Ahmet ATEŞŞAHİN, Fulya BENZER, İzzet KARAHAN

Yüksek dozda gentamisin verilen ratlarda karaciğer ve böbrek arginazı üzerine mangenez klorürün etkileri

Bu çalışma, yüksek dozda gentamisin verilen ratlarda manganez klorür (MnCl2)'ün karaciğer ve böbrek arginazı üzerine etkilerini araştırmak amacıyla yapıldı. Erişkin 36 adet Wistar Albino rat 6 eşit gruba ayrıldı. Birinci grup kontrol, ikinci gruba tek başına gentamisin (gentamisin sülfat 100 mg/kg, i.p.), üçüncü ve dördüncü gruplara tek başına MnCl2 (sırasıyla, 2 ve 20 mg/kg, i.p.), beşinci ve altıncı gruplara ise gentamisin ile birlikte MnCl2'in iki farklı dozu 6 gün süreyle verildi. Son enjeksiyondan 24 saat sonra ratlardan alınan karaciğer ve böbrek örneklerinde arginaz aktiviteleri spektrofotometrik yöntemle belirlendi. Karaciğer ve böbrek dokusu arginaz aktiviteleri kontrol grubuyla karşılaştınidığında gentamisin verilen gruplai'da arttığı görüldü. MnCl2'in düşük dozu karaciğerde arginaz aktivitesini kontrole göre artırırken (p0.05). Buna karşılık böbrekte MnCl2'in hem düşük, hem de yüksek dozunun arginaz aktivitesini artırdığı belirlendi (p

The effect of manganese chloride on liver and kidney arginase activity in rats given high dose gentamicin

The aim of this study was to investigate the effect of manganese chloride (MnCl2) on liver and kidney arginase activities in rats given a high dose of gentamicin. Thirty six Wistar Albino rats were divided into 6 groups as follows: Group 1 was control group; Group 2: received gentamicin alone (gentamicin sulphate 100 mg/kg i.p.); Group 3 and 4: received MnCl2 alone (2 mg/kg i.p. and 20 mg/kg i.p.); Group 5: received gentamicin (100 mg/kg i.p.) and MnCl2 (2 mg/kg i.p.), Group 6: received gentamicin (100 mg/kg i.p.) and MnCl2 (20 mg/kg i.p.). Injections were repeated daily for 6 days. Twenty four hours after the last injections samples were kidney and liver collected in rats and arginase activities were spectrophotometrically detected. Arginase activities of liver and kidney tissues of groups receiving gentamicin (p

PDF

___

1. Garella S. Drug-induced renal disease. Hosp Pract 1993; 28 (4): 129-140.
2. Ateşşahin A, Karahan I, Yılmaz S, Çeribaşı AO, Pirincci I. The effect of manganese chloride on gentamicin-induced nephrotoxicity in rats. Pharmacol Res 2003; 48 (6): 637-642.
3. Ali BH, AL-Qarawi AA, Mousa HM. The effect of calcium load and the calcium channel blocker verapamil on gentamicin nephrotoxicity in rats. Food Chem Toxicol 2002; 40 (12): 1843-1847.
4. Walker Pd, Shah SV. Evidence suggesting a role for hydroxyl radical in gentamicin-induced acute renal failure in rats. J Clin Invest 1988; 814: 334-341.
5. Cook HT, Jansen A, Lewis S, Largen P, O'Donnell M, Reaveley D, Cattell V. Arginine metabolism in experimental glomerulonephritis: Interaction between nitric oxide synthase and arginase. Am J Physiol 1994; 267 (4 Pt 2): F646-653.
6. Powears SG, Meister T. Urea synthesis and ammonia metabolism. In: Arias I, Popper H, Schachter D and Shafrits DA. (Editors). The Liver: Biology and Pathobiology. Newyork: Raven Press, 1982: 251-263.
7. Herzfeld A, Raper SM. The heterogeneity of arginases rat tissues. Biochem J 1976; 153 (2): 469-478.
8. Aminlari M, Vaseghi T . Arginase distribution in tissues of domestic animals. Comp Biochem Physiol 1992; 103 (2): 385-389.
9. Chen PC, Broome JD . Mouse macrophage arginase. Proc Soc Exp Biol Med 1980; 163 (3): 354-359.
10. Ikemoto M, Tabata M, Murachı T, Totanı M. Purification and properties of human erythrocyte arginase. Ann Clin Biochem 1989; 26: 547-553.
11. Nikumb SK, Santhanam K, Rao MV. Hepatic and serum arginase and ornithine transcarbamylase activities of rats maintained on diets of different protein quality. Ann Nutr Metab 1987; 31 (6): 387-394.
12. Muszynska G, Wojtczak M. Influence of immobilization on conformation of rat liver arginase. Int J Biochem 1979; 10 (8): 665-668.
13. Ozan S, Gülen Ş. Farklı türlerin organlarında bulunan arginazlann metilen mavisi ile fotoinaktivasyonları. Doğa Tr J Biology 1991; 15: 222-229.
14. Geyer JW, Dabich D. Rapid method for determination of arginase activity in tissue homogenates. Anal Biochem 1971; 39 (2): 412-417.
15. Lowry OH, Rosebrough NJ, Farr AL, Randall RJ. Protein measurement with the Folin phenol reagent. J Biol Chem 1951; 193 (1): 265-275.
16. Muszynska G. Immobilization of rat liver arginase. C.I Biospecific Chromatography. Protides of the Biological Fluids 23 RD. Colloguim. Oxford and New York. Pergamon Press, 1976: 633-637.
17. Hus-Citharel A, Levillain O. Identification of two arginase isoenzyme activities along the nephron of Meriones shawi. Pflugers Arch 1999; 437 (3): 423-431.
18. Halifeoğlu İ. İnsan Karaciğer, Eritrosit ve Uterus Doku Arginazımn Kinetik Özellikleri, Doktora Tezi, Elazığ: Fırat Üniversitesi, Sağlık Bilimleri Enstitüsü, 1993.
19. Erişir M, Ozan S. Sığır Rumen doku arginazımn saflaştırılmasından önce ve saflaştırılmasından sonra bazı özellikleri. Tr J Vet Anim Sci 1999; 23 (3): 597-608.
20. Benzer F, Ozan S. Fascioliosisli koyunların arginaz enzim aktivite düzeyleri ile karaciğer doku arginazımn bazı biyokimyasal özellikleri. Fırat Üniversitesi, Sağlık Bilimleri Dergisi, 2002; 16 (2): 217-222.
21. Williams-Ashman HG, Canellakis ZN. Polyamines in mammalian biology and medicine. Perspect Biol Med 1979; 22 (3): 421-453.
22. Waddington SN, Tam FW, Cook HT, Cattell V. Arginase activity is modulated by IL-4 and HOArg in nephritic glomeruli and mesangial cells. Am J Physiol 1998; 274 (3 Pt 2): F473-480.
23. Waddington SN, Cattell V. Arginase in glomerulonephritis. Exp Nephrol 2002; 8 (3): 128-134.
24. Jansen A, Lewis S, Cattell V, Cook HT. Arginase is major pathway of L-arginine metabolism in nephritic glomeruli. Kidney Int 1992; 42 (5): 1107-1112.
25. Ayyıldız A, Gökhun İH. Kısmen saflaştınlan sığır karaciğer arginazımn kinetik özellikleri ve bazı kimyasal bileşiklerin enzim aktivitesine etkilerinin araştırılması. Ankara Üniversitesi Tıp Fakültesi Mecmuası 1999; 52 (2): 71-76.