Yerli Kara ve İsviçre Esmeri Irkı Sığırların Kolostrum Kalitesinin Karşılaştırılması

Ruminant plasentaları sindesmokoryal tipte olduğu için maternal sirkülasyonla yavru sirkülasyonubirbirinden ayrılmaktadır. Bu sebeple yenidoğan buzağılar neonatal dönem olarak da isimlendirilendoğumu takiben ilk 28 günlük periyotta, annelerinin kolostrumundan alacakları bağışıklıkbileşenlerine ihtiyaç duyarlar. Pasif immun transfer başarısı için toplam kolostralImmunlobülinlerinlerin %85-90’ını oluşturan Immunglobülin G’nin kolostrumdaki miktarı kalitenoktasında belirleyicidir. Çalışmanın amacı; yerli gen kaynaklarımızdan olan Yerli Kara ırkı sığırlarile kombine verimli bir kültür ırkı olan İsviçre Esmeri’nin kolostrum kalitelerinin karşılaştırılmasıdır.Çalışmanın hayvan materyalini 40 saf Yerli Kara sığır ve 39 saf İsviçre Esmeri sığır oluşturdu.Kolostrum Immunglobulin G seviyesi ELISA yöntemi kullanılarak belirlendi. Yerli Kara ve İsviçreEsmeri sığırların tanımlayıcı istatistik verilerine göre ortalama Immunglobulin G konsantrasyonlarısırasıyla; 133.1±77.28 mg/mL, 74.60±28.44 mg/mL olduğu tespit edildi. İki grup arasındakiImmunglobulin G verileri bağımsız t testi ile karşılaştırıldığında istatistiksel olarak önemli olduğutespit edildi (P

Colostrum Quality Comparison of Native Black and Brown Swiss Breed Cattle

Maternal circulation and calf circulation are separated from each other since the type of ruminant placenta is syndesmochorial. Therefore, newborn calves need the immunity compounds from the colostrum of their mothers in the first 28 days after birth, which is also called neonatal period. The amount of Immunoglobulin G, which constitutes 85-90% of the total immunoglobulin, plays a significant role in determining the quality in the colostrum for an effective passive immune transfer. The aim of this study was to compare the colostrum quality of Native Black breed cattle, which is one of our native gene sources, and Brown Swiss cattle, which is a combined milk-oriented culture breed. The animal material of the study consisted of 23 pure Native Black cattle and 43 pure Brown Swiss cattle. ELISA method was used to determine the colostrum immunoglobulin G level. According to the descriptive statistical data of Native Black and Brown Swiss cattle, mean Immunoglobulin G concentrations were found as 133.1±77.28 mg/mL and 74.60±28.44 mg/mL, respectively. Immunoglobulin G data between the two groups were found to be statistically significant when compared with the independent t-test. (P

