Amaç: Bu çalışmada, koryoallantoik membran modelindesilostazolün anjiyogenez ve oksidatif stres üzerine etkileriaraştırıldı. Ça­lış­ma pla­nı: Bu deneysel çalışmada, Ross 308 tavuk embriyolarıkullanıldı. Negatif kontrol grubuna (n=10) müdahale edilmedi. Pozitifkontrol grubu (n=10), anjiyogenezi indüklemek için epidermal büyümefaktörü ile muamele edilmiş yumurtalardan oluşuyordu. Üç adetsilostazol grubu 10-7 (n=10), 10-6 (n=10) ve 10-5 (n=10) M konsantrasyonolacak şekilde tasarlandı. Her bir yumurta inkübasyonun altıncıgününde delinerek, ilaç pelletleri, belirtilen dozlarda pozitif kontrol veilaç gruplarına verildi. Uygulamanın sekizinci gününde damar gelişimideğerlendirildi. İlaç uygulamasından önce ve sonra şırınga ile eldeedilen albümin sıvılarından total oksidatif durum, total antioksidankapasite ve oksidatif stres indeksi düzeyleri belirlendi. Bulgular: Negatif kontrol albüminlerine kıyasla, pozitif kontrol vesilostazol gruplarında daha düşük oksidatif stres indeksi düzeyleri eldeedildi (p=0.001). İlaçsız ve ilaçlı koryoallantoik membranlarda vaskülerbağlantılardaki artış ve yeni gelişen vasküler nodüller değerlendirildi. Enyüksek aktivite 10-7 M konsantrasyonlu silostazol grubunda elde edildi.Negatif kontrol grubu ile karşılaştırıldığında, her konsantrasyonda tümilaç gruplarında artmış anjiyojenik aktivite tespit edildi (p=0.001).Anjiyojenik aktivite silostazol ile tedavi edilen tüm gruplarda benzerdi(p=0.43). So­nuç: Silostazol anjiyogenez üzerinde olumlu bir uyarıcı etkiyesahip olup, embriyonik büyüme sırasında oksidatif stresi baskıladığıgörülmektedir. Silostazol, bu etkileri farklı dozlarda anlamlı düzeyde vebenzer şekilde göstermektedir.
Background: In this study, we aimed to investigate the effects ofcilostazol on angiogenesis and oxidative stress using the chorioallantoicmembrane model. Methods: In this experimental study, the Ross 308 chick embryos wereused. The negative control group (n=10) received no intervention. Thepositive control group (n=10) consisted of eggs treated with epidermalgrowth factor for inducing angiogenesis. Three cilostazol groups weredesigned with 10-7 (n=10), 10-6 (n=10), and 10-5 (n=10) M concentrations.Each egg was punctured on the sixth day of incubation, and drugpellets were introduced to the positive control and drug groups at theprespecified doses. Vascular development was evaluated on the eighthday of application. The total oxidant status, total antioxidant capacity,and oxidative stress index levels were determined from albumen liquidsobtained with a syringe before and after drug application. Results: Lower oxidative stress index levels were obtained fromthe positive control and cilostazol groups compared to the negativecontrol albumens (p=0.001). The increments in vascular junctions andnewly developed vascular nodules were evaluated in drug-free anddrug-applied chorioallantoic membranes. The highest activity wasobtained in the 10-7 M concentration cilostazol group. An increasedangiogenic activity was detected in all drug groups in each concentrationcompared to the negative control group (p=0.001). Angiogenic activitywas similar in all the cilostazol-treated groups (p=0.43).Conclusion: Cilostazol has a positive stimulant effect on angiogenesisand it seems to suppress oxidative stress during embryonic growth.Cilostazol exerts these effects significantly and similarly at differentdoses. "> [PDF] Silostazol, doza bağlı bir şekilde anjiyogenezi indükler ve oksidatif stresi düzenler:Bir koryoallantoik membran çalışması | [PDF] Cilostazol induces angiogenesis and regulates oxidative stress in adose-dependent manner: A chorioallantoic membrane study Amaç: Bu çalışmada, koryoallantoik membran modelindesilostazolün anjiyogenez ve oksidatif stres üzerine etkileriaraştırıldı. Ça­lış­ma pla­nı: Bu deneysel çalışmada, Ross 308 tavuk embriyolarıkullanıldı. Negatif kontrol grubuna (n=10) müdahale edilmedi. Pozitifkontrol grubu (n=10), anjiyogenezi indüklemek için epidermal büyümefaktörü ile muamele edilmiş yumurtalardan oluşuyordu. Üç adetsilostazol grubu 10-7 (n=10), 10-6 (n=10) ve 10-5 (n=10) M konsantrasyonolacak şekilde tasarlandı. Her bir yumurta inkübasyonun altıncıgününde delinerek, ilaç pelletleri, belirtilen dozlarda pozitif kontrol veilaç gruplarına verildi. Uygulamanın sekizinci gününde damar gelişimideğerlendirildi. İlaç uygulamasından önce