by immunization of rabbits with SA and ES antigens of Fasciola. Kappa value of developed ELISA was calculated to check the diagnostic performance of the test. The mean absorbance values at diff erent concentrations of coproantigens were significantly diff erent (P≤0.001) from controls. However, the diff erence was not significant among the concentrations of coproantigen. A positive linear relationship was observed to the concentration of antigens used in fecal supernatant and the absorbance values. The sensitivity and specificity of diagnostic test with ES-polyclonal antibodies were 100% (95% CI: 89.42%-100.00%) and 76.19% (95% CI: 52.83.30%-91.78%), respectively. Kappa value revealed that the strength of agreement is almost substantial. The SA-polyclonal antibodies showed the specificity and sensitivity of diagnostic test were 100% (95% CI: 89.42%-100.00%) and 90.00% (95% CI: 68.30%-98.77%), respectively. However, Kappa value of the test revealed that the strength of agreement is perfect. The result provides information that will add sensitive diagnostic methods for the detection of fasciolosis.

Pakistan’ın Pencap Eyaletinde Sığır ve Mandalarda Fasciolozis’in Tespitinde Copro-ELISA’nın Tanısal Etkinliği

Fasciolozis, geviş getiren hayvanlarda ve insanlarda karaciğer hasarına neden olan gıda kaynaklı zoonotik bir trematod hastalığıdır. Prepatent tanı yöntemleri ile elde edilen diagnostik bilgiler düşük hassasiyetli ve sınırlıdır. Bu çalışma, in house geliştirilen indirekt Enzyme Linked Immunosorbent Assay (ELISA) kullanılarak koproantijenlerin tanısal etkinliğinin araştırılmasını amaçlamıştır. Ekskretuar sekretuar (ES) ve somatik (SA) antijenlerin ekstraksiyonu için kullanılacak erişkin helmintler bufaloların safra kanallarından toplandı. Fasciola’nın SA ve ES antijenleri ile tavşanların immunizasyonunu takiben poliklonal antikorlar üretildi. Geliştirilen ELISA testinin tanısal performansını kontrol etmek için Kappa değeri hesaplandı. Koproantijenlerin farklı konsantrasyonlardaki ortalama absorbans değerleri, kontrollerden önemli ölçüde farklı saptandı (P≤0.001). Fakat, koproantijen konsantrasyonları arasındaki fark önemli değildi. Fekal süpernatanda kullanılan antijenlerin konsantrasyonu ile absorbans değerleri arasında pozitif linear bir ilişki gözlemlendi. ES-poliklonal antikorlarla yapılan diagnostik testin duyarlılığı %100 (%95 CI: %89.42-100.00) ve özgüllüğü %76.19 (%95 CI: %52.83-91.78) saptandı. Kappa değeri, uyum gücünün neredeyse önemli derecede olduğunu ortaya koydu. SA-poliklonal antikorlarlarla yapılan diagnostik testin özgüllüğü %100 (%95 CI: %89.42-100.00) ve duyarlılığı %90.00 (%95 CU: %68.30-98.77) saptandı. Ancak, testin Kappa değeri, uyum gücünün mükemmel olduğunu ortaya koydu. Bulgular, fasciolozisin tespiti için hassas tanı yöntemlerine ek bilgi sağlayacak niteliktedir.

___

1. Mehmood K, Zhang H, Sabir AJ, Abbas RZ, Ijaz M, Durrani AZ, Saleem MH, Ur Rehman M, Iqbal MK, Wang Y, Ahmad HI, Abbas T, Hussain R, Ghori MT, Ali S, Khan AU, Li J: A review on epidemiology, global prevalence and economical losses of fasciolosis in ruminants. Microb Pathog, 109, 253-262, 2017. DOI: 10.1016/j.micpath.2017.06.006

2. Carmona C, Tort JF: Fasciolosis in South America: Epidemiology and control challenges. J Helminthol, 91 (2): 99-109, 2017. DOI: 10.1017/ s0022149x16000560

3. Barbosa R, Pinto C, Garcia P, Rodrigues A: Prevalence of fasciolosis in slaughtered dairy cattle from São Miguel Island, Azores, Portugal. Vet Parasitol Reg Stud Reports, 17:100319, 2019. DOI: 10.1016/j.vprsr. 2019.100319

4. Becker AC, Kraemer A, Epe C, Strube C: Sensitivity and efficiency of selected coproscopical methods-sedimentation, combined zinc sulfate sedimentation-flotation, and McMaster method. Parasitol Res, 115 (7): 2581-2587, 2016. DOI: 10.1007/s00436-016-5003-8

5. Brockwell YM, Elliott TP, Anderson GR, Stanton R, Spithill TW, Sangster NC: Confirmation of Fasciola hepatica resistant to triclabendazole in naturally infected Australian beef and dairy cattle. Int J Parasitol Drugs Drug Resist, 4 (1): 48-54, 2014. DOI: 10.1016/j.ijpddr.2013.11.005

6. Spithill TW, Smooker PM, Copeman DB: Fasciola gigantica: epidemiology, control, immunology and molecular biology. In, Dalton JP (Ed): Fasciolosis. Chapter 15, 465-525, CABI Publishing, Oxon, UK, 1999.

