KULLANILAN FARKLI ÇÖZÜCÜLERİN İPEK FİBROİN-PVA KOMPOZİT SÜNGERLERİN YAPISINA OLAN ETKİSİ

İpek fibroini farklı formlarda elde edebilmek için (film, fiber, sünger vs. ), fibroinin uygun çözücüler içinde çözünmesi gerekmektedir. Bu işlem için farklı çözücüler kullanılmaktadır. Literatürde yer alan çalışmalardan çok azı, kullanılan çözücü sistemin, son ürünün yapısı üzerindeki etkilerini incelemiştir. Yapılan bu çalışma ile bu eksikliğin giderilmesi hedeflenmektedir. Bu nedenle, kullanılan farklı çözücülerin, elde edilen fibroin / Polivinilalkol (PVA) kompozit süngerlerin yapısı üzerine etkisinin araştırılması, bu çalışman ın temelini teşkil etmektedir. Elde edilen kompozit süngerlerin yara örtüsü olarak kullanılması hedeflendiğinden, yapılan bu çalışma, planlanan çalışmanın ilk aşaması olup, daha çok ön hazırlık aşamaların ı kapsamaktad ır. Bu çalışmada, fibroin/PVA kompozit yapılı süngerler, liyofilizasyon (dondurarak kurutma) yöntemi kullanılarak elde edilmiştir. Bu yöntem ile yüksek ve düzgün gözenekli ipek fibroin temelli süngerler üretilmiştir. Yapılan bu ön çalışmada, ilk olarak ipek fibroinin çözünmesinde kullanılan farklı çözücülerin, elde edilen malzemenin genel yapısını ve PVA ile oluşturduğu kompozit yapıya olan etkileri araştırılmıştır. Daha sonra, üretilen kompozit sünger yapılar; Taramalı Elektron Mikroskobu (SEM), Fourier Transform Infrared Spektroskopisi (FTIR), Termogravimetrik Analiz Cihazı (TGA) ve Diferansiyel Taramalı Kalorimetri (DSC) metotları kullanılarak karakterize edilmiştir. Kalsiyum Klorür (CaCl2)-Etanol-H2O den elde edilen kompozit sünger yapılar incelendiğinde ikincil yapın ın β sheet ağ ırlıklı olduğu görülmüştür. FTIR sonuçları, PVA ile karıştırıldıktan sonra Amid I ve Amid II bantlarının yerlerinde ve değerlerinde değişiklikler olduğunu göstermiştir. Bu sonuçlar, fibroin molekülleri ile PVA molekülleri arasındaki etkileşimin oldukça kuvvetli olduğunu göstermiştir. Lityum Bromür (LiBr) içerisinde çözünen ipek fibroin de ise, düzensiz (random coil) yapının ağırlıkta olduğu, kompozit oluşumu sırasında β tabakalarına (sheet) dönüşmediği görülmüştür ve bu da kristal yapının amorf yap ıya oranını ve termal kararlılığ ını etkilemektedir. Malzemelerin ısıl özellikleri TGA ve DSC kullanılarak analiz edilmiştir. Özet olarak, CaCl2-Etanol-H2O’dan oluşan sistem içinde çözülerek elde edilen fibroin çözeltisi, LiBr içinde çözülerek elde edilen fibroin çözeltileri ile karşılaştırıldığında, ikincil yapı konformasyonlarının ve morfolojilerinin farklılık gösterdiği ve ilk çözeltiden (CaCl2-Etanol-H2O) elde edilen fibroin yapıların PVA ile daha sağlam daha kararlı kompleks yapılar oluşturduğu gözlemlenmiştir.

