Pnömonili Sığırların Burun Boşluklarında Bulunan Bakteriyel Patojenlerin MALDITOF MS ile İdentifikasyonu

Bu çalışmanın amacı, pnömonili sığırlarda MALDI-TOF MS kullanarak nazal kavitede bulunan patojenlerin etiyolojik spektrumunu belirlemektir. Çalışma materyalini İzmir'in farklı ilçelerinden 24 ayrı çiftlikten pnömoni semptomu gösteren 2 ile 7 yaş arasında 64 sığır, 30 ile 85 günlük yaştaki 39 buzağı ve 20 sağlıklı sığır ve buzağı oluşturdu. Tüm hayvanların klinik muayeneleri yapıldıktan sonra kömürlü amies transport besiyerli svap kullanılarak nazal numune alındı. Yapılan klinik muayene de solunum frekansı, kalp frekansı ve rektal sıcaklık pnömoni semptomu gösteren vakalarda kontrole göre istatistiksel olarak yüksek (

Identification of Bacterial Pathogens from Nasal Cavity in Cattle with Pneumonia by MALDI-TOF MS

The aim of our study was to show the etiological spectrum of pathogens in the nasal cavity of cattle with pneumonia using MALDI-TOF MS. The study material consisted of 64 dairy cows between the ages of 2 and 7 years, 39 calves aged between 30 and 85 days showing pneumonia symptoms and 20 healthy dairy cows and calves sampled from 24 farms in different districts of İzmir, Turkey. After clinical examination of all animals, nasal samples were taken using a swab with Charcoal Amies transport medium. The clinical examination revealed that the respiratory rate, heart rate, and rectal temperature were statistically higher in cases with pneumonia symptoms than in control cases (p

