Trakya yöresindeki sığırlarda leptospira interrogans antikorlarının elisa ve mikroskobik aglutinasyon testi (MAT) ile belirlenmesi ve kesime gönderilen sığırlarda leptospirozis üzerine bakteriyolojik çalışmalar

Trakya yöresinde mezbahalara kesime sevk edilen 96 sığırın böbrek örneklerinden karanlık saha mikroskobu ile yapılan bakteriyoskopi sonucunda, leptospiralar görülmedi ve örneklerden EM.IH besiyerine yapılan ekimler sonucunda da leptospira izole edilmedi. Ayrıca, böbrek örnekleri incelenen 96 ve yöredeki dört ile (istanbul, Edirne, Kırklareli, Tekirdağ) ait çiftliklerde yetiştirilen 96 sığır olmak üzere toplam 192 sığırın kan serumları MAT ve ELISA ile incelendi. MAT ile yedi (%3.65) serum pozitif bulundu. Bunların altı (%85.7)'sında serovar hardjo'ya bir (%14.3)'inde serovar grippotyphosa'ya karşı antikor saptandı. ELISA ile 12 (%6.25) serum örneği pozitif bulundu ve 10 (%83.3)'unda serovar hardjo'ya, iki (%16.7)'sinde serovar grippotyphoso' ya karşı antikor saptandı. Her iki test ile de incelenen diğer serovarlara karşı antikor saptanmadı. MAT standart test olarak alındığında, ELISA'nm özgünlüğü %96.8 ve duyarlılığı %85.7 olarak belirlendi. Her iki testin sonucuna göre infeksiyonun prevalansı dişi hayvanlarda erkeklere oranla daha yüksek saptandı. ELISA bulgularına göre aradaki fark istatistiksel olarak önemli bulundu (p

Detection of leptospira interrogans antibodies by ELISA and microscopic agglutination test (MAT) in cattle in Trakya district, and bacteriological studies on leptospirosis in slaughtered cattle

Leptospires could not be demonstrated by dark-field microscopy or cultured with EMJH medium in the kidney tissue samples of 96 slaughtered cattle in Trakya district. In the matches blood sera and the blood sera of 96 cattle raised in different farms located in four provinces (Istanbul, Edirne, Kırklareli and Tekirdağ) of the district, seven (3.65%) were determined to be positive by MAT. Antibodies to serovar hardjo and grippotyphom were delected in six (85.7%) and in one (14.3%) of seven sera, respectively. In ELISA, 12 (6.25%) of 192 sera were found to have antibodies. Antibody prevalences in these 12 sera to serovar hardjo and grippotyplivsa were determined as 10 (83.3%) and two (16.7%), respectively. Antibodies to the other serovars used in the study were not found in the both tests. The sensitivity and specificity of ELISA were calculated to be 85.7 % and 96.8 %, respectively when MAT was considered as a reference test. The seroprevalence of the infection was higher in females than in males by the both tests while in ELISA the difference by sex was found statistically significant (p

