Ülkü KARAMAN, Gamze KAÇMAZ, Saliha KESTİ, Cihangir AKDEMİR, Şahin DİREKEL, Zeynep KOLÖREN

Parazitlerin Kist, Yumurtalarının, Modifiye Çinko Sülfat Yüzdürme Yöntemi İle Değerlendirilmesinde Bozulma Sürelerinin Belirlenmesi

Amaç: Dışkıda protozoon kisti ve helmint yumurtalarının seyrek olduğu durumlarda direk mikroskobik bakı sırasında gözden kaçabilirler. Bu nedenle çoklaştırma yöntemlerinden çöktürme ve yüzdürme rutin bakıda kullanılmaktadır. Yüzdürme yöntemlerinin avantajı daha temiz olmaları ve çöktürme yöntemleri ile elde edilen preparatlara oranla daha az atık içermesidir. Tanı kitaplarında dezavantaj olarak, kullanılan kimyasal nedeniyle, yumurta ve kist duvarlarının harabiyeti sonucu, organizmanın şeklinin bozulduğu ve tanıda güçlükler yaşanabildiği bildirilmiştir. Bu durumu ortadan kaldırabilmek için hazırlanan örneklerin 10-20 dakika içinde incelenmesi gerektiği belirtilmiştir. Epidemiyolojik çalışmalarda toplanan örnek fazla olduğundan çinko sülfat yüzdürme yöntemi ile tanıya gidilmek istendiğinde inceleme zamanın 20 dakikayı geçebileceği düşünülmüş ve bu yöntemle hazırlanan örneklerin ne kadar süre bozulmadan incelenebileceklerinin belirlenmesi amaçlanmıştır. Gereç ve Yöntem: Çalışmada daha önce incelemesi yapılarak farklı parazitler tespit edilen dışkı örnekleri, çinko sülfat yüzdürme yöntemi ile hazırlandıktan sonra, tüpün üst ve dip kısımlarında alınan örnekler belirli saatlerde incelenmiştir. Bulgular: Örneklerin bulunduğu tüpler oda ısısında bekletilmiş olup hazırlandıktan 48 saat sonrasına kadar parazitlerin yapısında bir bozulma gözlenmemiştir. Sonuçlar: Bu durum çinko sülfat yüzdürme yöntemi ile yapılan çoklaştırma işleminde zamanın yetersiz kaldığı durumlarda, örneklerin hazırlanmış tüplerde kalabileceği şeklinde yorumlanabilir. Çalışmada bu yöntemin kolay uygulanabilir olması ve parazit morfolojilerinin uzun süre bozulmaması nedeniyle, rutin ve epidemiyolojik çalışmalarda kullanılabileceği sonucuna varılmıştır

Anahtar Kelimeler:

Çinko Sülfat, Çoklaştırma, Parazit

Determination of Deterioration Period for Assessment of Parasite Cyst and Eggs with the Modified Zinc Sulfate Flotation Method

Aim: In situations where protozoan cyst and helminth eggs are rare in feces, they may be missed with direct microscopic examination. As a result, the concentration methods of precipitation and flotation are used in routine examination. The advantage of flotation methods is that they are cleaner and involve less waste compared to preparates obtained with precipitation methods. A disadvantage in identification books is that due to the chemicals used there may be damage to eggs and cyst walls, disruption of the shape of the organism, and there may be difficulties experienced in identification. To resolve this situation, it is necessary to examine the prepared samples within 10-20 minutes. As many samples are collected for epidemiological studies, it is considered that the investigation time for identification may exceed 20 minutes when using the zinc sulfate flotation method and as a result we aimed to determine how long samples prepared with this method may be examined before deterioration. Material and Methods: The study used feces samples prepared with the zinc sulfate flotation method with different parasites identified in previous investigations. Investigation samples were taken from the top and bottom of the tubes at certain times. Results: The tubes containing samples were left at room temperature and no disruption of parasite structure was observed until over 48 hours after preparation. Conclusions: This may be interpreted as meaning that samples prepared with the zinc sulfate flotation method may remain in the tubes in situations where time is insufficient. As the method in this study may be easily applied and as parasite morphology is not disrupted for a long duration, it was concluded that it may be used in epidemiological studies

Keywords:

