Yoğun bakım ünitesinden izole edilen Burkholderia cepacia suşlarının çeşitli antibiyotiklere direnci

Burkholderia cepacia, özellikle yoğun bakım ünitelerinde ölümcül infeksiyonlara neden olan önemli bir patojendir. Çalışmada, hastanemiz yoğun bakım ünitesinden izole edilen B.cepacia suşlarının çeşitli antibiyotiklere karşı direnç oranları- nın belirlenmesi amaçlanmıştır. Yoğun bakım ünitelerinden gönderilen çeşitli klinik örneklerden izole edilen 43 B.cepacia suşu konvansiyonel yöntem- lerle idantifiye edilmiş, tür düzeyinde tiplendirme ve antibiyotik duyarlılıkları için BD Phoenix otomatize mikrobiyoloji siste- minden (Becton Dickinson, ABD) yararlanılmıştır. Suşların izole edildiği örnek türüne göre dağılımı; 23 kan, 12 idrar, 4 trakeal aspirat, 4 diğer (yara, kateter) olarak tespit edilmiştir. Antibiyotiklere direnç oranları ise meropeneme % 5, levofloksa- sine % 7, trimetoprim-sulfametoksazole % 7, seftazidime % 9 ve kloramfenikole % 32 olarak bulunmuştur. Sonuç olarak, yoğun bakım ünitelerinde yüksek mortalite nedeni olan B.cepacia suşları için elde ettiğimiz direnç oran- ları, yapılan diğer çalışmalarla kıyaslandığında daha düşük bulunmuştur. Ancak CLSI’nin önerdiği antibiyotik sayısının kısıtlı olması nedeniyle B.cepacia infeksiyonları dikkatle değerlendirilmelidir.

Resistance of Burkholderia cepacia strains ısolated from intensive care unit to various antibiotics

Burkholderia cepacia is an important pathogen that particularly causes fatal infections in intensive care units. In this study, we aimed to determine the resistance rates to various antibiotics of B.cepacia strains isolated in intensive care unit of our hospital. Forty-three B.cepacia strains isolated from various clinical specimens sent from intensive care unit were included in the study. After microorganisms had been identified as non-fermentative by conventional methods, BD Phoenix automated mic- robiology system (Becton Dickinson, USA) was utilized for species level identification and for antibiotic susceptibility tests. The distribution of isolated 43 B.cepacia strains according to the sample types was determined as 23 from blood, 12 from urine, 4 from tracheal aspirate, 4 from other specimens (wound, catheter). Resistance rates for antibiotics were as follows: 5 % for meropenem, 7 % for levofloxacin, 7 % for trimetoprime-sulfamethoxazole, 9 % for ceftazidime and 32 % for chlorampheni- col. As a result, obtained resistance rates for B.cepacia which is associated with high mortality in intensive care units, were found lower compared to the other studies. However, because of the limited number of antibiotics recommended by CLSI, B.cepacia infections should be carefully evaluated.

