Postnatal Fare Testis Gelişiminde Caspase-Bağımlı ve Caspase-Bağımsız Apoptozun Değerlendirilmesi

Testis gelişimi sırasında gerçekleşen apoptozun germ hücrelerinin kontrolü için gerekli olduğu ortaya konmuştur. Hücre ölümü; “caspase-bağımlı” ya da mitokondriden salınan AIF gibi çeşitli proapoptotik faktörler aracılığıyla “caspase-bağımsız” olmak üzere iki şekilde düzenlenir. PARP-1’in aşırı aktivasyonunun “caspase-bağımlı” hücre ölümünde önemli bir rolü olduğu bilinmektedir. Caspase-bağımlı apoptotik süreçlerde etkin rolü olduğu bilinen PARP-1’in fare testis gelişiminde rolü olup olmadığı bilinmemektedir. Bu çalışmanın amacı, postnatal testis gelişiminde, caspase-bağımlı ve caspase-bağımsız apoptotik proteinlerin ekspresyonlarının değerlendirilmesidir. Postnatal (PN) gelişimin 0, 5, 9, 15, 20. günlerinde ve erişkin fare testis dokularında; PARP-1, cleaved-PARP-1, cleaved-caspase-3 ve AIF proteinlerinin düzeyleri western blot yöntemi ile değerlendirilmiştir. İmmünohistokimya metodu ile cleaved caspase-3 ve AIF ekspresyonları ve TUNEL metodu ile değerlendirilmiştir. PARP-1 ekspresyonu, seçilen tüm günlerde değişmeden devam etmiştir. Cleaved-PARP-1 ve cleaved Caspase-3’ün, PN0, PN5, PN9. ve PN15. günlerdeki hücre-özgün ekspresyon düzeyleri aynıdır. Postnatal 5. günde artmaya başlayan AIF protein düzeyleri, PN9, PN15, PN20. günlerde ve erişkinde de yükselmiştir. Bulgularımız, postnatal gelişim sürecinde postnatal caspase-bağımlı yolakların germ hücre apoptozunda rol aldığını düşündürmektedir. İlginç olarak, aynı süreçlerde artan AIF’nin sitoplazmik ekspresyonu, normal gelişim sürecinde bu molekülün nükleusa taşınmaması, caspase-bağımsız apoptotik yolağın germ hücre apoptozunda rolü olmayabileceğini ve/veya AIF’nin germ hücre farklanmasında başka bir role sahip olabileceğini akla getirmektedir.

Assessment of Caspase-Dependent and Caspase-Independent Apoptosis in the Development of Postnatal Mouse Testis

