Brucella canis İnfeksiyonunun Serolojik Tanısında İki Farklı Brucella Suşundan Hazırlanan Antijenlerin İndirekt ELISA’da Kullanılabilirliğinin Araştırılması

Bu çalışmada, B. canis infeksiyonunun serolojik teşhisi için B. canis M- ve B.abortus RB51 suşlarından hazırlanan antijenlerin kullanıldığı indirekt ELISA (i-ELISA) geliştirilmesi amaçlanmıştır. B. canis infeksiyonu etken izolasyonu ve agar jel immunodiffuzyon (AGID) testi ile doğrulanmış 16 adet pozitif serum ve B. canis infeksiyonu yönünden hiçbir klinik belirti göstermeyen AGID negatif 24 adet serum testin duyarlılığı ve özgüllüğünü saptamak için referans serumlar olarak kullanılmıştır. Validasyon paneli kullanılarak, tanısal duyarlılık ve özgüllüğü %100 verecek eşik değeri B. abortus RB51 i-ELISA için OD450 0.243 ve B. canis M- i-ELISA için OD450 0.354 olarak belirlenmiştir. Saptanan eşik değer göz önüne alınarak, Şanlıurfa ve Bursa Büyükşehir Belediyesi Köpek Barınaklarından temin edilen 113 adet köpek serumu çabuk lam aglütinasyon testi (ÇLAT) ve geliştirilen iki i-ELISA prototipi ile test edilmiştir.  Şanlıurfa ilinden temin edilen 47 köpek serumundan 6’sı (%12.8) ÇLAT ile, 3’ü (%6.4) B. abortus RB51 i-ELISA ile ve ikisi (%4.2) de B. canis M- i-ELISA ile pozitif bulunmuştur. Bursa ilinden temin edilen 66 adet köpek serumundan 11’i (%16.6) ÇLAT ile, 5’i (%7.6) B. abortus RB51 i-ELISA ile ve 4’ü (%6.1) de B. canis M- i-ELISA ile pozitif bulunmuştur. Sonuçta B. abortus RB51 i-ELISA ve B. canis M- i-ELISA’nın küçük farklılıklar ile benzer duyarlılık ve özgüllük gösterdikleri ve bu testlerin köpeklerde B. canis infeksiyonunda doğrulayıcı test olarak ÇLAT ile birlikte başarılı bir şekilde kullanılabileceği kanısına varılmıştır.

Evaluation of Usage Indirect ELISA Using Antigens From Two Different Brucella Strains in Serological Diagnosis of B. canis Infection

The aim of this study was to develop two indirect ELISAs (i-ELISA) using heat-extracted antigens prepared with the B. canis M- and B. abortus RB51 strains for the serologic diagnosis of B. canis infection in dogs. Reference sera consisted of 16 agar gel immunodiffusion (AGID)-positive sera from animals with clinical signs and positive bacterial isolation and 24 AGID-negative sera from healthy animals with no history or evidence of canine brucellosis were used to assess diagnostic sensitivity and specificity of the tests. Using validation panel, the cut-off values of OD450 0.243 and 0.354 were selected to give 100 % diagnostic specificity and sensitivity for B. abortus RB51 i-ELISA and B. canis M- i-ELISA, respectively. Based on these cut-off values, 113 serum samples taken from dog shelters in Şanlıurfa and Bursa metropolitan municipalities tested by rapid slide agglutination test (RSAT) and both i-ELISAs. Of the 47 dog sera tested from Şanlıurfa, 6 (12.8%) were positive by RSAT, 3 (6.4%) were positive by B. abortus RB51-i-ELISA and two of the samples (4.2%) were found positive by B. canis M- i-ELISA. Of the 66 serum samples from Bursa, 11 (16.6%) were found positive by RSAT, 5 (7.6%) and 4 (6.1%) of which were confirmed by B. abortus RB51 i-ELISA and B. canis M- i-ELISA, respectively. In conclusion, both B. abortus RB51 i-ELISA and B. canis M- i-ELISA yielded the same diagnostic specificity and sensitivity with minor differences and it was thought that they could be used successfully as a confirmatory test together with RSAT as a screening test.