ve sonra şırınga ile eldeedilen albümin sıvılarından total oksidatif durum, total antioksidankapasite ve oksidatif stres indeksi düzeyleri belirlendi. Bulgular: Negatif kontrol albüminlerine kıyasla, pozitif kontrol vesilostazol gruplarında daha düşük oksidatif stres indeksi düzeyleri eldeedildi (p=0.001). İlaçsız ve ilaçlı koryoallantoik membranlarda vaskülerbağlantılardaki artış ve yeni gelişen vasküler nodüller değerlendirildi. Enyüksek aktivite 10-7 M konsantrasyonlu silostazol grubunda elde edildi.Negatif kontrol grubu ile karşılaştırıldığında, her konsantrasyonda tümilaç gruplarında artmış anjiyojenik aktivite tespit edildi (p=0.001).Anjiyojenik aktivite silostazol ile tedavi edilen tüm gruplarda benzerdi(p=0.43). So­nuç: Silostazol anjiyogenez üzerinde olumlu bir uyarıcı etkiyesahip olup, embriyonik büyüme sırasında oksidatif stresi baskıladığıgörülmektedir. Silostazol, bu etkileri farklı dozlarda anlamlı düzeyde vebenzer şekilde göstermektedir. "> Amaç: Bu çalışmada, koryoallantoik membran modelindesilostazolün anjiyogenez ve oksidatif stres üzerine etkileriaraştırıldı. Ça­lış­ma pla­nı: Bu deneysel çalışmada, Ross 308 tavuk embriyolarıkullanıldı. Negatif kontrol grubuna (n=10) müdahale edilmedi. Pozitifkontrol grubu (n=10), anjiyogenezi indüklemek için epidermal büyümefaktörü ile muamele edilmiş yumurtalardan oluşuyordu. Üç adetsilostazol grubu 10-7 (n=10), 10-6 (n=10) ve 10-5 (n=10) M konsantrasyonolacak şekilde tasarlandı. Her bir yumurta inkübasyonun altıncıgününde delinerek, ilaç pelletleri, belirtilen dozlarda pozitif kontrol veilaç gruplarına verildi. Uygulamanın sekizinci gününde damar gelişimideğerlendirildi. İlaç uygulamasından önce ve sonra şırınga ile eldeedilen albümin sıvılarından total oksidatif durum, total antioksidankapasite ve oksidatif stres indeksi düzeyleri belirlendi. Bulgular: Negatif kontrol albüminlerine kıyasla, pozitif kontrol vesilostazol gruplarında daha düşük oksidatif stres indeksi düzeyleri eldeedildi (p=0.001). İlaçsız ve ilaçlı koryoallantoik membranlarda vaskülerbağlantılardaki artış ve yeni gelişen vasküler nodüller değerlendirildi. Enyüksek aktivite 10-7 M konsantrasyonlu silostazol grubunda elde edildi.Negatif kontrol grubu ile karşılaştırıldığında, her konsantrasyonda tümilaç gruplarında artmış anjiyojenik aktivite tespit edildi (p=0.001).Anjiyojenik aktivite silostazol ile tedavi edilen tüm gruplarda benzerdi(p=0.43). So­nuç: Silostazol anjiyogenez üzerinde olumlu bir uyarıcı etkiyesahip olup, embriyonik büyüme sırasında oksidatif stresi baskıladığıgörülmektedir. Silostazol, bu etkileri farklı dozlarda anlamlı düzeyde vebenzer şekilde göstermektedir.
Background: In this study, we aimed to investigate the effects ofcilostazol on angiogenesis and oxidative stress using the chorioallantoicmembrane model. Methods: In this experimental study, the Ross 308 chick embryos wereused. The negative control group (n=10) received no intervention. Thepositive control group (n=10) consisted of eggs treated with epidermalgrowth factor for inducing angiogenesis. Three cilostazol groups weredesigned with 10-7 (n=10), 10-6 (n=10), and 10-5 (n=10) M concentrations.Each egg was punctured on the sixth day of incubation, and drugpellets were introduced to the positive control and drug groups at theprespecified doses. Vascular development was evaluated on the eighthday of application. The total oxidant status, total antioxidant capacity,and oxidative stress index levels were determined from albumen liquidsobtained with a syringe before and after drug application. Results: Lower oxidative stress index levels were obtained fromthe positive control and cilostazol groups compared to the negativecontrol albumens (p=0.001). The increments in vascular junctions andnewly developed vascular nodules were evaluated in drug-free anddrug-applied chorioallantoic membranes. The highest activity wasobtained in the 10-7 M concentration cilostazol group. An increasedangiogenic activity was detected in all drug groups in each concentrationcompared to the negative control group (p=0.001). Angiogenic activitywas similar in all the cilostazol-treated groups (p=0.43).Conclusion: Cilostazol has a positive stimulant effect on angiogenesisand it seems to suppress oxidative stress during embryonic growth.Cilostazol exerts these effects significantly and similarly at differentdoses. ">