___

  • 1. Bellamy, C.O., et al., Cell death in health and disease: the biology and regulation of apoptosis. Semin Cancer Biol, 1995. 6(1): p. 3-16.
  • 2. Cummings, M.C., C.M. Winterford, and N.I. Walker, Apoptosis. Am J Surg Pathol, 1997. 21(1): p. 88-101.
  • 3. Majno, G. and I. Joris, Apoptosis, oncosis, and necrosis. An overview of cell death. Am J Pathol, 1995. 146(1): p. 3-15.
  • 4. Schwartzman, R.A. and J.A. Cidlowski, Apoptosis: the biochemistry and molecular biology of programmed cell death. Endocr Rev, 1993. 14(2): p. 133-51.
  • 5. Cohen, J.J., Apoptosis. Immunol Today, 1993. 14(3): p. 126-30.
  • 6. Gavrieli, Y., Y. Sherman, and S.A. Ben-Sasson, Identification of programmed cell death in situ via specific labeling of nuclear DNA fragmentation. J Cell Biol, 1992. 119(3): p. 493-501.
  • 7. Lu, J., K.W. Ashwell, and P. Waite, Advances in secondary spinal cord injury: role of apoptosis. Spine (Phila Pa 1976), 2000. 25(14): p. 1859-66.
  • 8. Crowe, M.J., et al., Apoptosis and delayed degeneration after spinal cord injury in rats and monkeys. Nat Med, 1997. 3(1): p. 73-6.
  • 9. Li, M., et al., Functional role of kaspaz-1 and kaspaz-3 in an ALS transgenic mouse model. Science, 2000. 288(5464): p. 335-9.
  • 10. Lou, J., et al., Apoptosis as a mechanism of neuronal cell death following acute experimental spinal cord injury. Spinal Cord, 1998. 36(10): p. 683-90.
  • 11. Takagi, T., et al., Kaspaz activation in neuronal and glial apoptosis following spinal cord injury in mice. Neurol Med Chir (Tokyo), 2003. 43(1): p. 20-9; discussion 29-30.
  • 12. Susin, S.A., et al., Molecular characterization of mitochondrial apoptosis-inducing factor. Nature, 1999. 397(6718): p. 441-6.
  • 13. Petrilli, V., et al., Noncleavable poly(ADP-ribose) polymerase-1 regulates the inflammation response in mice. J Clin Invest, 2004. 114(8): p. 1072-81.
  • 14. Mahfouz, R.Z., et al., Evaluation of poly(ADP-ribose) polymerase cleavage (cPARP) in ejaculated human sperm fractions after induction of apoptosis. Fertil Steril, 2009. 91(5 Suppl): p. 2210-20.
  • 15. Rodriguez, I., et al., An early and massive wave of germinal cell apoptosis is required for the development of functional spermatogenesis. EMBO J, 1997. 16(9): p. 2262-70.
  • 16. de Rooij, D.G. and J.A. Grootegoed, Spermatogonial stem cells. Curr Opin Cell Biol, 1998. 10(6): p. 694-701.
  • 17. Furuchi, T., et al., Inhibition of testicular germ cell apoptosis and differentiation in mice misexpressing Bcl-2 in spermatogonia. Development, 1996. 122(6): p. 1703-9.
  • 18. Knudson, C.M., et al., Bax-deficient mice with lymphoid hyperplasia and male germ cell death. Science, 1995. 270(5233): p. 96-9.
  • 19. Lizama, C., et al., Up-regulation of CD95 (Apo-1/Fas) is associated with spermatocyte apoptosis during the first round of spermatogenesis in the rat. Apoptosis, 2007. 12(3): p. 499-512.
  • 20. Wang, R.A., P.K. Nakane, and T. Koji, Autonomous cell death of mouse male germ cells during fetal and postnatal period. Biol Reprod, 1998. 58(5): p. 1250-6.
  • 21. Goyal, G., et al., Role of mitochondrial remodeling in programmed cell death in Drosophila melanogaster. Dev Cell, 2007. 12(5): p. 807-16.
  • 22. Gassei, K. and S. Schlatt, Testicular morphogenesis: comparison of in vivo and in vitro models to study male gonadal development. Ann N Y Acad Sci, 2007. 1120: p. 152-67.
  • 23. Mego, M., Cancer stem cell in relapsed testicular germ cell cancer: embryonic or somatic? Int J Androl, 2006. 29(6): p. 627.
  • 24. Cande, C., et al., Apoptosis-inducing factor (AIF): a novel kaspaz-independent death effector released from mitochondria. Biochimie, 2002. 84(2-3): p. 215-22.
  • 25. Cande, C., et al., Apoptosis-inducing factor (AIF): kaspaz-independent after all. Cell Death Differ, 2004. 11(6): p. 591-5.
  • 26. Ha, H.C. and S.H. Snyder, Poly(ADP-ribose) polymerase is a mediator of necrotic cell death by ATP depletion. Proc Natl Acad Sci U S A, 1999. 96(24): p. 13978-82.
  • 27. de Murcia, G. and J. Menissier de Murcia, Poly(ADP-ribose) polymerase: a molecular nick-sensor. Trends Biochem Sci, 1994. 19(4): p. 172-6.
  • 28. Berger, N.A., Poly(ADP-ribose) in the cellular response to DNA damage. Radiat Res, 1985. 101(1): p. 4-15.
  • 29. Burkle, A., Poly (ADP-Ribosyl)ation. 2006, Konstanz, Germany: Landes Bioscience.
  • 30. Kim, M.Y., T. Zhang, and W.L. Kraus, Poly(ADP-ribosyl)ation by PARP-1: 'PAR-laying' NAD+ into a nuclear signal. Genes Dev, 2005. 19(17): p. 1951-67.
  • 31. Burkle, A., Poly(ADP-ribose). The most elaborate metabolite of NAD+. Febs J, 2005. 272(18): p. 4576-89.
  • 32. Hangen, E., et al., Life with or without AIF. Trends Biochem Sci, 2010. 35(5): p. 278-87.
Uludağ Üniversitesi Tıp Fakültesi Dergisi-Cover
  • ISSN: 1300-414X
  • Başlangıç: 1975
  • Yayıncı: Seyhan Miğal
Sayıdaki Diğer Makaleler

