Farklı fiziksel koşullarda Entamoeba histolytica’nın in vitro kültüründe elde edilen bulgular

Amaç. Bu çalışmada, deneysel ve antijen sağlamak amaçlı olarak yapılan Robinson ve Locke-Egg-Serum (LES) besiyerlerindeki kültürlerinde, sıcaklık, CO2 ve pH değişikliklerinden oluşan farklı fiziksel koşulların Entamoeba histolytica trofozoitleri üzerine etkilerinin belirlenmesi amaçlanmıştır. Yöntem. Subkültürleri Robinson ve LES besiyerinde 35,5 ºC’ de standart etüvde inkübe edilerek sürdürülen E. histolytica Bangladeş suşu kültürlerine paralel olarak 37,5 ºC’ de ve %5 CO2’li etüvde inkübasyon koşulları araştırılmıştır. Ayrıca pH 6,5 ve 7,5 olan besiyerlerinde yapılan kültürlerde in vitro çoğalma özellikleri izlenmiştir. Bulgular. Trofozoitlerin 37,5 ºC’ de canlılığını koruduğu ancak daha yavaş çoğaldığı gözlenmiştir. %5 CO2’li etüv ile standart etüv arasında ise belirgin bir fark saptanamamıştır. pH değişiklerinde ise 4. günde besiyerinde canlı parazit kalmadığı belirlenmiştir. Sonuçlar. E. histolytica’nın üretilme koşullarında farklılıklar denendiğinde en fazla pH değişikliğinden etkilendikleri, %5 CO2’li etüvün E. histolytica inkübasyonunda standart etüvün yerine kullanılabileceği görülmüştür.

The findings from in vitro Entamoeba histolytica culture under different physical conditions

Aim. Cultivation of Entamoeba histolytica is usually performed for diagnostic and experimental purposes. In this study, it is aimed to determine the effects of different physical conditions on the growth of E. histolytica Bangladesh strain in Robinson and Locke Egg Serum (LES) media. Methods. Parallel to regular passages at 35.5ºC in Robinson and LES media, incubation conditions for the 37.5ºC and %5 CO2 incubator is investigated. Additionally, the growth rates were further investigated in vitro at 6.5 and 7.5 pH values. Results. It was observed that at 37.5ºC trophozoites were able to survive but reproduction rate was decreased. Five percent CO2 incubator and standard bacteriological incubator did not yield difference in terms of parasite reproduction. No living trophozoite was detected in pH changed media on fourth day after passage. Conclusions. Among the changes in the cultivation of E. histolytica, pH has a crucial effect on parasite growth and %5 CO2 incubator can be used instead of standard incubator for incubation.

PDF

___

1. Cox FEG. History of human parasitology. Clin Microbiol Rev 2002; 15: 595-612.
2. Tanyuksel M, Petri WA. Laboratory diagnosis of amebiasis. Clin Microbiol Rev 2003; 16: 713-29.
3. Clark CG, Diamond LS. Methods for cultivation of luminal parasitic protists of clinical importance. Clin Microbiol Rev 2002; 15:329-41.
4. Tanyuksel M, Dağcı H. Amoebiosis. In: Özcel MA (Ed). Özcel‟in Tıbbi Parazit Hastalıkları, Meta Basım, İzmir: 2007; pp 279-307.
5. Fotedar R, Stark D, Beebe N, Marriott D, Ellis J, Harkness J. PCR detection of Entamoeba histolytica, Entamoeba dispar, and Entamoeba moshkovskii in stool samples from Sydney, Australia, J Clin Microbiol 2007; 45: 1035-7.
6. Diamond LS, Clark CG, Cunnick CC. YI-S, a casein-free medium for axenic cultivation of Entamoeba histolytica, related Entamoeba, Giardia intestinalis and Trichomonas vaginalis. J Eukaryot Microbiol. 1995; 42: 277-8.
7. Diamond LS, Clark CG. A redescription of Entamoeba histolytica Schaudinn. 1903 (Emended Walker, 1911), separating it from Entamoeba dispar Brumpt, 1925, J Eukaryot Microbiol 1993; 40: 340-4.
8. Daldal N, Özensoy S, Aksoy Ü, Akısü Ç. Besiyerleri ve Hayvan İnokülasyonları. In: Özcel MA, Altıntas N (Eds). Parazit Hastalıklarında Tanı, Ege Üniversitesi Basımevi, İzmir: 1997; 155-7.
9. Ardıç N, Tanyüksel M, Doğancı M, Gun H. Patojen ve non-patojen Entamoeba histolytica zimodemlerinin araştırılması. Flora 1998; 3: 125-33.
10. Botero RD. Rate of growth of Entamoeba histolytica in different culture media. Trans R Soc Trop Med Hyg 1961; 55:539-46.
11. Özçelik S, Saygı G. Protozoonların kültüründe soya fasülyesinden hazırlanan besiyerlerinin kullanımı II. KÜKEM Derg 1986; 9: 21-5.
12. Dubey JP, Das SR. A culture method of growing Entamoeba histolytica and other anaerobic amoebae for the study of their nuclear division. Nature 1966 27; 211: 992.
13. Band RN, Cirrito H. Growth response of axenic Entamoeba histolytica to hydrogen, carbon dioxide, and oxygen. J Protozool 1979; 26: 282-6.
14. Bracha R, Mirelman D. Virulence of Entamoeba histolytica trophozoites. Effects of bacteria, microaerobic conditions, and metronidazole. J Exp Med 1984; 160: 353-68.
15. Leitch GJ. Intestinal lumen and mucosal microclimate H+ and NH3 concentrations as factors in the Etiology of experimental amebiasis. Am J Trop Med Hyg 1988; 38: 480-6.
16. Lopez-Revilla R, Cano-Mancera R. Adhesion of Entamoeba histolytica trophozoites to human erythrocytes. Infect Immun 1982; 37: 281-5.
17. Bos HJ. Monoxenic and axenic cultivation of carrier and patient strains of Entamoeba histolytica. Z Parasitenkd 1975; 47: 119-29.