19621

Radyasyona Maruz Bırakılan Ratlarda Lipid Peroksidasyonu ve Bazı Antioksidan Parametreler Üzerine Propolisin Etkisi

Bu araştırmada, radyasyon uygulaması yapılan ratlarda kanda; MDA, GSH seviyelerinde, SOD, GSH-Px ve CAT aktivite düzeylerinde propolis verilmesi ile meydana gelecek değişikliklerin belirlenmesi amaçlandı. Araştırma 3 grup üzerinde yapıldı ve 30 adet rat kullanıldı. Birinci grup kontrol grubu olup herhangi bir uygulama yapılmadı. İkinci grup üç gün boyunca 100 mg/kg canlı ağırlık olacak şekilde % 0.9’luk serum fizyolojik tuzlu su intraperitonal (i.p.) olarak verildi ve uygulama sonunda radyasyon (6 Gy dozda gama ışını) ışınlaması (160 MLC LINAC) yapıldı. Üçüncü grup üç gün boyunca 100 mg/kg olacak şekilde propolis (i.p.) yolla verildi ve uygulama sonunda aynı dozda radyasyon uygulandı. Alınan kan örneklerinde; plazma MDA düzeyleri ile eritrosit GSH, SOD, GSH-Px ve CAT aktiviteleri spektrofotometrik yöntem kullanılmak sureti ile ölçüldü. Yapılan istatistiksel değerlendirme sonunda; radyasyon grubunda, kontrol grubu ile karşılaştırıldığında; plazma MDA (P<0.001) düzeyi artarken, eritrosit GSH (P<0.001), GSH-Px (P<0.001), CAT (P<0.001) ve SOD (P<0.001) aktiviteleri önemli düzeyde azalma gösterdi. Propolis + radyasyon grubunda, radyasyon grubuna kıyasla; plazma MDA (P<0.001) düzeyi istatistiksel önemde azalmasına karşın, eritrosit GSH düzeyi, SOD, GSH-Px ve CAT (p>0.05) aktivitelerinin ise etkilenmediği gözlendi. Bu çalışmada radyasyonun neden olduğu enzim aktivitesi azalmasına propolisin kullanılan dozunun artırıcı yönde etki etmediği gözlenmiştir.

Anahtar Kelimeler:

Antioksidan, Lipid Peroksidasyon, Propolis, Radyasyon, Rat

The Effect of Propolis on Lipid Peroxidation and Some Antioxidants Parameters in the Radiation Exposed Rats

The aim of this study was to determine the changes on radiation exposed rats and the blood in the levels of MDA, GSH, activities SOD, GSH-Px and CAT with the application of propolis. This research was carried out on 3 groups and 30 rats were used. Group 1 was the control group and no application was made. Group 2 was given 100 mg/kg body weight of % 0.9 saline brine intraperitoneal for three days and at the end of the application radiation (6 Gy dose of gamma rays) irradiation was applied. Group 3 was given 100 mg/kg propolis intraperitoneal for three days and at the end of the application the radiation with the same dose was applied. In blood samples taken, plasma MDA, erythrocyte GSH levels, SOD, GSH-Px and CAT activities were measured using spectrophotometric method. After statistical analyses, when compared to the control group, in radiation group, plasma MDA (P<0.001) and erythrocyte GSH (P<0.001) levels, GSH-Px (P<0.001), CAT (P<0.001) and SOD (P<0.001) activites were found to be significant. When compared to radiation group, in propolis + radiation group; while the levels of plasma MDA (P<0.001) were found to be signifacant, levels of GSH (P>0.05) in erythrocyte and activities of SOD, GSH-Px and CAT were not found to be significant. In this study, it was observed that the dose of propolis used did not act to increase the decrease in enzyme activity caused by radiation.