___

  • 1. Gökçe E, Erdoğan HM. Neonatal buzağılarda kolostral immünoglobulinlerin pasif transferi. Türkiye Klinikleri Veteriner Bilimleri Dergisi 2013; 4: 18-46.
  • 2. Jaster E. Evaluation of quality, quantity, and timing of colostrum feeding on immunoglobulin G1 absorption in Jersey calves. J Dairy Sci 2005; 88: 296-302.
  • 3. Maunsell FP, Morin DE, Constable PD, Hurley WL, McCoy GC. Use of mammary gland and colostral characteristics for prediction of colostral IgG1 concentration and intramammary infection in Holstein cows. Journal of the American Veterinary Medical Association 1999; 214: 1817- 1823.
  • 4. Godson D, Acres S, Haines D. Failure of passive transfer and effective colostrum management in calves. Large Animal Veterinary Rounds 2003; 3: 1-6.
  • 5. Morrill K, Conrad E, Lago A, et al. Nationwide evaluation of quality and composition of colostrum on dairy farms in the United States. J Dairy Sci 2012; 95: 3997-4005.
  • 6. Morrill KM, Condar E, Polo J, et al. Estimate of colostral immunoglobulin G concentration using refractometry without or with caprylic acid fractionation. J Dairy Sci 2012; 95: 3987-3996.
  • 7. Pritchett LC, Gay CC, Besser TE, Hancock DD. Management and production factors influencing immunoglobulin G1 concentration in colostrum from Holstein cows. Journal of dairy science 1991; 74: 2336- 2341.
  • 8. Quigley Iii JD, Martin KR, Dowlen HH, Wallis LB, Lamar K. Immunoglobulin concentration, specific gravity, and nitrogen fractions of colostrum from Jersey cattle. J Dairy Sci 1994; 77: 264-269.
  • 9. Swan H, Godden S, Bey R, et al. Passive transfer of immunoglobulin G and preweaning health in Holstein calves fed a commercial colostrum replacer. J Dairy Sci 2007; 90: 3857-3866.
  • 10. Crouch CF, Oliver S, Hearle DC, et al. Lactogenic immunity following vaccination of cattle with bovine coronavirus. Vaccine 2000; 19: 189-96.
  • 11. Devery-Pocius J, Larson B. Age and previous lactations as factors in the amount of bovine colostral immunoglobulins. J Dairy Sci 1983; 66: 221-226.
  • 12. Donovan GA, Badinga L, Collier RJ, Wilcox CJ, Broun RK. Factors influencing passive transfer in dairy calves. J Dairy Sci 1986; 69: 754-759.
  • 13. Godden S, Colostrum management for dairy calves. Veterinary Clinics of North America: Food Animal Practice 2008; 24: 19-39.
  • 14. Mohammed H, Shearer J, Brenneman J. Transfer of immunoglobulins and survival of newborn calves. The Cornell Veterinarian 1991; 81: 173.
  • 15. Murphy BM, Drennan MJ, Mara FPO, Earley B. Cow serum and colostrum immunoglobulin (IgG) concentration of five suckler cow breed types and subsequent immune status of their calves. Irish Journal of Agricultural and Food Research 2005; 44: 205-213.
  • 16. Uğur F. Sığır Yetiştirme (Ders Kitabı). Volum 1. Çanakkale: Çanakkale Onsekiz Mart Üniversitesi Yayınları, 2014.
  • 17. Çakıllı F, Güneş F. Esmer sığırların süt verim özellikleri üzerinde araştırmalar. İstanbul Üniversitesi Veteriner Fakültesi Dergisi 2007; 33: 43-58.
  • 18. Guy MA, McFadden TB, Cockrell DC, Besser TE. Regulation of colostrum formation in beef and dairy cows. J Dairy Sci 1994; 77: 3002-3007.
  • 19. Morin DE, McCoy GC, Hurley WL. Effects of quality, quantity, and timing of colostrum feeding and addition of a dried colostrum supplement on immunoglobulin G1 absorption in Holstein bull calves. J Dairy Sci 1997; 80: 747-753.
  • 20. Morin DE, Constable PD, Maunsell FP, McCoy GC. Factors associated with colostral specific gravity in dairy cows. J Dairy Sci 2001; 84: 937-943.
  • 21. Barrington GM, McFadden TB, Huyler MT, Besser TE. Regulation of colostrogenesis in cattle. Livestock Production Science 2001; 70: 95-104.
  • 22. Brandon MR, Watson DL, Lascelles AK. The mechanism of transfer of immunoglobulin into mammary secretion of cows. Aust J Exp Biol Med Sci 1971; 49: 613-623.
  • 23. Genç M, Çoban O. Effect of some environmental factors on colostrum quality and passive immunity in brown swiss and holstein cattle. Israel Journal of Veterinary Medicine 2017; 72: 28-34.
  • 24. Muller LD, Ellinger DK. Colostral immunoglobulin concentrations among breeds of dairy cattle. J Dairy Sci 1981; 64: 1727-1730.
  • 25. Kara E. Ankara Bölgesinde Süt Sığırı İşletmeciliği Yapılan Çiftliklerde "Buzağılarda Pasif Transfer Yetmezliği"nin Değerlendirilmesi. Doktora Tezi, Ankara: Ankara Üniversitesi, Sağlık Bilimleri Enstitüsü, 2019.
  • 26. Norman LM, Hohenboken WD, Kelley KW. Genetic differences in concentration of immunoglobulins G1 and M in serum and colostrum of cows and in serum of neonatal calves. Journal of Animal Science 1981; 53: 1465-1472.
  • 27. McGee M, Drennan MJ, Caffrey PJ. Effect of suckler cow genotype on cow serum immunoglobulin (Ig) levels, colostrum yield, composition and Ig concentration and subsequent immune status of their progeny. Irish Journal of Agricultural and Food Research 2005; 44: 173-183.
  • 28. Kessler EC, Bruckmaier RM, Gross JJ. Colostrum composition and immunoglobulin G content in dairy and dual-purpose cattle breeds. Journal of Animal Science 2020; 102:5542-5549.
  • 29. Simčič MZ and Medjugorac I. A genome-assisted MOET design for inbreeding prevention in the endangered Murnau-Werdenfelser cattle. 24th Int. Symp. "Animal Science Days". Ptuj, Slovenia, Sept. 21th-23rd 2016; 50- 54.
Fırat Üniversitesi Sağlık Bilimleri Veteriner Dergisi-Cover
  • ISSN: 1308-9323
  • Yayın Aralığı: Yılda 3 Sayı
  • Yayıncı: Prof.Dr. Mesut AKSAKAL
Sayıdaki Diğer Makaleler