___

  • Alton GG, Jones LM, Angus RD, Verger JM (1988). Brucella canis. In: Techniques for the Brucellosis Laboratory, Institut National de la Recherche Agronomique, Puplication Paris, France, pp; 169-174. Badakhsh FF, Carmicheal LE, Douglas JA (1982). Improved rapid slide agglutination test for presumptive diagnosis of canine brucellosis. J Clin Microbiol, 15, 286-289. Barrouin-Melo SM, Poester FP, Riberio MB, Alcantara AC, Aguiar PHP, Nascimento IL, Schaer RE, Nascimento RM, Freire SM (2007). Diagnosis of canine brucellosis by ELISA using an antigen obtained from wild Brucella canis. Res Vet Sci, 83, 340-346. Carmichael LE, Joubert JC (1987). A rapid slide agglutination test for the serodiagnosis of Brucella canis infection that employs a variant (M-) organism as antigen, Cornell Vet, 77, 3-12. Carmichael LE, Kenney RM (1970). Canine brucellosis: the clinical disease, pathogenesis, and immune response. J Am Vet Med Assoc, 156, 1726. Carmichael LE (1966). Abortions in 200 beagles. J Am Vet Med Assoc, 149, 1126. Carmichael LE (1990). Brucella canis. In : Nielsen K, Duncan JR, eds. Animal Brucellosis, Boca Raton FL, CRC Press, pp; 335-350. Currier RW, Raithel WF, Martin RJ, Potter ME (1982). Canine brucellosis, J Am Vet Med Ass, 180, 132-133. Diker KS, İstanbulluoğlu E, Ayhan H, Soysal G (1984). A serosurvey of Brucella canis infections in man at Bursa district. Mikrobiyol Bult, 18, 203-207. Diker, KS, Aydın N, Erdeger J, Ozyurt M (1987). A serologic survey of dogs for Brucella canis and Brucella abortus and evaluation of mercaptoethanol microagglutination test. Ankara Univ Vet Fak Derg, 34, 268-277. Escobar GI, Boeri EJ, Ayala SM, Lucero NE (2010). The feasibility of using prepared with rough Brucella strains for diagnosis of canine brucellosis. Rev Argent Microbiol, 42, 35-40. Hollett RB (2006). Canine brucellosis: Outbreaks and compliance. Theriogenology, 66, 575–587. İstanbulluoğlu E, Diker, KS (1983). An serological analysis of Brucella canis. Ankara Univ Vet Fak Derg, 30, 14-18. Lopez G, Ayala SM, Efron AM, Gomez CF, Lucero NE (2009). A serological and bacteriological survey of dogs to detect Brucella infection in Lomas de Zamora Buenos Aires province. Rev Argent Microbiol, 41, 97-101. Lopez G, Ayala SM, Escobar GI, Lucero NE (2005). Use of Brucella canis antigen for detection of ovine serum antibodies against Brucella ovis. Vet Microbiol, 2005, 105, 181-187. Lucero NE, Escobar GI, Ayala SA, Lopez G (2002). Sensitivity and specificity of an indirect enzyme-linked immunoassay for the diagnosis of Brucella canis infection in dogs. J Med Microbiol, 51, 656-660. Mateu-de-antonio EM, Martin M, Casal J (1994). Comparison of serological tests used in canine brucellosis diagnosis. J Vet Diagn Invest, 6, 257-259. Mateu-de-antonio EM, Martin M, Soler M (1993). Use of indirect enzyme-linked immunosorbent assay with hot saline solution extracts of a variant (M-) strain of Brucella canis. Am J Vet Res, 54, 1043-1046. Moreno E, Jones LM, Berman DT (1984). Immunochemical characterization of Rough Brucella Lipopolysaccharides, Infect Immun, 43, 779-782. Nielsen K, Smith P, Conde S, Dragide Benitez G, Gall D, Halbert G, Kenny K, Massengill C, Muenks Q, Rojas X, Perez B, Samartino L, Silva P, Tollersrud T, Lolley M (2004). Rough lipopolysaccharide of Brucella abortus RB51 as a common antigen for serological detection of B. ovis, B. canis, and B. abortus RB51 exposure using indirect enzyme immunoassay and fluorescence Polarization assay. J Immunoass Immunoch, 25, 171-182. Nielsen K, Smith P, Yu WL, Rojas X, Perez B, Conde S, Samartino L, Robles C (2007). Detection of ovine antibody to Brucella ovis by indirect enzyme immunoassay. J Immunoass Immunoch, 28, 243-250. Oliveira MZD, Vale V, Keid L, Freire SM, Meyer R, Portela R, Barrouin-Melo SM (2011). Validation of an ELISA method for the serological diagnosis of canine brucellosis due to Brucella canis. Res Vet Sci, 90, 425-431. Öncel T, Akan M, Sareyyüpoğlu B, Tel OY, Çiftçi A (2005). Seroprevalance of Brucella canis infection of dogs in two provinces in Turkey. Turk J Vet Anim Sci, 29, 779-783. Pickerill PA (1970). Comments on epizootiology and control of canine brucellosis. J Am Vet Med Assoc, 156, 1741-1742. Schoonjans F, Zalata A, Depuyd, CE, Comhaire FH (1995). MedCalc:a new computer program for medical statistics. Comput. Methods Programs Biomed, 48, 257-262. Uçan US, Aras Z, Semacan A (2010). Serodiagnosis of Brucella canis infection in dogs by a dipstick enzyme immunoassay. Eurasian J Vet Sci, 26, 109-112. Wanke MM, Delpino V, Baldi PC (2002). Comparative performance of tests using cytosolic or outer membrane antigens of Brucella for the serodiagnosis of canine brucellosis. Vet Microbiol, 88, 367-375. Wanke, MM (2004). Canine brucellosis. Anim Reprod Sci, 82-83, 195–207. Yardımcı H, Akan M, Atasever A (1998). Brucella canis’in biyolojik materyallerdeki yaşam süresi. YYÜ Vet Fak Derg, 9, 77-79. Zoha SJ, Carmicheal LE (1981). Properties of Brucella canis surface antigens associated with colonial mucoidness. Cornell Vet, 71, 428-438. Zoha SJ, Carmicheal LE (1982). Properties of cell wall antigens of virulent Brucella canis and a less mucoid variant of reduced pathogenicity. Am J Vet Res, 43, 171-174.
Van Veterinary Journal-Cover
  • ISSN: 2149-3359
  • Başlangıç: 1990
  • Yayıncı: Yüzüncü Yıl Üniv. Veteriner Fak.
Sayıdaki Diğer Makaleler