Silostazol, doza bağlı bir şekilde anjiyogenezi indükler ve oksidatif stresi düzenler:Bir koryoallantoik membran çalışması

Amaç: Bu çalışmada, koryoallantoik membran modelindesilostazolün anjiyogenez ve oksidatif stres üzerine etkileriaraştırıldı. Ça­lış­ma pla­nı: Bu deneysel çalışmada, Ross 308 tavuk embriyolarıkullanıldı. Negatif kontrol grubuna (n=10) müdahale edilmedi. Pozitifkontrol grubu (n=10), anjiyogenezi indüklemek için epidermal büyümefaktörü ile muamele edilmiş yumurtalardan oluşuyordu. Üç adetsilostazol grubu 10-7 (n=10), 10-6 (n=10) ve 10-5 (n=10) M konsantrasyonolacak şekilde tasarlandı. Her bir yumurta inkübasyonun altıncıgününde delinerek, ilaç pelletleri, belirtilen dozlarda pozitif kontrol veilaç gruplarına verildi. Uygulamanın sekizinci gününde damar gelişimideğerlendirildi. İlaç uygulamasından önce ve sonra şırınga ile eldeedilen albümin sıvılarından total oksidatif durum, total antioksidankapasite ve oksidatif stres indeksi düzeyleri belirlendi. Bulgular: Negatif kontrol albüminlerine kıyasla, pozitif kontrol vesilostazol gruplarında daha düşük oksidatif stres indeksi düzeyleri eldeedildi (p=0.001). İlaçsız ve ilaçlı koryoallantoik membranlarda vaskülerbağlantılardaki artış ve yeni gelişen vasküler nodüller değerlendirildi. Enyüksek aktivite 10-7 M konsantrasyonlu silostazol grubunda elde edildi.Negatif kontrol grubu ile karşılaştırıldığında, her konsantrasyonda tümilaç gruplarında artmış anjiyojenik aktivite tespit edildi (p=0.001).Anjiyojenik aktivite silostazol ile tedavi edilen tüm gruplarda benzerdi(p=0.43). So­nuç: Silostazol anjiyogenez üzerinde olumlu bir uyarıcı etkiyesahip olup, embriyonik büyüme sırasında oksidatif stresi baskıladığıgörülmektedir. Silostazol, bu etkileri farklı dozlarda anlamlı düzeyde vebenzer şekilde göstermektedir.

Cilostazol induces angiogenesis and regulates oxidative stress in adose-dependent manner: A chorioallantoic membrane study