Baş Boyun Kanseri (H&N) Radyoterapisinde Üç Farklı Hacimsel Ayarlı Ark Terapi (VMAT) Tekniği İle Hedef Hacim ve Kritik Organ Dozlarının Retrospektif İncelenmesi

Oğuz AYDIN, Candan DEMİRÖZ ABAKAY, Sema GÖZCÜ TUNÇ, Sibel KAHRAMAN ÇETİNTAŞ, Meral KURT, Duygu BOLAT, Habibe ALTAŞ

Intrasitoplazmik Sperm Enjeksiyonu Sikluslarında Embriyo Transferinin Abdominal Ultrasonografi Kılavuzluğunda veya Ultrasonografi Kullanılmadan Yapılmasının Klinik Sonuçlarının Değerlendirilmesi

İşıl KASAPOĞLU, Furkan ŞEN, Esra ŞEN, Berrin AVCI, Gürkan UNCU

Postnatal Fare Testis Gelişiminde Caspase-Bağımlı ve Caspase-Bağımsız Apoptozun Değerlendirilmesi

Nazlı Ece GÜNGÖR-ORDUERİ, Tuğba ELGÜN, Pınar ŞAHİN, Nilay KUŞCU, Çiler ÇELİK_ÖZENCİ

Baş Boyun Kanseri (H&N) Radyoterapisinde Üç Farklı Hacimsel Ayarlı Ark Terapi (VMAT) Tekniği İle Hedef Hacim ve Kritik Organ Dozlarının Retrospektif İncelenmesi

Oğuz AYDIN, Candan DEMİRÖZ ABAKAY, Sema GÖZCÜ TUNÇ, Sibel KAHRAMAN ÇETİNTAŞ, Meral KURT, Duygu BOLAT, Habibe ALTAŞ

Üç Farklı Radyoterapi Tekniği Kullanılarak Elde Edilmiş Akciğer Kanseri Tedavi Planlarının Retrospektif Olarak İncelenmesi

Duygu BOLAT, Oğuz AYDIN, Sema GÖZCÜ TUNÇ, Zenciye KIRAY, Süreyya SARIHAN

Püstüler Psoriasis Tanılı 152 Olgunun Retrospektif Analizi: Klinik, Demografik Özellikler ve Tedavi Yanıtı ile Sigara İlişkisi

Serkan YAZİCİ, Gülistan MAÇİN, Eda HAŞAL, Emel BÜLBÜL BAŞKAN, Kenan AYDOĞAN, Hayriye SARICAOĞLU, Şaduman BALABAN ADIM

Besin Alımının Kontrolündeki Anoreksijenik Peptit: Nesfatin-1

Duygu GÖK YURTSEVEN, Zehra MİNBAY, Özhan EYİGÖR

Pankreas Kanseri Radyoterapisinde 3 Farklı Tedavi Tekniğinin Dozimetrik Karşılaştırılması: Retrospektif Çalışma

Burcu İBİCİOĞLU, Meral KURT, Sema GÖZCÜ TUNÇ, Candan DEMİRÖZ ABAKAY, Sibel KAHRAMAN ÇETİNTAŞ, Abdulhamit TURAN, Ece Ayfer CURA, Habibe ALTAŞ

Subklinik Hipotiroidi Nedir? Tedavi Edilmeli midir?

Özen ÖZ GÜL, Soner CANDER, Canan ERSOY

Malign Glial Tümörlerde Farklı Radyoterapi Teknikleri ile Saçlı Deri ve Riskli Organların Dozimetrik Karşılaştırılması

Oğuz AYDIN, Süreyya SARIHAN, Duygu BOLAT, Habibe ALTAŞ, Sema GÖZCÜ TUNÇ, Zenciye KIRAY