Kurşuna Maruz Bırakılan Yumurtacı Bıldırcınlarda (Coturnix coturnix japonica) Diyet Beta-1,3/1,6-Glukanın Performans ve Yumurta Kalite Özellikleri Üzerine Etkisi

Pınar TATLI SEVEN, İsmail SEVEN, Seda İFLAZOĞLU MUTLU, Nurgül BİRBEN, Aslıhan SUR ARSLAN

Diyabetik Ratlarda Taurinin Böbrek Dokusunda PPARγ, IRS–1, HSP–27, HSP–72 Düzeyleri ile Histopatolojik Değişimler Üzerine Etkisi

Mehmet TUZCU, Füsun ERTEN, Hasan GENÇOĞLU

Siirt ve Yöresindeki Koyun ve Keçilerde Görülen Göz Hastalıklarının Prevalansı

Ali Said DURMUŞ, Recep IŞIK

Halep Keçisi ve Oğlaklarında Doğum Şekline Bağlı Olarak Kan ve Kolostrumda Bazı İz Element Seviyelerinin Araştırılması

Tuğra AKKUŞ, Pelin Fatoş POLAT DİNÇE

Bir Buzağıda Çok Sayıda Limbal Dermoid

Hatice ERÖKSÜZ, Canan AKDENİZ İNCİLİ, Yesari ERÖKSÜZ, İbrahim CANPOLAT

Benzo(a)piren Uygulanan Ratlarda E Vitamini ve Selenyumun Bazı Biyokimyasal Parametreler Üzerine Etkileri

Meltem KIZIL, Mehmet ÇAY

Kedi ve Köpeklerde Göz ve Göz Kapağı Hastalıklarının Prevalansı: 201 Olguda Retrospektif Çalışma (2015-2019)

Mehmet Zeki Yılmaz DEVECİ, Cafer Tayer İŞLER, Muhammed Enes ALTUĞ, Ömer KIRGIZ, Ziya YURTAL, Ramazan GÖNENCİ

Alkali Kornea Yanıklarında Amniyotik Sıvının Antioksidan Etkisinin Araştırılması

Aydın SAĞLIYAN, Emre KAYA, Seval YILMAZ, Eren POLAT, Cihan GÜNAY, Mehmet Cengiz HAN, Kemal Kenan KARABULUT

Muş İlinde Mera Dönemindeki Koyunların Serumlarında Bazı Mineral Madde Düzeylerinin Tespiti

Mehmet ÇİFTÇİ, Yasin AYDIN

Ratlarda Sisplatinden Kaynaklanan Nefrotoksisite Üzerine Rutinin İyileştirici Etkileri

Fatih Mehmet KANDEMİR, Mustafa Sinan AKTAŞ, Sefa KÜÇÜKLER, Başak HANEDAN, Cüneyt ÇAĞLAYAN