Muş İli Korkut İlçesinde Koyunculuk İşletmelerinin Sosyo-Ekonomik Yapısı ve Üretim Maliyetleri

Kürşad KAYMAK, Savaş SARIÖZKAN

Yeni Zelanda Tavşanında Arteria Celiaca’nın Seyri ve Dağılımı Üzerinde Makroanatomik Araştırmalar

Nilgün KURU

Sütçü Sığırlardan İzole Edilen Escherichia coli O157:H7 Suşlarında Virulans Genlerinin Varlığının Araştırılması

Hakan KALENDER

Türkiye’de Yetiştirilen Bazı Sığır Irklarında Akirin 2 Gen Polimorfizminin PCR-RFLP Yöntemi ile Belirlenmesi

Güray COŞKUN, Bilal AKYÜZ

Brucella canis İnfeksiyonunun Serolojik Tanısında İki Farklı Brucella Suşundan Hazırlanan Antijenlerin İndirekt ELISA’da Kullanılabilirliğinin Araştırılması

Sevil ERDENLİĞ GÜRBİLEK, Oktay KESKİN, Esra B ÜYÜKÇANGAZ, Osman Yaşar TEL

Marmara Bölgesinde Postmortem Kuzu ve Oğlaklarda Saptanan İshal Vakalarının Bakteriyolojik, Virolojik ve Parazitolojik Etiyolojisi

Sezai ARSLAN, Taraneh ÖNCEL, Mehmet Engin MALAL, Esra SATIR, Ahmet SAİT, Aysel ÜNSAL BACA, Demet YAMAN AYDOĞAN

Meyveli Yoğurtlarda Bazı Patojen Bakterilerin Gelişimlerinin İncelenmesi

Ufuk KAMBER

Van Kedisi Yavrularının Büyüme Sürecinde Hematolojik Profilin Araştırılması

Nazmi YUKSEK, Nuri ALTUĞ, Yıldıray BAŞBUĞAN, Zahid AĞAOĞLU

Küresel İklim Değişiklikleri ve Viral Enfeksiyonlar

Ayhan AKMAN, Semra GÜMÜŞOVA

Usnea Longissima Ach. Liken Türünden Elde Edilen Total Ekstraktın İn Vitro Ortamda Rat İleum Motilitesi Üzerine Etkilerinin Araştırılması

Aslıhan ATASEVER, Ali ÇINAR, Volkan GELEN, Emin ŞENGÜL, Fikret ÇELEBİ