Background: In this study, we aimed to investigate the effects ofcilostazol on angiogenesis and oxidative stress using the chorioallantoicmembrane model. Methods: In this experimental study, the Ross 308 chick embryos wereused. The negative control group (n=10) received no intervention. Thepositive control group (n=10) consisted of eggs treated with epidermalgrowth factor for inducing angiogenesis. Three cilostazol groups weredesigned with 10-7 (n=10), 10-6 (n=10), and 10-5 (n=10) M concentrations.Each egg was punctured on the sixth day of incubation, and drugpellets were introduced to the positive control and drug groups at theprespecified doses. Vascular development was evaluated on the eighthday of application. The total oxidant status, total antioxidant capacity,and oxidative stress index levels were determined from albumen liquidsobtained with a syringe before and after drug application. Results: Lower oxidative stress index levels were obtained fromthe positive control and cilostazol groups compared to the negativecontrol albumens (p=0.001). The increments in vascular junctions andnewly developed vascular nodules were evaluated in drug-free anddrug-applied chorioallantoic membranes. The highest activity wasobtained in the 10-7 M concentration cilostazol group. An increasedangiogenic activity was detected in all drug groups in each concentrationcompared to the negative control group (p=0.001). Angiogenic activitywas similar in all the cilostazol-treated groups (p=0.43).Conclusion: Cilostazol has a positive stimulant effect on angiogenesisand it seems to suppress oxidative stress during embryonic growth.Cilostazol exerts these effects significantly and similarly at differentdoses.