7. Sriveny D, Raina OK, Yadav SC, Chandra D, Jayraw AK, Singh M, Velusamy R, Singh BP: Cathepsin L cysteine proteinase in the diagnosis of bovine Fasciola gigantica infection. Vet Parasitol, 135 (1): 25-31, 2006. DOI: 10.1016/j.vetpar.2005.10.016

8. Rojas CAA, Jex AR, Gasser RB, Scheerlinck JPY: Techniques for the diagnosis of Fasciola infections in animals: room for improvement. Adv Parasitol, 85, 65-107, 2014. DOI: 10.1016/B978-0-12-800182-0.00002-7

9. Sánchez-Andrade R, Paz-Silva A, Suárez J, Panadero R, Pedreira J, Díez-Baños P, Morrondo P: Effect of fasciolicides on the antigenaemia in sheep naturally infected with Fasciola hepatica. Parasitol Res, 87 (8): 609- 614, 2001. DOI: 10.1007/s004360100425

10. Mezo M, González-Warleta M, Carro C, Ubeira FM: An ultrasensitive capture ELISA for detection of Fasciola hepatica coproantigens in sheep and cattle using a new monoclonal antibody (MM3). J Parasitol, 90 (4): 845-852, 2004. DOI: 10.1645/GE-192R

11. Mezo M, González-Warleta M, Ubeira FM: Optimized serodiagnosis of sheep fascioliasis by Fast-D protein liquid chromatography fractionation of Fasciola hepatica excretory–secretory antigens. J Parasitol, 89 (4): 843- 849, 2003. DOI: 10.1645/GE-74RI.1

12. Bradford MM: A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein-dye binding. Anal Biochem, 72, 248-254, 1976.

13. Ahmad G, Nizami WA: Coproantigens: Early detection and suitability of an immunodiagnostic method for echinococcosis in dogs. Vet Parasitol, 77 (4): 237–244, 1998. DOI: 10.1016/S0304-4017(98)00124-1

14. George SD, Vanhoff K, Baker K, Lake L, Rolfe PF, Seewald W, Emery DL: Application of a coproantigen ELISA as an indicator of efficacy against multiple life stages of Fasciola hepatica infections in sheep. Vet Parasitol, 246, 60-69, 2017. DOI: 10.1016/j.vetpar.2017.08.028

15. Bostanci A, Oğuz B: Copro-ELISA prevalence of Fasciola hepatica in cattle in Van, Turkey. Acta Sci Vet, 45:1465, 2017. DOI: 10.22456/1679- 9216.80253

16. Lagatie O, Verheyen A, Van Hoof K, Lauwers D, Odiere MR, Vlaminck J, Levecke B, Stuyver LJ: Detection of Ascaris lumbricoides infection by ABA-1 coproantigen ELISA. PLoS Negl Trop Dis, 14 (10): e0008807, 2020. DOI: 10.1371/journal.pntd.0008807

17. Jara LM, Rodriguez M, Altamirano F, Herrera A, Verastegui M, Gímenez-Lirola LG, Gilman RH, Gavidia CM: Development and validation of a copro-enzyme-linked immunosorbent assay sandwich for detection of Echinococcus granulosus–soluble membrane antigens in dogs. Am J Trop Med Hyg, 100 (2): 330-335, 2019. DOI: 10.4269/ ajtmh.18-0645

18. Martínez-Sernández V, Orbegozo-Medina RA, González-Warleta M, Mezo M, Ubeira FM: Rapid enhanced MM3-COPRO ELISA for detection of Fasciola coproantigens. PLoS Negl Trop Dis, 10 (7): e0004872, 2016. DOI: 10.1371/journal.pntd.0004872

19. Abdel-Rahman SM, O’Reilly K, Malone JB: Evaluation of a diagnostic monoclonal antibody-based capture enzyme-linked immunosorbent assay for detection of a 26- to 28-kD Fasciola hepatica coproantigen in cattle. Am J Vet Res, 59 (5): 533-537, 1998.

