Deneysel kardiyovasküler çalışmalarda insan umblikal ven endotel hücrelerinin önemi

Günümüzde damarlarda daralma veya tıkanma sonucunda ortaya çıkan kardiyovasküler system bozuklukları, insanların yaşam kalitesini olumsuz yönde etkileyen ve ölüm ile sonuçlanabilen önemli hastalıkların başında gelmektedir. Bilinen birçok hastalığa kardiyovasküler system bozuklukları eşlik etmektedir. Bu nedenlerle kardiyovasküler patolojide active olan farklı yolakların varlığı ve bu yolakların incelenmesine yönelik çalışmalar gündeme gelmiş, in vitro metodların geliştirilmesine ihtiyaç duyulmuştur. In vitro hücre kültürü modelleri, anjiyogenez sürecini düzenleyen mekanizmaları anlamamızı sağlamak için tercih edilen önemli modellerdir. İnsan göbek ven endotel hücreleri (HUVEC), kardiyovasküler system patolojileri ile ilgili çalışmalarda kullanılan en yaygın in vitro hücre modellerinden biridir. Bu derlemede, farklı terapi yaklaşımlarının değerlendirilmesi için HUVEC'lerin in vitro bir model olarak kullanım alanları üzerinde durulmuştur.

Importance of human umbilical vein endothelial cells in experimental cardiovascular studies

Nowadays, cardiovascular system disorders caused by narrowing or obstruction of the vascular system lead to the most important diseases that have a negative effect on the quality of life and have fatal consequences. It is known that many diseases are accompanied by cardiovascular system disorders. For these reasons, studies on the existence of different pathways activated in cardiovascular pathology and the investigation of these pathways have come intoquestion, and in vitro methods have been needed to be developed. in vitro cell culture models are the preferred models to enable understanding the mechanisms that regulate the process of angiogenesis. Human umbilical vein endothelial cells (HUVEC) are one of the most common in vitrocell models used in vascular studies within the scope of cardiovascular pathology. This review focuses on the use of HUVECs as an in vitro model to evaluate different therapeutic approaches.

___

  • 1.Park H, Zhang Y, Georgescu SP, Johnson KL,Kong D, Galper JB. Human umbilical vein endothelial cells and human dermal microvascular endothelial cells offer new insights into the relationship between lipid metabolism and angiogenesis. Stem Cell Reviews 2006; 2: 93-101.
  • 2. Marin V, Kaplanski G, Gres S, Farnarier C, Bongrand P. Endothelial cell culture: protocol to obtain and cultivate human umbilical endothelial cells. Journal of Immunological Methods 2001; 254: 183–90.
  • 3. Cai W, Liang L, Ji P et al. Experimental study on culture method of human umbilical vein endothelial cells. Chinese Journal of Reparative and Reconstructive Surgery 2011; 25: 139-43.
  • 4.Nozawa F, Hirota M, Okabe A, Shibata M, Iwamura T. Tumor necrosis factor α acts on cultured human vascular endothelial cells to increase the adhesion of pancreatic cancer cells. Pancreas 2000; 4: 392-98.
  • 5. Baudin B, Bruneel A, Bosselut N, Vaubourdolle M. A protocol for isolation and culture of human umbilical vein endothelial cells. Nature Protocols 2007; 2: 481–85.
  • 6. Caniuguir A, Krause BJ, Hernandez C, Uauy R, Casanello P. Markers of early endothelial dysfunction in intrauterine growth restriction-derived human umbilical vein endothelial cells revealed by 2D-DIGE and mass spectrometry analyses. Placenta 2016; 41: 14–26.
  • 7. Heiss M, Hellstrom M, Kalen M, May T, Weber H, Hecker M, Augustin HG, Korff T. Endothelial cell spheroids as a versatile tool to study angiogenesis in vitro. Federation of American Societies for Experimental Biology 2015; 29: 3076–84.
  • 8. Andrejecsk JW, Cui J, Chang WG, Devalliere J, Pober JS, Saltzman WM.Paracrine exchanges of molecular signals between alginateen capsulated pericytes and freely suspended endothelial cells withina 3D protein gel. Biomaterials 2013; 34: 8899–908.
  • 9. Walshe TE, dela Paz NG, D’Amore PA. The role of shear-induced transforming growth factor-beta signaling in the endothelium. Arteriosclerosis, Thrombosis, and Vascular Biology 2013; 33: 2608–17.
  • 10. Patel H, Chen J, Das KC, Kavdia M. Hyperglycemia induces differential change in oxidative stress at gene expression and functional levels in HUVEC and HMVEC. Cardiovascular Diabetology 2013; 12: 142.
  • 11. Jang J, Jung Y, Kim Y, Jho EH, Yoon Y. LPS-induced inflammatory response is suppressed by Wnt inhibitors, Dickkopf-1 and LGK974. Scientific Reports 2017; 7: 41612.
  • 12. Cao Y, Gong Y, Liu L, Zhou Y, Fang X, Zhang C, Li Y, Li J. The use of human umbilical vein endothelial cells (HUVECs) as an in vitro model to assess the toxicity of nanoparticles to endothelium: a review. Journal of Applied Toxicology 2017; 12: 1359-69.
  • 13. Breymann C, Schmidt D, Hoerstrup SP. Umbilical cord cells as a source of cardiovascular tissue engineering. Stem Cell Reviews 2006; 2: 87-92.
  • 14. Sakamoto N, Ueki Y, Oi M, Kiuchi T, Sato M. Fluid shear stress suppresses ICAM-1-mediated transendothelial migration of leukocytes in coculture model. Biochemical and Biophysical Research Communications 2018; 3: 403-408.
  • 15. Bevilacqua MP, Stengelin S, Gimbrone MA, Seed B. Endothelial leukocyte adhesion molecule 1: an inducible receptor for neutrophils related to complement regulatory proteins and lectins. Science 1989; 243: 1160–65.
  • 16. Nagata D, Mogi M, Walsh K. AMP-activated protein kinase (AMPK) signaling in endothelial cells is essential for angiogenesis in response to hypoxic stress. Journal of Biological Chemistry 2003; 33: 31000-6.
  • 17.Yang BR, Hong SJ, Lee SM et al. Pro-angiogenic activity of notoginsenoside R1 inhuman umbilical vein endothelialcells in vitro and in a chemical-induced blood vessel loss model of zebrafish in vivo. Chinese Journal of Integrative Medicine 2016; 22: 420-29.
  • 18. Asakawa N, Shimizu T, Tsuda Y, Sekiya S, Sasagawa T, Yamato M, Fukai F, Okano T. Pre-vascularization of in vitro three-dimensional tissues created by cell sheet engineering. Biomaterials 2010; 14: 3903-9.
  • 19. Gasowska K, Naumnik B, Klejna K, Myoeliwiec M. The influence of unfractionated and low-molecular weight heparins on the properties of human umbilical vein endothelial cells (HUVEC). Folia Histochemicaet Cytobiologica 2009; 1: 17-23.
Turkish Journal of Clinics and Laboratory-Cover
  • ISSN: 2149-8296
  • Yayın Aralığı: Yılda 4 Sayı
  • Başlangıç: 2010
  • Yayıncı: DNT Ortadoğu Yayıncılık AŞ
Sayıdaki Diğer Makaleler