___

  • 1. Schrör K. The pharmacology of cilostazol. Diabetes Obes Metab 2002;4 Suppl 2:S14-9.
  • 2. Robless P, Mikhailidis DP, Stansby GP. Cilostazol for peripheral arterial disease. Cochrane Database Syst Rev 2008;(1):CD003748.
  • 3. Huang Y, Cheng Y, Wu J, Li Y, Xu E, Hong Z, et al. Cilostazol as an alternative to aspirin after ischaemic stroke: A randomised, double-blind, pilot study. Lancet Neurol 2008;7:494-9.
  • 4. Rybalkin SD, Rybalkina I, Beavo JA, Bornfeldt KE. Cyclic nucleotide phosphodiesterase 1C promotes human arterial smooth muscle cell proliferation. Circ Res 2002;90:151-7.
  • 5. Balinski AM, Preuss CV. Cilostazol. [Updated 2020 Sep 28]. In: StatPearls [Internet]. Treasure Island (FL): StatPearls Publishing; 2020 Jan-. Available at: https://www.ncbi.nlm. nih.gov/books/NBK544363/
  • 6. Ding H, Wang H, Zhao Y, Sun D, Zhai X. Protective effects of Baicalin on Aβ1-42-induced learning and memory deficit, oxidative stress, and apoptosis in rat. Cell Mol Neurobiol 2015;35:623-32.
  • 7. Kim EK, Choi EJ. Compromised MAPK signaling in human diseases: An update. Arch Toxicol 2015;89:867-82.
  • 8. Nowak-Sliwinska P, Segura T, Iruela-Arispe ML. The chicken chorioallantoic membrane model in biology, medicine and bioengineering. Angiogenesis 2014;17:779-804.
  • 9. Kunz P, Schenker A, Sähr H, Lehner B, Fellenberg J. Optimization of the chicken chorioallantoic membrane assay as reliable in vivo model for the analysis of osteosarcoma. PLoS One 2019;14:e0215312.
  • 10. Karahan O, Yavuz C, Demirtas S, Caliskan A, Atahan E. The investigation of the antiangiogenic potential of amiodarone HCl in the chick embryo chorioallantoic membrane model. Biomedical Research 2013;24:131-4.
  • 11. Ribatti D. Chick embryo chorioallantoic membrane as a useful tool to study angiogenesis. Int Rev Cell Mol Biol 2008;270:181-224.
  • 12. Joimel U, Gest C, Soria J, Pritchard LL, Alexandre J, Laurent M, et al. Stimulation of angiogenesis resulting from cooperation between macrophages and MDA-MB-231 breast cancer cells: Proposed molecular mechanism and effect of tetrathiomolybdate. BMC Cancer 2010;10:375.
  • 13. Baharara J, Amini E, Mousavi M. The anti-proliferative and anti-angiogenic effect of the methanol extract from brittle star. Rep Biochem Mol Biol 2015;3:68-75.
  • 14. Winter R, Dungel P, Reischies FMJ, Rohringer S, Slezak P, Smolle C, et al. Photobiomodulation (PBM) promotes angiogenesis in-vitro and in chick embryo chorioallantoic membrane model. Sci Rep 2018;8:17080.
  • 15. Savran M, Ozmen O, Erzurumlu Y, Savas HB, Asci S, Kaynak M. The impact of prophylactic lacosamide on LPSinduced neuroinflammation in aged rats. Inflammation 2019;42:1913-24.
  • 16. Savran M, Asci H, Ozmen O, Erzurumlu Y, Savas HB, Sonmez Y, et al. Melatonin protects the heart and endothelium against high fructose corn syrup consumptioninduced cardiovascular toxicity via SIRT-1 signaling. Hum Exp Toxicol 2019;38:1212-23.
  • 17. Savran M, Aslankoc R, Ozmen O, Erzurumlu Y, Savas HB, Temel EN, et al. Agomelatine could prevent brain and cerebellum injury against LPS-induced neuroinflammation in rats. Cytokine 2020;127:154957.
  • 18. Ribatti D, Vacca A, Ranieri G, Sorino S, Roncali L. The chick embryo chorioallantoic membrane as an in vivo wound healing model. Pathol Res Pract 1996;192:1068-76.
  • 19. Merckx G, Tay H, Lo Monaco M, van Zandvoort M, De Spiegelaere W, Lambrichts I, et al. Chorioallantoic membrane assay as model for angiogenesis in tissue engineering: Focus on stem cells. Tissue Eng Part B Rev 2020;26:519-39.
  • 20. Yu J, Dardik A. A murine model of hind limb ischemia to study angiogenesis and arteriogenesis. Methods Mol Biol 2018;1717:135-43.
  • 21. Limbourg A, Korff T, Napp LC, Schaper W, Drexler H, Limbourg FP. Evaluation of postnatal arteriogenesis and angiogenesis in a mouse model of hind-limb ischemia. Nat Protoc 2009;4:1737-46.
  • 22. Maksimov VF, Korostyshevskaya IM, Kurganov SA. Functional morphology of chorioallantoic vascular network in chicken. Bull Exp Biol Med 2006;142:367-71.
  • 23. Kurz H, Ambrosy S, Wilting J, Marmé D, Christ B. Proliferation pattern of capillary endothelial cells in chorioallantoic membrane development indicates local growth control, which is counteracted by vascular endothelial growth factor application. Dev Dyn 1995;203:174-86.
  • 24. Patan S, Haenni B, Burri PH. Implementation of intussusceptive microvascular growth in the chicken chorioallantoic membrane (CAM): 1. pillar formation by folding of the capillary wall. Microvasc Res 1996;51:80-98.
  • 25. Kemp SS, Aguera KN, Cha B, Davis GE. Defining endothelial cell-derived factors that promote pericyte recruitment and capillary network assembly. Arterioscler Thromb Vasc Biol 2020;40:2632-48.
  • 26. Biscetti F, Pecorini G, Straface G, Arena V, Stigliano E, Rutella S, et al. Cilostazol promotes angiogenesis after peripheral ischemia through a VEGF-dependent mechanism. Int J Cardiol 2013;167:910-6.
  • 27. Sanada F, Kanbara Y, Taniyama Y, Otsu R, Carracedo M, Ikeda-Iwabu Y, et al. Induction of angiogenesis by a type III phosphodiesterase inhibitor, Cilostazol, through activation of peroxisome proliferator-activated receptor-γ and cAMP pathways in vascular cells. Arterioscler Thromb Vasc Biol 2016;36:545-52.
  • 28. Oguchi T, Ono R, Tsuji M, Shozawa H, Somei M, Inagaki M, et al. Cilostazol suppresses Aβ-induced neurotoxicity in SH-SY5Y cells through inhibition of oxidative stress and MAPK signaling pathway. Front Aging Neurosci 2017;9:337.
  • 29. Mohamed MZ, Hafez HM, Zenhom NM, Mohammed HH. Cilostazol alleviates streptozotocin-induced testicular injury in rats via PI3K/Akt pathway. Life Sci 2018;198:136-42.
  • 30. Kim SM, Jung JM, Kim BJ, Lee JS, Kwon SU. Cilostazol mono and combination treatments in ischemic stroke: An updated systematic review and meta-analysis. Stroke 2019;50:3503-11.
  • 31. Elam MB, Heckman J, Crouse JR, Hunninghake DB, Herd JA, Davidson M, et al. Effect of the novel antiplatelet agent cilostazol on plasma lipoproteins in patients with intermittent claudication. Arterioscler Thromb Vasc Biol 1998;18:1942-7.
  • 32. Tseng SY, Chao TH, Li YH, Liu PY, Lee CH, Cho CL, et al. Cilostazol improves high glucose-induced impaired angiogenesis in human endothelial progenitor cells and vascular endothelial cells as well as enhances vasculoangiogenesis in hyperglycemic mice mediated by the adenosine monophosphate-activated protein kinase pathway. J Vasc Surg 2016;63:1051-62.e3.
  • 33. Li J, Xiang X, Xu H, Shi Y. Cilostazol promotes angiogenesis and increases cell proliferation after myocardial ischemiareperfusion injury through a cAMP-dependent mechanism. Cardiovasc Eng Technol 2019;10:638-47.
  • 34. Paronis E, Katsimpoulas M, Kadoglou NPE, Provost C, Stasinopoulou M, Spyropoulos C, et al. Cilostazol mediates immune responses and affects angiogenesis during the acute phase of hind limb ischemia in a mouse model. J Cardiovasc Pharmacol Ther 2020;25:273-85.
Türk Göğüs Kalp Damar Cerrahisi Dergisi-Cover
  • ISSN: 1301-5680
  • Yayın Aralığı: Yılda 4 Sayı
  • Başlangıç: 1991
  • Yayıncı: Bayçınar Tıbbi Yayıncılık
Sayıdaki Diğer Makaleler