20. Almazán C, Avila G, Quiroz H, Ibarra F, Ochoa P: Effect of parasite burden on the detection of Fasciola hepatica antigens in sera and feces of experimentally infected sheep. Vet Parasitol, 97 (2): 101-112, 2001. DOI: 10.1016/S0304-4017(01)00376-4

21. Viscidi R, Laughon BE, Hanvanich M, Bartlett JG, Yolken R: Improved enzyme immunoassays for the detection of antigens in fecal specimens. Investigation and correction of interfering factors. J Immunol Methods, 67 (1): 129–143, 1984. DOI: 10.1016/0022-1759(84)90092-9

22. Espino AM, Marcet R, Finlay CM: Detection of circulating excretory– secretory antigens in human fasciolosis by sandwich enzyme-linked immunosorbent assay. J Clin Microbiol, 28 (12): 2637–2640, 1990. DOI: 10.1128/jcm.28.12.2637-2640.1990

23. Deplazes P, Gottstein B, Stingelin Y, Eckert J: Detection of Taenia hydatigena coproantigens by ELISA in dogs. Vet Parasitol, 36 (1-2): 91-103, 1990. DOI: 10.1016/0304-4017(90)90097-U

24. Hanna REB, Hillyer GV: Fasciola hepatica and Schistosoma mansoni: Immunofluorescent antigen localization and cross-reactivity. Exp Parasitol, 57 (1): 1-14, 1984. DOI: 10.1016/0014-4894(84)90055-9
Kafkas Üniversitesi Veteriner Fakültesi Dergisi-Cover
  • ISSN: 1300-6045
  • Yayın Aralığı: Yılda 6 Sayı
  • Başlangıç: 1995
  • Yayıncı: Kafkas Üniv. Veteriner Fak.
Sayıdaki Diğer Makaleler

Gossypin’in Fare Mekano-Biyoregülatör Modeli Deneysel Femur Kırıklarında Kırık İyileşmesi Üzerine Etkileri

Veysel TAHIROGLU, Kadri YILDIZ, Mehmet Fatih TURALIOGLU, Fatih BOY, Serdar YIGIT

Activity of Disinfecting Biocides and Enzymes of Proteases and Amylases on Bacteria in Biofilms

Mykola KUKHTYN, Vladislav KOZHYN, Victor HORIUK, Zoya MALIMON, Yulia HORIUK, Tetyana YASHCHUK, Sergiy KERNYCHNYI

L-Karnitin İlave Edilmiş Sulandırıcılar Bal Arısı (Apis mellifera) Spermatozoası’nın Çözdürme Sonrası Kalitesini Arttırır

Zekariya NUR, Burcu USTUNER, Selim ALCAY, Hakan SAGIRKAYA, Selvinar CAKMAK, Ibrahim CAKMAK, Ahmet AKTAR, Melih YILMAZ, Mustafa AKKASOGLU, Seyma TASKIRAN, Elif AYAZ

Determination of Hemato-Biochemical Biomarkers, Associated Risk Factors and Therapeutic Protocols for Pregnancy Toxemia in Beetal Goats

Yasir Razzaq KHAN, Aneela Zameer DURRANI, Muhammad IJAZ, Ahmad ALI, Rabia Liaqat KHAN, Kashif HUSSAIN, Ameer Hamza RABBANI

Travmalı Köpeklerde Travma İçin Sonografi İle Odaklı Değerlendirme Protokolü ve Hayvan Travma Triyajı Skorlama Sisteminin Karşılaştırılması

Elgin Orcum UZUNLU, Nuriza ZAMIRBEKOVA, Kurtulus PARLAK, Nuri YAVRU, Eyup Tolga AKYOL

Predicting The Growth Curve of Body Weight in Madura Cattle

Hartati HARTATI, Widya PİNTAKA BAYU PUTRA

Ovaryum Torsiyonu Uygulanmış Ratlarda Chrisinin Koruyucu Etkisi

Yıldıray BAŞBUĞAN, Ahmet Ufuk KÖMÜROĞLU, Deniz DİRİK, Uğur ÖZDEK, Pınar KOLUSARI, Volkan KOŞAL, Ömer Faruk KELEŞ

Clostridium perfringens’e Karşı Alum Presipite ve Yağ Adjuvanlı Multivalan Aşıların Hazırlanması ve Değerlendirilmesi

Aftab Ahmad ANJUM, Madeeha TARIQ, Ali Ahmad SHEIKH, Ali Raza AWAN, Muhammad Asad ALİ, Mian Muhammad Khubaib SATTAR, Shahid HUSSAIN, Tehreem ALI

Madura Sığırlarında Vücut Ağırlığı Büyüme Eğrisinin Tahmini

Widya PINTAKA BAYU PUTRA, Hartati HARTATI

Maggot Debridman Tedavi İle Bir Kedinin Post-operatif Enfekte Yarasının Sağaltımı

Uğur USLU, Onur CEYLAN, Abdullah KÜÇÜKYAĞLIOĞLU, Hüseyin Koray AKDENİZ