___

  • 1.Artla, M., Minbay, A., Leloğlu, N., Aydın, N., Kahraman, M., Akay, Ö., İlgaz, A., İzgür, M., Diker, S.: Özel Mikrobiyoloji. 4. Baskı, Ankara, Medisan Yayınevi, 1997.
  • 2.Bolin, C.A., Alt, D.P., Zuerner, R.L.: Protection of cattle from infection with Leptospira borgpetersenii serovar harcljo. International Leptospirosis Society. Second Meeting on Leptospirosis, Marysville, Australia, 1999.
  • 3.Bulu, A., Dörteller, R., Özkan, Ö., Hoştürk, F.: Doğu Anadolu'nun bazı illerinde sığır ve koyunlarda leptospirosis vak'aları, yayılışı ve sero tipleri üzerine araştırma. Etlik Vet. Mikrobiyol. Derg., 1990; 6 (6): 49-60.
  • 4.Cole, J.R., Catherine, R.S., Pursell, A.R.: Improved microtechnique for the leptospiral Microscopic Agglutination Test. Appl. Microbiol., 1973; 25 (6): 976-980.
  • 5.Çetinkaya, B., Ertaş, H.B., Muz, A., Öngör, H., Kalender, H., Özdemir, V.: Elazığ ilinde sığırlarda leptospirosis'in seroprevalanslarının saptanması. Tr. J. Vet. Anim. Sci.,1999; 23 (2): 1-7.
  • 6.Diker, K.S.: Epidemiyoloji. A.Ü. Veteriner Fakültesi Öğrenci Ders Notu, Ankara, 1994.
  • 7.Ellis, W.A.: The diagnosis of abortion due to Leptospira interrogans serovar hardjo. 21Kİ International Symposium of Laboratory Diagnosticians, Lucerne, Switzerland, 1981; 149-151.
  • 8.Ellis, W.A., O'brien, J.J., Cassells, J.: Role of in the maintenance of Leptospira interrogans serotype hardjo infection in Northern Ireland. Vet. Rec, 1981; 108: 555-557.
  • 9.Ellis, W.A., O'brien, J.J., Neill, S.D., Ferguson, H.W., Hanna, J.: Bovine Leptospirosis: Microbiolgical and serological findings in aborted fetuses. Vet. Rec, 1982; 110: 147-150.
  • 10.Ertaş, H.B., Çetinkaya, B., Muz, A., Öngör, H., Özdenıir, V., Yazıcıoğlu, N.: Sığırlarda Leptospirosis'in tanısında MAT ve ELISA'nın kullanımı. IV. Ulusal Veteriner Mikrobiyoloji Kongresi, Ankara, 2000: 46.
  • 11.Evrim, M., Güneş, H.: Biyometri Ders Notları. İ.Ü. Vet. Fak. Yayın No: 81. İstanbul,1998; 27-43.
  • 12.Faine, S., Adler, B., Bolin, C, Perolat, P.: Leptospira and Leptospirosis. 2. Ed. Melbourne, Australia, Medisci., 1999.
  • 13.Gregoire N., Higgins R., Robinson Y.: Isolation of leptospires from nephritic kidneys of beef cattle at slaughter. Am. J. Vet. Res., 1987; 48 (3): 370-371.
  • 14.Hathaway S.C., Little T.W.A.: Epidemiological study of Leptospira hardjo infection in second calf dairy cows. Vet. Rec, 1983; 112: 218-218.
  • 15.Hodges, R.T., Ekdahl, M.O.: Use of Flourescent Antibody Technique for the serological differentiation of leptospiral serotypes in cultures and bovine urine. N. Z. Vet. J., 1973;21: 109-115.
  • 16.Leonard, F.C., Quins, P.J., Ellis, W.A.: Association between cessation of leptospiruria in cattle and urinary antibody levels. Res. Vet. Sci. 1993; 55: 195-202.
  • 17.Miller, D.A., Wilson, M.A., Beran, G.W.: Survey to estimate prevalance of Leptospira interrogans infection in mature cattle in the United States. Am. J. Vet. Res., 1991; 52 (11): 1761-1765.
  • 18.Milner, A.R., Wilks, C.R., Calvert, K.: The prevalence of antibodies to members of Leptospira interrogans in cattle. Aust. Vet. J., 1980; 56: 327-330.
  • 19.Özdemir, V.: Türkiye'de leptospirozisinin dağılımı ve serotiplendirilmesi üzerine bir çalışma. I. Ulusal Veteriner Mikrobiyoloji Kongresi, Ankara, 1994.
  • 20.Özkan, Ö., Dörteller, R., Hoştürk, F.: Erzurum ili ve yöresindeki sığır ve koyunlarda sarılık ve kan işeme semptomlarıyla seyreden hastalıklarda Clostridium oedematiens, leptospira ve kan protozoonlarının insidansının belirlenmesi. Etlik Vet. Mikrobiyol. Der., 1993; 7 (4): 97-104.
  • 21.Roth, E.E., Galton, M.M.: Isolation and identification of Leptospira hardjo from cattle in Lousiana. Am. J. Vet. Res., 1960; 5: 422-427.
  • 22.Schönberg, A., Plageman, R., Korver, H.: Isolation of Leptospira interrogans serovar hardjo from cattle on A dairy farm in Germany. VIII th Meeting of European Leptospira Workers. Rome, 1994.
  • 23.Staak, C, Mekaprateep, M., Kampe, IL, Schönberg, A.: Serological reactions of leptospirosis - positive (MAT and CFT) bovine sera in ELISA. J. Vet. Med., 1990; 37: 582-586.
  • 24.Surujballi, O., Henning, D., Marenger, R., Howlett, C: Development of a monoclonal antibody-based competitive enzyme-linked immunosorbent assay for the detection of Leptospira borgpetersenii serovar hardjo type hardjo-bovis antibodies in bovine sera. Can. J. Vet. Res., 1997; 61: 267-274.
  • 25.Şahin, M., Aydın, F., Özdemir, V., Genç, O., Güler, M.A.: Kars ve Ardahan illerinde sığır leptospirozisinin kültürel ve serolojik yöntemlerle araştırılması. IV. Ulusal Veteriner Mikrobiyoloji Kongresi, Ankara, 2000: 48.
  • 26.Terpstra, W.J., Njenga, R., Korver, H., Ligthart, G.S.: ELISA for the detection of leptospirosis in Kenya. E. Afr. Med. J., 1987; 64: 49-54.
  • 27.Thierman, A.B.: Bovine leptosoirosis: Bacteriologic versus serologic diagnosis of cows at slaughter. Am. J. Vet. Res., 1983; 44 (12): 2244-2245.
  • 28.Treml, A., Nesnalova, E.: Leptospirosis in slaugter cattle - serological and bacteriological examinations. Vet. Med. - Czech., 1995; 40 (10): 305-309.
  • 29.Vasconcellos, S.A., Barbarani, J.O., Umehara, O., Morais, Z.M., Cortez, A., Pinherio, S.R., Fereira, F., Favero, A., Neto, J.S.: Bovine leptospirosis: Occurence and most prevalent serovars in farms from states of south, southeastern and center regions of Brazil. International Leptospirosis Society Second Meeting on Leptospirosis, Marysville, Australia, 1999.
  • 30.White, F.H., Sulzer, K.R., Engel, R.W.: Isolation of Leptospira interrogans serovars hardjo, balcanica, and pomona from cattle at slaughter. Am. J. Vet. Res., 1982; 43, (7): 1172-1173.