THE EFFECT OF DIFFERENT SOLVENTS ON THE STRUCTURE OF SILK FIBROIN-PVA COMPOSITE FOAMS

To be able to obtain silk fibroin in different forms (film, fiber, sponge etc.), fibroin should be dissolved in suitable solvents. Different solvents are used for this process. Very few of the studies in the literature were investigated on the effects of the solvent system on the structure of the final product. This work aimed to fulfil this deficiency. For this reason, the main purpose of this work is to investigate the effect of different solvents on the obtained structure of fibroin / Polyvinyl Alcohol (PVA) composite sponges. Since this study’s final goal is to use the obtained composite sponges as a wound dressing, this presented work is the first part of the planned study that mainly consists of preliminary preparation steps. Fibroin / PVA composite sponges were obtained by using lyophilisation (freeze drying) method in this work. Silk fibroin based sponges with high porosity were produced by employing this technique. In this preliminary study, first the effects of different solvents that are used in the dissolution of silk fibroin on the general structure of the obtained material and the composite structures that are formed by mixing with PVA were investigated. Then, produced composite sponge structures were characterized by using Scanning Electron Microscopy (SEM), Fourier Transform Infrared Spectroscopy (FTIR), Thermogravimetric Analysis (TGA) and Differential Scanning Calorimetry (DSC) methods. When the composite sponge structures, obtained in Calcium Chloride (CaCl2)-Ethanol-H2O, were examined, it was observed that the secondary structure was dominated mainly by β sheet. The FTIR results showed that the Amide I and Amide II bands had changes in their location and values after mixing with PVA. These results demonstrated that the interaction between fibroin molecules and PVA molecules is quite strong. The silk fibroin, dissolved in Lithium Bromide (LiBr), mainly consisted the random coil structures and the structure had not transformed into a β sheet conformation during the formation of the composites, which affected the ratio of the crystal structure to the amorphous structure and thermal stability of the composite sponges. The thermal properties of the material were analyzed using TGA and DSC. In summary, when the fibroin solution, obtained by dissolving fibroin in the solvent system of CaCl2-Ethanol-H2O, with the fibroin solutions, obtained by dissolving fibroin in the solvent system of LiBr are compared, it is found that their secondary structural conformation and morphologies were different and the fibroin structures that were obtained from CaCl2-Ethanol-H2O solvent system formed more stable and strong complexes with PVA.