Keywords:

Antioxidant, Lipid Peroxidation, Propolis, Radiation, Rat.,

PDF

___

1. Eğilmez E., 2009. Tıpta radyasyon ve korunma. Pelikan Yayınları, ISBN 978-605-89142-0-9, Ankara. 2. Sert C., Çelik MS., 1996. Radyasyondan koruyucu ajanlar. Türkiye Klinikleri J of Med Sci, 16, 292-298 3. Gökpınar Ş., Koray T., Akçiçek E., Göksan T., Durmaz Y., 2006. Algal antioksidanlar. Ege J Fish Aqua Sci, 23, 85-89. 4. Valko M., Leibfritz D., Moncol J., Cronin MT., Mazur M., Telser J., 2007. Free radicals and antioxidants in normal physiological functions and human disease. Int J Biochem Cell Biol, 39, 44-84. 5. De Zwart LL., Meerman JH., Commandeur JN., Vermeulen NP., 1999. Biomarkers of free radical damage: Applications in experimental animals and in humans. Free Radic Biol Med, 26, 202-226. 6. Mates JM., Perez-Gomez C., Nurez de Castro I., 1999. Antioxidant enzymes and human diseases. Clin Biochem, 328, 595-603. 7. Akkuş İ., 1995. Serbest radikaller ve fizyopatolojik etkiler. Mimoza Yayınları, 2. Baskı, Konya. 8. Dündar Y., Aslan R., 2000. Hekimlikte oksidatif stres ve antioksidanlar. Afyon Kocatepe Üniversitesi Yayınları, Afyonkarahisar. 9. Özcan M., Ceylan DA., Unver A., Yetişir R., 2003. Türkiye’nin çeşitli bölgelerinden sağlanan polen ve propolis ekstraktlarının antifungal etkisi. U Bee J, 3, 27-34. 10. Menezes H., Bacci-Jr M., Oliveria SD., Pagnocca FC., 1997. Antibacterial properties of propolis and products containing propolis from Brazi Apidologie, 28, 71-76. 11. Amoros M., Lurton E., Boustie J., Girre L., Sauvager F., Cormier M., 1994. Comparison of the anti-Herpes simplex virus activities of propolis and 3-methyl-butyl-2-enyl caffeate. PNAS, 7, 644-647. 12. Isla MI., Moreno MIN., Sampietro AR., Vattuone MA., 2001. Antioxidant activity of Argentina propolis extracts. J Ethnopharmacol, 76, 165-170. 13. Eroğlu HE., Tatlışen A., Özkul Y., 2004. Mesane kanserli doku kültürlerindeki mikronükleus üzerine propolis ve mitomisin-c’nin etkileri. E Ü Sağlık Bil Derg, 13, 15-20. 14. Özalpan A., 2001. Temel Radyobiyoloji. Haliç Üniversitesi Yayınları, 1. Basım, İstanbul, 1-218. 15. Orsolic N., Benkovic V., Horvat-Knezevic A., Kopjar N., Kosalec I., Bakmaz M., Mihaljevic Z., Bendelja K., Basic I. 2007. Assessment by survival analysis of the radioprotective properties of propolis and its polyphenolic compounds. Biol Pharm Bull, 30, 946-951. 16. Kosalec I., Bakmaz M., Pepeljnjak S., Knezevic SV., 2004. Quantitative analysis of the flavonoids in raw propolis from northern Croatia. Acta Pharm, 54, 65-72. 17. Matkovics B., Szabo I., Varga IS., 1998. Determination of enzyme activities in lipid peroxidation and glutathione pathways (in Hungarian). Laboratoriumui Diagnos, 15, 248-249. 18. Placer ZA., Cushmann LL., Johnson BC., 1966. Estimation of products of lipid peroxidation in biochhemical systems. Analytica Biochem, 16, 359-364. 19. Sedlak J., Lindsay RHC., 1968. Estimation of total protein bound and nonprotein sulfhydryl groups in tissue with ellmann’s reagent. Analytical Biochem, 25, 192-205. 20. Lawrence RA., Burk RF., 1976. Glutathione peroxidase activity in selenium-deficien tratliver. Biochem Biophysical Res Commun, 71, 952-958. 21. Aebi H., 1984. Catalase invitro. Methods in Enzymology, 105, 121-126. 