Zinc Sulfate, Concentration, Parasite,

PDF

___

Tecer H, Saygı G, Akın Z. İlköğretim Dördüncü Sınıf Öğrencilerinde Bağırsak Parazitlerinin Varlığının Üniversitesi Tıp Fakültesi Dergisi 2000; 22 (2): 73-8. Cumhuriyet
Arslan MÖ, Sarı B, Kulu B, Mor N. Kars Doğum ve Çocuk Bakımevi Hastanesine Gastrointestinal Çocuklarda Bağırsak Parazitlerinin Yaygınlığı. Türkiye Parazitoloji Dergisi 2008; 32 (3): 253-6.
Ataş AD, Alim A, Ataş M, Oğuzkaya Artan M. Yozgat İl Merkezinde Farklı Sosyo–Ekonomik Bölgelerdeki İki İlköğretim Okulunda Bağırsak Parazitlerinin Araştırılması. Türkiye Parazitoloji Dergisi 2008; 32 (3): 261-5.
Yaman Karadam S, Ertabaklar H, Ertuğ S. Aydın’da Üç Farklı Kreş ve Anasınıfındaki Çocuklarda Bağırsak Parazitlerinin Dağılımı. Türkiye Parazitoloji Dergisi 2008; 32 (3): 257- 60.
Çöplü N, Gözalan A, Akın L. Gaitada Parazit İncelemesinde Yöntemlerinin Parazitoloji Dergisi 2007; 31 (2): 123-8. Türkiye
Ural O. Gastrointestinal Yerleşimli Parazitlerin Tanı ve Tedavisi. Flora Dergisi 1999; 4 (2): 90- 101.
Özkan Baykır H. Dışkının Parazitolojik İncelemesinde Kullanılan Çeşitli Yoğunlaştırma Yöntemlerinin Karşılaştırılması. Yüksek Lisans Tezi, Celal Bayar Üniversitesi, Sağlık Bilimleri Enstitüsü, Manisa, 2014.
Şenbil O. ‘‘Dışkı Örneklerinde Parazitolojik Tanı’’.http://www.ttb.org.tr/STED/sted1200/1.ht ml 08.03.2018. 16
Cantoray, R. Hayvanlardan insanlara geçen bazı paraziter hastalıklar ve bunların önemi. Selçuk Üniversitesi Veteriner Fakültesi Dergisi 1984; Özel Sayı:133-9.
Özekinci T, Uzun A, Suay A, Elçi S, Akpolat N, Atmaca S. Giardiasisin Tanısında Enzyme İmmun Assay (EIA) ve Direkt İnceleme Yöntemlerinin Parazitoloji Dergisi 2005; 29 (2): 89-92. Türkiye
Toparlak M, Gargılı A, Tüzer E, Keleş V, Ulutaş Esatgil M, Çetinkaya H. Contamination of children’s playground sandpits with Toxocara eggs in İstanbul, Turkey. Turkish J Vet Anim Sci 2002; 26(2): 317-20.
Tudor P. Soil contamination with canine intestinal parasites eggs in the parks and shelter dogs from Bucharest area. Agric Agric Sci Proc 2015; 6: 387-91.
Vasquez T. O., Ruiz Hernandez A., Martinez Barbabosa I., Merlin Marin P. N., Tay Zavala J., Perez Torres A. Soil contamination with Toxocara sp. eggs in public parks and home gardens from Mexico City. Bolentin Chileno De Parasitologia-Journals 1996; 51(3-4): 54-8.
Bortolatto J. M., Sniegovski M. M., Teixeira Bernardi S., Crippa L. B., Rodrigues A. D. Prevalence of parasites with zoonotic potential in soil from the main public parks and squares in Caxias Do Soul, RS, Brazil. Revista de Patologia Tropical 2017; 46(1): 85-93.
Nooraldeen K. Contamination of public squares and parks with parasites in Erbil city, Iraq. Ann Agric Environ Med 2015; 22(3): 418-20.
Özümit Mintaş G. Diyareli vakalarda bağırsak parazitlerinin prevalansı ve direkt tanı metotlarının karşılaştırılması. Yüksek Lisans Tezi, Ankara Üniversitesi Sağlık Bilimleri Enstitüsü Ankara 2008.
Doğan N, Akgün Y, Akşit F, Şengül M. Toplu halde yaşanan çocuk ve yaşlı bakım evlerinde farklı yöntemlerle yapılan koproparazitolojik inceleme. Türkiye Parazitoloji Dergisi 1993; 17 (3-4): 48-56.
Doğan N, Kaya N. Dışkı muayene yöntemlerinin (direkt, flotasyon, sedimentasyon) bağırsak parazitozlarının tanısında değerleri. Türkiye Parazitoloji Dergisi 1988; 12 (1-2): 89-95.