___

  • 1. Bulut İ. Sığır pnömonilerinin patolojik ve bakteriyolojik yöntemler ile araştırılması. Yüksek lisans tezi, Balıkesir: Balıkesir Üniversitesi, Sağlık Bilimleri Enstitüsü, 2019.
  • 2. Bellinghausen C, Rohde GGU, Savelkoul PHM, Wouters EFM, Stassen FRM. Viral–bacterial interactions in the respiratory tract. J Gen Virol 2016; 97: 3089-3102.
  • 3. Chirase NK, Greene LW. Dietary Zinc and Manganese Sources Administered from the Fetal Stage Onwards Affect Immune Response of Transit Stressed and Virus Infected Offspring Steer Calves. Anim Feed Sci Technol 2001; 93: 217-228.
  • 4. Lorenz I, Earley B, Gilmore J, et al. Calf health from birth to weaning. III. housing and management of calf pneumonia. Ir Vet J 2011; 64: 1-9.
  • 5. Alkan F, Özkul A, Karaoğlu MT, et al. Sığırlarda viral nedenli solunum sistemi enfeksiyonlarının seroepidemiyolojisi. AÜ Vet Fak Derg 1997; 44: 1-8.
  • 6. Doyle D, Credille B, Lehenbauer TW, et al. Agreement among 4 sampling methods to identify respiratory pathogens in dairy calves with acute bovine respiratory disease. J Vet Intern Med 2017; 31: 954-959.
  • 7. McDaneld TG, Kuehn LA, Keele JW. Evaluating the microbiome of two sampling locations in the nasal cavity of cattle with bovine respiratory disease complex (BRDC). Sci J Anim Sci 2018; 4: 1281-1287.
  • 8. Mok JH, Eom JS, Jo EJ, et al. Clinical utility of rapid pathogen identification using matrix‐assisted laser desorption/ionization time‐of‐flight mass spectrometry in ventilated patients with pneumonia: A pilot study. Respirology 2016; 21: 321-328.
  • 9. Kassim A, Pflüger V, Premji Z, Daubenberger C, Revathi G. Comparison of biomarker based Matrix Assisted Laser Desorption Ionization-Time of Flight Mass Spectrometry (MALDI-TOF MS) and conventional methods in the identification of clinically relevant bacteria and yeast. BMC microbiology 2017; 1: 1-8.
  • 10. Storz J, Purdy CW, Lin XQ, et al. Isolation of respiratory coronaviruses, other cytocidal viruses and Pasteurella spp from cattle involved in two natural outbreaks of shipping fever. J Am Vet Med Assoc 2000; 216: 1599- 1604.
  • 11. Karahan M, Kalin R, Atil E, Çetinkaya B. Detection of Mycoplasma bovis in cattle with mastitis and respiratory problems in eastern Turkey. Vet Rec 2010; 26: 827.
  • 12. Wong-Lee JG, Lovett M. Rapid and sensitive PCR method for identification of Mycoplasma species in tissue culture. Diagnostic Molecular and Microbiology Principles and Applications. Washington DC: mBio 1993; 257-260.
  • 13. Foddai A, Idini G, Fusco M, et al. Rapid differential diagnosis of Mycoplasma agalactiae and Mycoplasma bovis based on a multiplex-PCR and a PCR-RFLP. Mol Cell Probe 2005, 3: 207-212.
  • 14. Nicholas R, Ayling R, McAuliffe L. Mycoplasma diseases of ruminants. 1st Edition, Surrey: UK, 2008.
  • 15. Kobayashı H, Hırose K, Worarach A, et al. In vitro amplification of the 16S rRNA genes from Mycoplasma bovirhinis, Mycoplasma alkalescens and Mycoplasma bovigenitalium by PCR. J Vet Med Sci 1998; 12: 1299- 1303.
  • 16. Timenetsky J, Santos LM, Buzinhani M, Mettifogo E. Detection of multiple mycoplasma infection in cell cultures by PCR. Braz J Med Bıol Res 2006; 39: 907-914.
  • 17. Miles K, McAuliffe L, Ayling RD, Nicholas RA. Rapid detection of Mycoplasma dispar and M. bovirhinis using allele specific polymerase chain reaction protocols. FEMS Microbiol Lett 2004; 1: 103-107.
  • 18. Hayran M, Hayran M. Sağlık Araştırmaları İçin Temel İstatistik. 1. Baskı, Azim Matbaacılık: Ankara, 2018.
  • 19. Friton GM, Cajal C, Ramirez-Romero R. Longterm effects of meloxicam in the treatment of respiratory disease in fattening cattle. Vet Rec 2005; 156: 809-811.
  • 20. İssi M, Eröksüz Y, Öngör H, ve ark. Enzootik pnömoni semptomları görülen bir besi sığırı işletmesinde Mycoplasma bovis enfeksiyonu. Atatürk Üniversitesi Veteriner Bilimleri Dergisi 2015; 10: 39-45.
  • 21. Eskin Z. Sağlıklı sığırların nazal boşluk bakteriyel florasının moleküler identifikasyonu. Yüksek lisans tezi, Aydın: Adnan Menderes Üniversitesi, Sağlık Bilimleri Enstitüsü, 2012.
  • 22. Özçelik M, İssi M, Güler O, et al. Bakteriyel pnömonili besi sığırlarında oluşan serbest radikal hasarının antioksidan aktivite ve bazı mineral maddeler üzerine etkisi. Erciyes Üniversitesi Veteriner Fakültesi Dergisi 2014; 11: 111- 116.
  • 23. Tuzcu M, Tuzcu N, Başbuğ O. Pathological, cytological, microbiological and molecular investigations of pneumonia caused by Pasteurella multocida and Mannheimia haemolytica. EJVS 2020; 36: 331-339.
  • 24. Kahn CM, Line S. The Merck Veterinary Manual.10th Edition, Elsevier Health Sciences: UK, 2010.
  • 25. Hanzlicek GA, White BJ, Mosier D, Renter DG, Anderson DE. Serial evaluation of physiologic, pathological, and behavioral changes related to disease progression of experimentally induced Mannheimia haemolytica pneumonia in postweaned calves. Am J Vet Res 2010; 3: 359-369.
  • 26. Van Donkersgoed J, Ribble CS, Boyer LG, Townsend HG. Epidemiological study of enzootic pneumonia in dairy calves in Saskatchewan. Can J Vet Res 1993; 57: 247- 254.
  • 27. Ovia M, RodrÝguez-Sßnchez B, Gˇmara M. Direct identification of clinical pathogens from liquid culture media by MALDI-TOF MS analysis. Clin Microbiol Infect 2018; 6: 624-629.
  • 28. Van Driessche L, Bokma J, Deprez P, et al. Rapid identification of respiratory bacterial pathogens from bronchoalveolar lavage fluid in cattle by MALDI-TOF MS. Sci Rep 2019; 9: 1-8.
  • 29. Choudhary M, Choudhary BK, Ghosh RC, et al. Cultivable microbiota and pulmonary lesions in polymicrobial bovine pneumonia. Microb Pathog 2019; 134: 103577.
  • 30. Sedeek SR, Thabet AER. Some studies on bacterial causes of pneumonia in cattle in Assiut Governorate. Assiut Vet Med J 2001; 45: 243-255.
  • 31. Hay CY, Sherris DA. Staphylococcus lentus sinusitis: a new sinonasal pathogen. Ear, Nose & Throat J 2020; 99: 62-63.
  • 32. Rivera M, Dominguez MD, Mendiola NR, Roso GR, Quereda C. Staphylococcus lentus peritonitis: a case report. Perit Dial Int 2014; 4: 469-470.
  • 33. Shahriar FM, Clark EG, Janzen E, West K, Wobeser G. Coinfection with bovine viral diarrhea virus and Mycoplasma bovis in feedlot cattle with chronic pneumonia. Can Vet J 2002; 43: 863-868.
  • 34. Booker CW, Abutarbush SM, Morley PS, et al. Microbiological and histopathological findings in cases of fatal bovine respiratory disease of feedlot cattle in western Canada. Can Vet J 2008; 49: 473-481.
  • 35. Panciera RJ, Confer AW. Pathogenesis and pathology of bovine pneumonia. Vet Clin North Am Food Anim Pract 2010; 26: 191-214.
  • 36. Friis NF, Krogh HV. Isolation of mycoplasma from Danish cattle. Nord Vet Med 1983; 35: 74-81.
  • 37. Tegtmeier C, Uttenthal C, Friis NF, Jensen NE, Jensen, HE. Pathological and microbiological studies on pneumonic lungs from Danish calves. Vet Med B 1999; 46: 693-700.
  • 38. Kusıluka LJM, Ojenıyı B, Frııs NF. Increasing prevalence of Mycoplasma bovis in Danish cattle. Acta Vet Scand. 2000; 41: 139-146.
  • 39. Soehnlen MK, Aydin A, Murthy KS. Epidemiology of Mycoplasma bovis in Pennsylvania veal calves. Int J Dairy Sci 2012; 1: 247-254.
  • 40. Thomas A, Dizier I, Trolin A, Mainil J, Linden A. Comparison of sampling procedures for isolating pulmonary mycoplasmas in cattle. Vet Res Commun 2002; 5: 333-339.
  • 41. Akan M, Babacan O, Torun E, Müştak HK, Öncel T. Diagnosis of Mycoplasma bovis infection in cattle by ELISA and PCR. Kafkas Üni Vet Fak Derg 2014; 20: 249- 252.
Fırat Üniversitesi Sağlık Bilimleri Veteriner Dergisi-Cover
  • ISSN: 1308-9323
  • Yayın Aralığı: Yılda 3 Sayı
  • Yayıncı: Prof.Dr. Mesut AKSAKAL
Sayıdaki Diğer Makaleler