___

  • 1. Bonacorsi S, Fitoussi F, Lhopital S, Bingen E. Comparative in vitro activities of meropenem, imipenem, temocillin, piperacillin, and ceftazidi me in combination with tobramycin, rifampin, or ciprofloxacin against Burkholderia cepacia isola tes from patients with cystic fibrosis, Antimicrob Agents Chemother 1999;43(2):213-7. PMid:9925508 PMCid:89053
  • 2. Clinical and Laboratory Standards Institute (CLSI). Performance standards for antimicrobial susceptibility testing; Twentieth informational supplement, M100-S20, CLSI, Wayne PA (2010).
  • 3. Dizbay M, Tunccan OG, Sezer BE, Aktas F, Arman D. Nosocomial Burkholderia cepacia infections in a Turkish university hospital: a five-year surveil lance, J Infect Dev Ctries 2009;3(4):273-7. PMid:19759490
  • 4. Enoch DA, Birkett CI, Ludlam HA. Non-fermen tative Gram-negative bacteria, Int J Antimicrob Agents 2007;29(3):33-41. http://dx.doi.org/10.1016/S0924-8579(07)72176-3
  • 5. Gales AC, Jones RN, Andrade SS, Sader HS. Antimicrobial susceptibility patterns of unusual nonfermentative gram-negative bacilli isolated from Latin America: report from the SENTRY Antimicrobial Surveillance Program (1997-2002), Mem Inst Oswaldo Cruz 2005;100(6):571-7. http://dx.doi.org/10.1590/S0074-02762005000 600011
  • 6. Hancock RE. Resistance mechanisms in Pseudo monas aeruginosa and other nonfermentative gram-negative bacteria, Clin Infect Dis 1998; 27(1): 93-9. http://dx.doi.org/10.1086/514909 PMid:9710677
  • 7. Hutchinson GR, Parker S, Pryor JA et al. Home use nebulizers: a potential primary source of Burkholderia cepacia and other colistin-resistant, gram-negative bacteria in patients with cystic fib rosis, J Clin Microbiol 1996;34(3):584-7. PMid:8904419 PMCid:228851
  • 8. Lipowski D, Rzadkiewicz E, Czekalska-Lachowicz E. Burkholderia cepacia: a new pathogen causing nosocomial infections, Przegl Epidemiol 2008; 62(1):7-17. PMid:18536220
  • 9. LiPuma JJ, Currie BJ, Lum GD, Vandamme PAR (Çeviren: G.Emektaş). Burkholderia, Stenotropho monas, Ralstonia, Cupriavidus, Pandoraea, Bre vundimonas, Comamonas, Delftia ve Acidovorax, “Murray PR, Baron EJ, Jorgensen JH, Landry ML, Pfaller MA (eds) (Çeviri ed: A.Başustaoğlu). Klinik Mikrobiyoloji, 9.baskı” kitabında s.749-69, Atlas Kitapçılık, Ankara (2009).
  • 10. Loutet SA, Valvano MA. A decade of Burkholderia cenocepacia virulence determinant research, Infect Immun 2010;78(10):4088-100. http://dx.doi.org/10.1128/IAI.00212-10 PMid:20643851 PMCid:2950345
  • 11. McClean S, Callaghan M. Burkholderia cepacia complex: epithelial cell-pathogen confrontations and potential for therapeutic intervention, J Med Microbiol 2009;58(1):1-12. http://dx.doi.org/10.1099/jmm.0.47788-0 PMid:19074648
  • 12. Oie S, Kamiya A. Microbial contamination of anti septics and disinfectants, Am J Infect Control 1996;24(5):389-5. http://dx.doi.org/10.1016/S0196-6553(96)90027-9
  • 13. Öztürk R. Çoklu ilaç dirençli Pseudomonas aeru ginosa, Burkholderia cepacia, Stenotrophomonas maltophilia ile oluşan infeksiyon hastalıklarında antimikrobik tedavi, ANKEM Derg 2008;22(Ek 2):36-43.
  • 14. Sader HS, Jones RN. Antimicrobial susceptibility of uncommonly isolated non-enteric gram- negative bacilli, Int J Antimicrob Agents 2005; 25(2):95-109. http://dx.doi.org/10.1016/j.ijantimicag.2004.10.002 PMid:15664479
  • 15. Sousa SA, Ramos CG, Leitão JH. Burkholderia cepacia complex: Emerging multihost pathogens equipped with a wide range of virulence factors and determinants, Int J Microbiol 2011;pii:607575. Epub 2010, Aug 3.
  • 16. Sümerkan B. Yoğun bakım ünitesinde gram- negatif mikroorganizmalar ve direnç sorunu, Yoğun Bakım Derg 2003;3(2):129-34.
  • 17. Vahaboğlu H. Çoğul dirençli nonfermentatif Gram-negatif basiller, Hastane İnfeksiyon Derg 2000;4(4):222-5.
  • 18. Zhou J, Chen Y, Tabibi S, Alba L, Garber E, Saiman L. Antimicrobial susceptibility and synergy studi es of Burkholderia cepacia complex isolated from patients with cystic fibrosis, Antimicrob Agents Chemother 2007;51(3):1085-8. http://dx.doi.org/10.1128/AAC.00954-06 PMid:17158942 PMCid:1803131
ANKEM Dergisi-Cover
  • ISSN: 1301-3114
  • Yayın Aralığı: Yılda 3 Sayı
  • Başlangıç: 1986
  • Yayıncı: Antibiyotik ve Kemoterapi Derneği
Sayıdaki Diğer Makaleler

Mycobacterıum tuberculosıs kompleks izolatlarının primer antitüberküloz ilaçlara duyarlılığının değerlendirilmesi

YASEMİN ÖZ, Müge ASLAN, Filiz AKŞİT, GÜL DURMAZ, Nuri KİRAZ

Tartışılan adjuvan: Skualen

Görkem YAMAN, Mustafa BERKTAŞ, HÜSEYİN GÜDÜCÜOĞLU

Kahramanmaraş’ta huzurevi ve çocuk yuvasında kalan bireylerde pnömokok taşıyıcılığı ve penisiline direnç

ZERİFE ORHAN, Mustafa GÜL, MURAT ARAL, Ali ÖZER, ARZU KAYIŞ

Yoğun bakım ünitesinden izole edilen Burkholderia cepacia suşlarının çeşitli antibiyotiklere direnci

MEHMET PARLAK, AYTEKİN ÇIKMAN, HÜSEYİN GÜDÜCÜOĞLU, Mustafa BERKTAŞ, Abdullah BEKTAŞ

Vorikonazol ile tedavi edilen Aspergillus fumigatus'a bağlı spondilodiskit olgusu

Selin BARDAK ÖZCEM, Derya ÇAĞLAYAN SERİN, Serhat UYSAL, Sedat ÇAĞLI, Hüsnü PULLUKÇU, Meltem IŞIKGÖZ TAŞBAKAN, Bilgin ARDA, Tansu YAMAZHAN, Dilek METİN, Sercan ULUSOY, Oğuz Reşat SİPAHİ

Yoğun bakım ünitesinde yatan hastaların çeşitli klinik örneklerinden izole edilen mikroorganizmalar ve antibiyotik duyarlılıkları

Ayşe ERTÜRK, Ayşegül ÇOPUR ÇİÇEK, Ersin KÖKSAL, Zeynep ŞENTÜRK KÖKSAL, Songül ÖZYURT

Van yöresinde Helicobacter pylori prevalansı, yaş ve cinsiyete göre dağılımı

AYTEKİN ÇIKMAN, MEHMET PARLAK, HÜSEYİN GÜDÜCÜOĞLU, Mustafa BERKTAŞ

Akut gastroenteritli çocuklarda rotavirus sıklığının araştırılması ve rotavirus sezonunun takibi: Beş yıllık sonuçların değerlendirilmesi

Mehmet İLKTAÇ, Ayşegül ŞAHİN, Hasan NAZİK, Betigül ÖNGEN

Kronik hepatit C hastalarında otoantikor sıklığı ve HCV RNA pozitifliği ile ilişkisi

Işıl FİDAN, Seyyal ROTA, Resul KARAKUŞ, Hülya DURAN, Melek ERTAŞ, Zübeyde LALE, Turgut İMİR