___

  • 1. Altman G. H., Diaz F., Jakuba C., Calabro T., Horan R. L., Chen. J., (2003). Silk-based biomaterials. Biomaterials, 24 (16), 401–16.
  • 2. Correlo V. M., Oliveira J. M., Mano J. F., Neves N. M., Reis R. L., (2011), ‘’Natural Origin Materials for Bone Tissue Engineering – Properties, Processing, and Performance’’, 2th Edition, Elsevier Inc.
  • 3. Amini A. R., Laurencin C. T., Nukavarapu S. T., 2013. Bone tissue engineering: recent advances and challenges. Critical Reviews in Biomedical Engineering, 40(5),363–408.
  • 4. Mondal, M., Trivedy, K., Kumar S.N. (2007). The silk proteins, sericin and fibroin in silkworm. Caspian Journal of Environmental Sciences, 5(14) , 63-76.
  • 5. Zhou C. Z., Confalonieri F., Medina N., Zivanovic Y., Esnault C., Yang T., Jacquet M., Janin J., Duguet M., Perasso R., Li Z.G., (2000). Fine organization of bombyx mori fibroin heavy chain gene. Nucleic Acids Res., 28(12) , 2413-2419.
  • 6. Jin H. J., Kaplan D. L., (2003).Mechanism of silk processing in insects and spiders. Nature, 424(1), 1057-1061.
  • 7. Kim U. J., Park J., Li C., Jin H. J., Valluzzi R., Kaplan D. L., (2004). Structure and properties of silk hydrogels. Biomacromolecules, 5(3), 786-792.
  • 8. Winkler S., Kaplan D. L., (2000). Molecular biology of spider silk. Reviews in Moleculer Biotechnology, 74(2), 85-93.
  • 9. Vepari C., Kaplan D. L., (2007). Silk as a biomaterial. Progress in Polymer Science. 32(8-9) , 991-1007.
  • 10. Vollrath F., Porter D., (2009).Silks as ancient models for modern polymers. Polymer,50(24), 5623-5632.
  • 11. Chen, F., Porter, D., Vollrath, F, (2012). Morphology and structure of silkworm cocoons. Mater. Sci. Eng. C 32, 772–778.
  • 12. Omenetto, F.G., Kaplan, D.L, (2010). New Opportunities for an Ancient Material. Science, 329, 528–531.
  • 13. Zhao, Z., Li, Y., Xie, M, (2015). Silk Fibroin-Based Nanoparticles for Drug Delivery. Int. J. Mol. Sci, 16, 4880–4903.
  • 14. Nakazawa, Y., Sato, M., Takahashi, R., Aytemiz, D., Takabayashi, C., Tamura, T., Enomoto, S., Sata, M., Asakura, T, (2011). Development of Small-Diameter Vascular Grafts Based on Silk Fibroin Fibers from Bombyx mori for Vascular Regeneration. J. Biomater. Sci. Polym. E, 22, 195–206.
  • 15. Roh, D., Kang, S., Kim, J., Kwon, Y., Young Kweon, H., Lee, K., Park, Y., Baek, R., Heo, C., Choe, J. et al. (2006). Wound healing effect of silk fibroin/alginate-blended sponge in full thickness skin defect of rat. J. Mater. Sci. Mater. Med., 17, 547–552. 16. Mandal, B.B., Kaplan, D.L., (2012). High-strength silk protein scaffolds for bone repair. Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 109, 7699– 7704.
  • 17. Kundu, B., Kurland, N.E., Bano, S., Patra, C., Engel, F.B., Yadavalli, V.K., (2014). Kundu, S.C. Silk proteins for biomedical applications: Bioengineering perspectives. Prog. Polym. Sci., 39, 251–267.
  • 18. Kolind, K., Leong, K.W., Besenbacher, F., Foss, M, (2012). Guidance of stem cell fate on 2D patterned surfaces. Biomaterials, 33, 6626–6633.
  • 19. Nikkhah, M., Edalat, F., Manoucheri, S., Khademhosseini, A, (2012). Engineering microscale topographies to control the cell– substrate interface. Biomaterials, 33, 5230–5246.
  • 20. Metavarayuth, K., Sitasuwan, P., Zhao, X., Lin, Y., Wang, Q, (2016). Influence of Surface Topographical Cues on the Differentiation of Mesenchymal Stem Cells in Vitro. ACS Biomater. Sci. Eng., 2, 142–151.
  • 21. McMurray, R.J., Wann, A., Thompson, C.L., Connelly, J.T., Knight, M.M., (2013). Surface topography regulates wnt signaling through control of primary cilia structure in mesenchymal stem cells. Sci. Rep., 3, 3545.
  • 22. Melke, J., Midha, S., Ghosh, S., Ito, K., (2016). Hofmann, S. Silk fibroin as biomaterial for bone tissue engineering. Acta Biomater., 31, 1–16.
  • 23. Qi, Y., Wang, H., Wei, K., Yang, Y., Zheng, R-Y., Kim, I. S., Zhang, K.-Q., (2017). A Review of Structure Construction of Silk Fibroin Biomaterials from Single Structures to Multi-Level Structures. Int. J. Molec. Sci., 18, 1-21.
  • 24. Cheng G., Wang X., Tao S., Xia J., Xu S. (2015). Differences in regenerated silk fibroin prepared with different solvent systems: From structures to conformational changes. Journal of Applied Polymer Scıence, 132(22)
  • 25. Iridag Y., Kazanci M. (2006). Preparation and characterization of bombyx mori silk fibroin and wool keratin. Journal of Applied Polymer Science 100 (5), 4260-4264.
  • 26. Alemdar A., Iridag Y., Kazanci M. (2005). Flow behaviour of regenerated wool-keratin proteins in different mediums. Int. J Bio. Macromol., 27, 253-260.
  • 27. Li, M., Minoura, N., Dai, L., Zhang, L. (2001). Preparation of porous poly(vinyl alcohol)-sil fibroin (PVA/SF) blend membranes. Macromol. Mater. Eng., 286, 529-534.
  • 28. Li, G., Zhou, P., Shao, Z., Xie, X., Chen, X., Wang, H., Chunyu, L., Yu, T. (2001). The natural silk spinning process. A nucleation-dependent aggregation mechanism? Eur. J. Biochem., 268, 6600-6606.
  • 29. Li X., Qin J., Ma J. (2015).Silk fibroin/poly (vinyl alcohol) blend scaffolds for controlled delivery of curcumin. Regenerative Biomaterials Advance, 2(2),97-105.
  • 30. Lu Q., Zhang B., Li M., Zuo B., Kaplan D., Huang Y., Zhu H. (2011). Degradation mechanism and control of silk fibroin. Regenerative Biomaterials Advance, 12(4), 1080-1086.
  • 31. Miyazawa T., Blout E. R (1961). The Infrared Spectra of Polypeptides in Various Conformations: Amide I and II Bands. J. Am. Chem. Soc., 83(3), 712-719.
  • 32. Guziewicz N.,Best A.,Perez Ramirez B., L.Kaplan B. (2011). Lyophilized silk fibroin hydrogels for the sustained local delivery of therapeutic monoclonal antibodies.Biomaterials.32(10),2642-2650. 33. Li G., Kong Y., Zhao Y., Zhang L., Yang Y. (2015). Fabrication and characterization of polyacrylamide/silk fibroin hydrogels for peripheral nerve regeneration. Journal of Biomaterials Science.26(14),899-916.
  • 34. Tsukada I., Freddı G., Crıchton J. (1994).Structure and compatibility of poly (vinyl alcohol) silk fibroin (PVA/SF) blend films. Journal Of Polymer Science, 32(2),243-248.
  • 35. Dong A., Huang P., Caughey WS. (1990).Protein secondary structures in water from second-derivative amide I Infrared spectra. Biochemistry, 29(13),3303-3308.
  • 36. Lu Q., Hu X., Wang X., Kluge JA., Lu S., Cebe P. (2010). