İhsan YAMAN, Aydın SAĞLIYAN, Cihan GÜNAY, Mehmet Cengiz HAN

Tavşanlarda karaciğer cerrahisinde fibrin yapıştırıcı kullanımı: deneysel çalışma

Bu çalışmada tavşanlarda deneysel olarak oluşturulan karaciğer yaralanmalarında fibrin yapıştırıcı ile dikiş yönteminin etkileri karşılaştırılmıştır. Araştırmada vücut ağırlıkları 2.5-3.2 kg arasında olan 16 adet erişkin erkek, Yeni Zelanda tavşanı kullanıldı. Dikiş (D) ve fibrin yapıştırıcı (F) kullanılan gruptaki hayvanların karaciğerlerinde, orta lobun visseral yüzünde 0.5 cm derinliğinde ve 2 cm uzunluğunda standart bir ensizyon oluşturuldu. Ensizyonu takiben bölge yaklaşık 1 dakika süreyle tamponlandı. D grubu hayvanlarda ensizyon hattı 5/0 krome katgüt kullanılarak horizontal U dikişi ile kapatıldı. F grubu hayvanlarda ise karaciğer ensizyon hattına fibrin yapıştırıcı uygulandıktan sonra yara dudaklarının yapışması için yaklaşık 1 dakika süreyle sıkıca tutuldu. Karaciğer hasarına bağlı enzim düzeylerini belirlemek amacıyla hayvanlarda operasyondan bir saat önce ve operasyondan sonra 1, 3, 5 ve 7. günlerde alınan kan örneklerinde serum ALT (alanin aminotranspherase), AST (aspartate aminotranspherase) ve ALP (alkalen phosphatase) seviyeleri spektrofotometrik olarak ölçüldü. Tüm deney hayvanlarında operasyondan sonra (özellikle 1. ve 3. gün) tespit edilen ALT, AST, ve ALP değerlerinin operasyondan önce ölçülen değerler göz önüne alındığında oldukça yükseldiği görüldü. D ve F grubu hayvanlar operasyondan 21 gün sonra sakrifiye edilerek, makroskopik olarak intraabdominal komplikasyonlar değerlendirildi ve karaciğer dokusunda yara iyileşmesinin belirlenmesi amacıyla da doku örnekleri alınarak histopatolojik muayeneleri yapıldı. Grupların makroskopik adezyon skorları açısından karşılaştırmaları sonucunda D grubu ile F gurubu arasında istatistiksel olarak anlamlı fark bulundu (p

Usage of fibrine adhesives in liver surgery in rabbits: An experimental study

In the present study, the effects of fibrine adhesives were compared with those of suture techniques in experimentally induced liver damages in rabbits. Sixteen adult male New Zealand rabits weighing between 2.5-3.2 kg were used for the study. An incision of 0.5 cm-depth and 2 cmlength were performed in visceral surface of medial lob the liver of the D group and F group animals. Following the incision, the region was cushioned for about 1 minute. The incision lines in D group animals were sutured with horizontal U-suture using 5/0 chromic catgut. In F group animals, after applying fibrine adhesive to the incision line, the wound edges were hold tightly for about 1 minute so that the edges glued to each other. In order to determine the activities of liver enzymes resulting from liver damage, serum ALT (alanine aminotransferase), AST (aspartate aminotranspherase) and ALP (alkalene phosphatase) levels from the blood samples collected one hour before and at the 1st, 3rd, 5th and 7th. days after operation were analized spectrophotometrically. The serum ALT, AST and ALP levels determined in all experimenta animals after especially the 1st and 3rd days of operation were very high comparted to those values obtained prior to the operation. After the 21st day of operation, the D group and F group animals were sacrificed to evaluate macroscopically intraabdominal complications and then the tissue samples involving the incision area were removed for histopathological examinations to determine the extent of the wound healing in the livers. It was found the presence of a significant difference between group D and F when their macroscopic adhesion scores were compared (p