The first long-term survival results of lung transplantation in Turkey

Necati ÇITAK, Özgür İŞGÖRÜCÜ, Barış AÇIKMEŞE, Songül BÜYÜKKALE, Adnan SAYAR

Koroner arter baypas ameliyatı sırasında intravenöz lidokain uygulamasını takiben şiddetli methemoglobinemi: Metilen mavisi ve ekstrakorporeal membran oksijenatör kullanımı

Ufuk MUNGAN, Kaan KAYA

Venöz tromboemboli yönetimine ilişkin ulusal kılavuzlar: Türk Kalp Damar Cerrahisi Derneği, Ulusal Vasküler ve Endovasküler Cerrahi Derneği ve Fleboloji Derneği ortak kılavuzu

Nevzat ERDİL, Serdar BAYRAK, Ertekin Utku ÜNAL, Adil POLAT, Hakkı Tankut AKAY, Ahmet Barış DURUKAN, Soner YAVAŞ, Suat DOĞANCI, Mustafa ŞIRLAK, Dilek ERER, Ozan Onur BALKANAY, Emrah UĞUZ, İsmet Tanzer ÇALKAVUR, Ahmet Kürşat BOZKURT, Şahin ŞENAY, Şahin BOZOK

The effect of transcutaneous electric nerve stimulation on chronic postoperative pain and long-term quality of life

Levent CANSEVER, Celal Buğra SEZEN, Onur Volkan YARAN, Salih DUMAN, Yunus SEYREK, Merve HATİPOĞLU, Kadriye ÖNEŞ, Mehmet Ali BEDİRHAN

Videothoracoscopic lobectomy for bronchiectasis and extrapulmonary sequestration in a case Kartagener syndrome with pectus excavatum

Ümit AYDOĞMUŞ

Göğüs duvarının nadir dev sarkomu: İndiferansiye pleomorfik sarkom

Burak KAYA, Necip Sefa ÖZDEN, Arda ÖZDEMİR, Gökhan KOCAMAN, Mustafa Bülent YENİGÜN, Ayten KAYI CANGIR, Muhammed Emre Koçak, Hale KIVRAK

Endovascular solution in a complex post-dissectional thoracic aortic aneurysm case

İbrahim DUVAN, Süleyman SÜRER, Ayşegül Melike ŞENKAL, İlker İNCE, Uğursay KIZILTEPE

Abdominal aort anevrizması ve aorto-oklüziv hastalık cerrahisi sonrası gelişeninsizyonel herni insidansı ve risk faktörler

Taylan Özgür SEZER, Muhtar Sinan ERSİN, Özgür FIRAT, Volkan SAYUR, Erkan GÜLER, Hakan POSACIOĞLU

Endoskopik ven hazırlama ile koroner cerrahinin uzun dönem sonuçları

Muharrem KOÇYİĞİT, Cem ALHAN, Leyla KILIÇ, Ahmet Ümit GÜLLÜ, Şahin ŞENAY, Egemen ERSİN, Özlem ÇELİK, Emine GÜZEL, Neriman Özge ÇALIŞKAN

Kompleks bir diseksiyon sonrası torasik aort anevrizma olgusunda endovasküler çözüm

İlker İNCE, Uğursay KIZILTEPE, Süleyman SÜRER, İbrahim DUVAN, Ayşegül Melike ŞENKAL

Academic Researches Index - FooterLogo