22. Sun Y., Oberley LW., Li Y., 1988. A simple method for clinical assay of superoxide dismutase. Clin Chem, 34, 497-500. 23. Gornal AG., Bardawill CJ., David MM., 1975. Determination of serum proteins by means of the biüret reaction. J Biol Chem, 177, 751-766. 24. Sümbüloğlu K., Sümbüloğlu V., 1995. Biyoistatistik. 6. Baskı, Özdemir Basım Yayım ve Dağıtım LTD Şti., Ankara. 25. Gençay Ş., 1994. Nükleer elektrik ve çevre. Elektrik enerjisi ve teknolojileri sempozyumu, İstanbul Teknik Üniversitesi Yayınları, İstanbul, Türkiye. 26. Scheller S., Wilczok T., Imielski S., Krol W., Gabrys J., Shani J., 1990. Free radical scavenging by ethanol extract of propolis. Int J Radiation Biol, 57, 461-65. 27. Bolfa P., Vidrighinescu R., Petruta A., Dezmirean D., Stan L., Vlase L., Damian G., Catoi C., Filip A., Clichici S., 2013. Photo protective effects of Romanian propolis on skin of mice exposed to UVB irradiation. Food Chem Toxicol, 62, 329-342. 28. El-Ghazaly MA., Rashed RRA., Khayyal MT., 2011. Anti-ulcerogenic effect of aqueous propolis extract and the influence of radiation exposure. Int J Radiation Biol, 87, 1045-1051. 29. Ceyhan AM., Akkaya VB., Guleçol SC., Ceyhan BM., Özgüner F., Chen WC., 2012. Protective effects of beta-glucanaga instoxidative injury induced by 2.45-GHz electromagnetic radiation in the skin tissue of rats. Arch Dermatol Res, 304, 521-527. 30. Shirazi A., Mihandoost E., Ghobadi G., Mohseni M., Ghazi-Khansari M., 2013. Evaluation of radio-protective effect of melatonin on whole body irradiation induced liver tissue damage. Cell J, 14, 292-297. 31. Dixita AK., Bhatnagara D., Kumarb V., Chawlac D., Fakhruddinc K., Bhatnagara D., 2012. Antioxidant potential and radioprotective effect of soy isoflavone against gamma irradiation induced oxidative stress. J Func Foods, 4, 197-206. 32. Jiang ZT., Xu B., Yang MW., Li ZZ., Zhang YB., Jiang DP., 2013. Protection by hydrogen against gamma ray-induced testicular damage in rats”. Basic Clin Pharmacol Toxicol, 112, 186-191. 33. Mansour HH., Hafez HF., 2012. Protective effect of with aniasomnifera against radiation-induced hepatotoxicity in rats. Ecotoxicol Environ Saf, 80, 14-19. 34. Demirel S., Doganay S., Turkoz Y., Dogan Z., Turan B., Firat PGB., 2012. Effects of third generation mobile phone-emitted electromagnetic radiation on oxidative stres parameters in eye tissue and blood of rats. Cutan Ocul Toxicol, 31, 89-94. 35. Alkis HE., Kuzhan Dirier A., Tarakcioglu AM., Demir E., Saricicek E., Demir T., Ahlatci A., Demirci A., Cinar K., Taysi S., 2015. Neuroprotective effects of propolis and caffeic acid phenethyl ester (CAPE) on the radiation-injured brain tissue (Neuroprotective effects of propolis and CAPE). Int J Radiation Res, 13, 297-303.
36. Jin LG., Chu JJ., Pang QF., Zhang FZ., Wu G., Le-Yuan Zhou LY., Zhang XJ., Xing CG., 2015. Caffeic acid phenethyl ester attenuates ionize radiation-induced intestinal injury through modulation of oxidative stress, apoptosisand p38MAPK in rats. Environ Toxicol Pharmacol, 40, 156-163.
37. Rejholcova M., Wilhelm J., 1989. Time course of lipolytic activity and lipid peroxidation after whole-body gamma-irradiation of rats. Radiat Res, 117, 21-25.
38. Kono Y., Fridovich I., 1982. Superoxide radical inhibits catalase. J Biol Chem, 257, 5751-5754.