Farklı desensitizerlerin dentin tübüllerine etkisinin incelenmesi: in vitro taramalı elektron mikroskop analizi

Çise NAZIM, İbrahim Levent TANER

Radyolojik görüntülerle klinik semptomları uyumlu olmayan lomber disk hernisi hastalarında diskografi uygulaması

Mustafa ÖĞDEN, Ulaş YÜKSEL, Süleyman AKKAYA, İbrahim Umut BULUT, Bülent BAKAR, Mehmet Faik ÖZVEREN

Fournier gangreninde mortaliteyi öngörmede skorlama sistemlerinin değerlendirilmesi

Sadettin ER, Ramazan TOPÇU, Deniz TİKİCİ, Sabri ÖZDEN, Mesut TEZ

Erişkin hastalarda kardiyopulmoner bypass sonrası gelişen akut böbrek hasarının erken tanısında neutrophil gelatinase-associated lipocalin ve sistatin C’nin önemi

Okan YILDIZ, Selim ÇAPÇI, Ahmet ÜNLÜ, Baran ŞİMŞEK, İlhan PAŞAOĞLU

Bir devlet hastanesi acil servisinde kırık tanısı alan hastaların değerlendirilmesi

Çağdaş PAMUK

İnsulin ve glukozun E. coli’de üreme ve mar regulonunun ekspresyonu üzerine etkisi

Defne GÜMÜŞ, Fatma KALAYCI YÜKSEK, Mine KÜÇÜKER, Gülsen UZ, Aslı BAYRAKTAR, Pınar KÖSEOĞLU, Yağmur OFLUOĞLU, Benay DAYLAN

Oküler yüzey hastalıklarında amniyon membran transplantasyonu endikasyonları ve sonuçları

Nesrin GÖKÇINAR, Tevfik OĞUREL, Erhan YUMUSAK, Zafer ONARAN

Biplanar ultrasonografik incelemenin femoral artiküler kıkırdaktaki dejeneratif değişiklikleri saptamadaki tanı değeri

Meltem ÖZDEMİR, Rasime Pelin KAVAK

İki Olguda Metal Baş Yorgunluk Kırığı ve para benzeri metal serbest cisim: neden -3 Baş Kullanımı mı?

Ali UTKAN, Hüsamettin ÇAKICI, Abdulrahim DÜNDAR, Bülent ÖZKURT

Nonalkolik yağlı karaciğer hastalığı olan bireylerde fruktoz tüketiminin değerlendirilmesi

Aliye KUYUMCU, Tuğrul PÜRNAK, Emine Akal YILDIZ