Hülya ÖZPINAR, Emel YİĞİT, Şeker DAĞ

Şeftali (Persica vulgaris Miller) yaprak ekstraktının antibakteriyel etkisi

Amaç. Çalışmamızda şeftali (Persica vulgaris Miller) yaprak ekstraktının antibakteriyel etkisinitespit etmek amaçlanmıştır. Yöntem. Erzincan Bahçe Bitkileri Araştırma Enstitüsü GenBahçesinde bulunan Cardinal çeşidi 7 adet şeftali (Persica vulgaris Miller) ağacı yaprağımethanol ekstraktı bu amaçla kullanılmıştır. Antibakteriyel etkisinin araştırılmasında cut plugyöntemi kullanılırken Minimum İnhibisyon Konsantrasyonu (MİK), mikrodilüsyon yöntemi ilebelirlenmiştir. Bulgular. Bu çalışmada şeftali (Persica vulgaris Miller) yaprak ektraktınınStaphylococcus aureus, Staphylococcus aureus (MRSA)a karşı antibakteriyel etkisibelirlenemezken, Escherichia coli, Escherichia coli O:157 H:7, Proteus mirabilis, Proteusvulgaris, Salmonella enteritidis, Salmonella typhimurium, Streptococcus pyogenes, Enterococcusf aecalis, Staphylococcus ep idermidis, Klebsiella pneumoniae, Listeria monocytogenes,Micrococcus luteus ,Pseudomonas aeruginosa, Bacillus cereus, Bacillus subtilis, Yersiniaenterocolitica bakterilerine karşı ise antibakteriyel etki tespit edilmiştir. En düşük Minimumİnhibisyon Konsantrasyonu Pseudomonas aeruginosa ve Yersinia enterocolitica da tespit edilirken(0,01 mg/mL), en yüksek konsantrasyon Bacillus subtilis, Escherichia coli, Escherichia coli O:157H:7, Salmonella enteritidis, Salmonella typhimurium, Staphylococcus ep idermidis, Streptococcuspyogenes de görülmüştür (10 mg/mL). Sonuç. Çalışmamız sonucunda şeftali (Persica vulgarisMiller) yaprak ekstraktının antibakteriyel etki spektrumu invitro olarak tespit edilmiş olup bu türbitkilerden yola çıkılarak yeni antibakteriyel ajanların oluşum sürecinin başlatılabileceğidüşünülmektedir.

Antibacterial effect of peach (Persica vulgaris Miller) leaves extract

Aim. In our study we aimed to determine antibacterial effect of peach leaves extract. Methods. InErzincan Horticultural Research Institute Gen Garden varietes seven cardinal peach s (Persicavulgaris Miller (Rosaceae) tree leaf methanol extract was used for this purpose, Antibacterialeffect was evaluated by cutplug method whereas minimum inhibtory concentration (MIC) wasdetermined by microdilution method. Results. In this study peach s (Persica vulgaris Miller ) leafextract antibacterial effect on Staphylococcus aureus, Staphylococcus aureus (MRSA) was notdetermined, on the other hand the antibacterial effects on Escherichia coli, Escherichia coli O:157H:7, Proteus mirabilis, Proteus vulgaris, Salmonella enteritidis, Salmonella typhimurium,Streptococcus pyogenes, Enterococcus f aecalis, Staphylococcus ep idermidis, Klebsiellapneumoniae, Listeria monocytogenes, Micrococcus luteus, Pseudomonas aeruginosa, Bacilluscereus, Bacillus subtilis, Yersinia enterocolitica was determined. The lowest minimum inhibitoryconcentration on Pseudomonas aeruginosa and Yersinia enterocolitica detected as (0.01 mg/mL),the higest concentration on grup of Bacillus subtilis, Escherichia coli, Escherichia coli O:157 H:7,Salmonella enteritidis, Salmonella typhimurium, Staphylococcus ep idermidis, Streptococcuspyogenes was determined as (10 mg/mL). Conclusions. As a result of our study peach s (Persicavulgaris Miller) leaves extract spectrum showed broad antibacterial effect. Starting from suchplants, thought to be started the process of the formation of new antibacterial agents.

PDF

___

1. Toroğlu S, Dığrak M, Çenet M. Baharat olarak tüketilen Laurus nobilis linn ve Zingiber officinale roscoe bitki uçucu yağlarının antimikrobiyal aktiviteleri ve antibiyotiklere in-vitro etkilerinin belirlenmesi KSU. Fen ve Mühendislik Dergisi 2006; 9: 20-6.
2. Ilçım A, Dığrak M, Bitki Ekstraktlarının Antimikrobiyal Etkilerinin Araştırılması. Tr J Biol 1998; 22: 119-25.
3. Lin J, Opoku AR, Geheeb-Keller M, Hutchings AD, Terblanche E, Ja ger AK, Van Staden J. Preliminary screening of some traditional zulu medicinal plants for anti-inflammatory and anti-microbial activities. J Ethnopharmacol 1999; 68: 267-74.
4. Pridham T, Lindenfelser L, Shotwell O, Stodola F, Benedict R, Foley C, Jacks P, Zaumeyer W, Perston W, Mitchell J: Antibiotics against plant diseases: A laboratory and green house survey. Phytopathology 1956; 46: 568-75.
5. C.L.S.I. Clinical Laboratory Standards Institute Performance Standards For Antimicrobial Disk And Dilution Susceptibility Tests For Bacteria Isolated From Animals; Approved Standard. Second Edition. M31-A2 and M37-A2. Clinical Laboratory Standards Institute Pennsylvania, USA, 2012.
6. N.C.C.L. National Committee for Clinical Laboratory Standards: Methods for Dilution Antimicrobial Susceptibility Tests for Bacteria that Grow Aerobically; Approved Standard - Eighth edition. NCCLS document M7-A6. NCCLS, Wayne, Pennsylvania, USA, 2003.
7. Bilgehan H. Klinik Mikrobiyolojik Tanı, Barış Yayınları, Bornova, 1995; 283-5.
8. Kalayou S, Haileselassie M, Gebre-egziabher G, Tiku'e T, Sahle S, Taddele H, Ghezu M. In-vitro antimicrobial activity screening of some ethnoveterinary medicinal plants traditionally used against mastitis, wound and gastrointestinal tract complication in Tigray Region, Ethiopia. Asian Pac J Trop Biomed 2012; 2: 516-22.
9. Murugan K, Sekar K, Sangeetha S, Ranjitha S, Sohaibani SA, Antibiofilm and quorum sensing inhibitory activity of Achyranthes aspera on cariogenic Streptococcus mutans: An in vitro and in silico study. Pharm Biol 2013; 51; 6: 728-36.
10. Serpi M, Özdemir ZÖ, Salman Y. Bazı Bitki Ekstrelerinin Propionibacterium acnes Üzerine Antibakteriyel Etkilerinin Araştırılması. KSÜ Doğa Bil Derg 2012; 15: 7-12.
11. Duman Aydın B. Bazı Tıbbi Bitki ve Baharatların Gıda Patojenleri Üzerine Antibakteriyel Etkisinin Araştırılması. Kafkas Üniv Vet Fak Derg 2008; 14: 83-7.
12. Özkan O, Aydın H, Bağcıgil AF. Salvia verticillata ve Phlomis pungensin in vitro antibakteriyel etkinliğinin değerlendirilmesi. Kafkas Univ Vet Fak Derg 2009; 15: 587-90.