PDF

___

1. Demirel AH, Basar OT, Ongoren AU, Bayram B, Kisakurek M. Effects of primary suture and fi brin sealant on hemostasis and liver regeneration in an experimental liver injury. World J Gastroenterol 2008; 14: 81-84.
2. Eder F, Meyer F, Nestler G, Halloul Z, Lippert H. Sealing of the hepatic resection area using fibrin glue reduces significant amount of postoperative drain fluid World J Gastroenterol 2005; 11: 5984-5987.
3. Taha MO, De Rosa K, Fagundes DJ. The role of biological adhesive and suture material on rabbit hepatic injury. Acta Cir Bras 2006; 21: 310-314.
4. Berrevoet F, de Hemptinne B. Clinical application of topical sealants in liver surgery: Does it work? Acta Chir Belg 2007; 107: 504-507.
5. Carmona RH, Peck DZ, Lim RC. The role of packing and planned reoperation in severe hepatic trauma. J Trauma, 1984; 24: 117-124.
6. Erdogan D, de Graaf W, van Gulik T.M. Adhesive strength of fibrinogen-coated collagen patch or liquid fibrin sealant in an experimental liver resection model in pigs. Eur Surg Res 2008; 41: 298-302.
7. Chapman WC, Clavien PA, Fung J, Khanna A, Bonham A. Effective control of hepatic bleeding with a novel collagenbased composite combined with autologous plasma: results of a randomized controlled trial. Arch Surg 2000; 135: 1200-1204.
8. Zoucas E, Goransson G, Bengmark S. Comparative evaluation of local hemostatic agents in experimental liver trauma. A study in the rat. J Surg Res 1984; 37: 145-147.
9. Cohn SM, Cross JH, Ivy ME, Feinstein AJ, Samotowka MA. Fibrin glue terminates massive bleeding after complex hepatic injury. J Trauma 1998; 45: 666-672.
10. Holcomb JB, Pulsateri AE. Dry fibrine dressings reduce blood loss, resuscitation, volume, and improves survival in hypothermic coagulopathic with grade V liver injuries. J Trauma 1999; 47: 233-240.
11. Uranüs S, Mischinger HJ, Pfeifer J, Kronberger L, Rabl H, Werkgartner G, Steindorfer P, Kraft-Kirz J. Hemostatic methods for the management of spleen and liver injuries. World J Surg 1996; 20: 1107-1111.
12. Davidson BR, Burnett S, Javet MS, Seifalian A Moore D, Doctor N. Experimental study of a novel fibrin sealent for achieving haemostasis following partial hepatectomy. Br J Surg 2000; 87: 790-795.
13. Kohno H, Nagasue N, Chang YC, Taniura H, Yamanoi A, Nakamura T. Comparison of topical hemostatic agents in elective hepatic resection: a clinical prospective randomized trial. World J Surg 1992; 16: 966-969.
14. Jacob H, Campbell CD, Stemberger A, Wriedt-Lübbe I, Blümel G, Replogle RL. Combined application of heterologous collagen & fibrin sealant for liver injuries. J Surg Res 1984; 36: 571-577.
15. Kram HB, Reuben BI, Fleming AW., Shoemaker WG. Use of fibrin glue to control hepatic trauma. J Trauma 1988; 28: 1195–1201.
16. Scheele J, Gentsch HH, Matterson E. Splenic repair by fibrin tissue adhesive & collagen fleece. Surgery 1984; 95: 6-10.
17. Avki S, İzci C. Cerrahide fibrin yapıştırıcı ve dolguların kullanım alanları. Türk Vet Hek Derg 1994; 6: 38-41.
18. Garza JL, Rumsey E. Fibrin glue and hemostasis in liver trauma: A case report. J Trauma 1990; 30: 512-513.