Pnömonili Sığırların Burun Boşluklarında Bulunan Bakteriyel Patojenlerin MALDITOF MS ile İdentifikasyonu

Burcu KARAGÜLLE, Zeynep YERLİKAYA, Pelin Fatoş POLAT DİNÇER

Sağlıklı Kedilerde Bakteriyel ve Mikotik Deri Florası

Akın KOÇHAN, Simten YEŞİLMEN ALP, Aynur ŞİMŞEK, Almina GÜNEŞ, Ömer Faruk KATANALP, Nurdan KARACAN

Sıçanlarda Sisplatin ile Oluşturulan Deneysel Testis Hasarı Modelinde Boldin veDekspantenolün Koruyucu Etkilerinin Araştırılması

Hüseyin GÜNGÖR, Zeynep TUNA, Mahmut ŞAHİN, Haki KARA, Alper Serhat KUMRU

Bilgisayar Destekli Sperma Analiz (CASA) Sistemiyle Yapılan İncelemelerde Spermatozoonların Motilitesini ve Kinematik Değerlerini Etkileyen Faktörler

Mustafa SÖNMEZ, Fatma FIRAT

Mardin İlindeki Kedilerde Giardia duodenalis'in İlk Tespiti

Burçak ASLAN ÇELİK

Sıçanlarda 5-Florourasil ile İndüklenen Nefrotoksisitede Kuersetin'in ProtektifEtkileri

Emin ŞENGÜL, Güldemet KANSU

Luteal Kistli Simental Irkı İneklerde Kan Adipokin, Antioksidan ve Biyokimyasal Parametre Düzeylerinin Belirlenmesi

Ali RİŞVANLI, Meltem KIZIL, Mehmet Akif KILINÇ, Tarık ŞAFAK, Öznur YILMAZ, Burak Fatih YÜKSEL, İbrahim ŞEKER

Fucus vesiculosus ve Laminaria digitata Ekstraktlarının Prostat ve Seminal Vezikül p-PDE5, cGMP, eNOS ve ET-1 Düzeyleri Üzerine Etkileri

Füsun ERTEN, Beşir ER, Kazım ŞAHİN

Parazitoloji’de DNA Aşı Çalışmaları

Muhammed Ahmed SELÇUK, Figen ÇELİK, Sami ŞİMŞEK

Türkiye’nin Elazığ ve Malatya İllerinde Yetiştirilen Koyunlarda Mavidil VirüsEnfeksiyonunun Serolojik Araştırılması

Hasan ABAYLI, Sümeyye BABACAN