19. Okumuş Z. Köpeklerde korneal yaralarının onarımında organik doku yapıştırıcı fibrin adeziv’in etkileri üzerine araştırmalar. Ankara Üniv Sağlık Bil Enst. Doktora Tezi. Ankara, 1993.
20. Bakır B, Gençcelep M, Güler O, Dilek FH. Köpeklerde karaciğer ve dalak cerrahisinde fibrin yapıştırıcı kullanımı: Deneysel çalışma. YYÜ Vet Fak Derg 1999; 10: 61-66.
21. Mazuji MK, Kalambaheti K, Pawar B. Prevention of adhesions with polyvinylpyrroline. Arch Surg 1964; 89: 1011-1015.
22. Erkol H, Perek S, Tunalı H, Sanal İ. Ratlarda karın içi yapışıkların önlenmesinde intraperitoneal heparin ve sodyum karboksimetilsellülozun etkileri. Çağdaş Cerrahi Dergisi 1993; 7: 47-51.
23. Sagliyan A, Gunay C, Han MC, Sakin F, Hayat A. An experimental study on the efficacy of sodium hyaluronate in prevention of postoperative intraperitoneal adhesions. J Anim Vet Adv 2009; 8: 664-668.
24. De la Farza LJ, Rumsey E. Fibrin glue and hemostatis in liver trauma (A case report). J Trauma 1990; 30: 512-513.
25. Soliman TH, Langer F, Puhalla H, Pokorny H, Grunberger TH, Berlakovich GA, Muhlbacher F, Steininger R. Use of absorbable mesh in the treatment of parenchymal liver injuries during orthotopic liver transplantation. Eur J Surg 2001; 167: 29-34.
26. Kram HB, Del Junco T, Clark RS, Ocamp HP, Shoemaker WC. Techniques of splenic preservation using fibrin glue. J Trauma 1990; 30: 97-101.
27. Redl H, Schlag G, Dingers HP. Methods of fibrin sealant aplication. Thorac Cardiovasc Surg 1982; 30: 223-227.
28. Düzgün ŞA. Ratlarda deneysel olarak oluşturulan penetran duedonum yaralanmasının onarımında fibrin yapıştırıcı kullanımı. Gazi Üniv. Tıp Fak. Genel Cerrahi Anabilim Dalı Uzmanlık tezi. Ankara, 1992.
29. Dulchavsky SA, Geller ER, Maurer J, Kennedy PR, Tortora GT, Maitra SR. Autologous fibrin gel: bactericidal properties in contaminated hepatic injury. J Trauma 1991; 31: 991-995.
30. Siedentop KH, Harris DM, Sanchez B. Autologous fibrin fissue adhesive: Factors influencing bonding power. Laryngoscope 1998; 98: 731-733.
31. Alabaz Ö, Boğa C, Tunalı N, Erkoçak EU. Experimental karaciğer travmalarında fibrin doku yapıştırıcı kullanımı ve histopatolojik sonuçları. Ulusal Cerrahi Dergisi, 1992; 8: 162-167.
32. Matris G, Miko I, Szendroi T, Kathy S, Kovacs J, Hajdu S. Result with collagen fleece coated with fibrin glue. A macroskobical and histopathological experimental study. Acta Chir Hung 1997; 36: 221-222.
33. Carmona RH, Lim RC Jr, Clark GC. Morbidity and mortality in hepatic trauma. A 5 year study. Am J Surg, 1982; 144: 88-94.
34. Ochsner GM, Maniscalco EM, Champion RH. Fibrin glue as a hemostatic agent in hepatic and splenic trauma. J Trauma 1990; 30: 884-887.
35. Abdelkader SV, Hauge JG. Serum enzyme determination in the study of liver disease in dogs. Acta Vet Scand 1986; 27: 59-70.
36. Center SA, Slater MR, Manwarren T, Prymak K. Diagnostic efficacy of serum alkaline phosphatase and Gglutamyltransferase in dogs with histologically confirmed hepatobiliary disease: 270 cases (1980-1990). J Am Vet Med Assoc 1992; 201: 1258-1264.
37. Rutgers C, Stradley RP, Rogers WA. Plasma amino acid analysis in dogs with experimentally induced hepatocellular and obstructive jaundice. Am J Vet Res, 1987; 48: 696- 701.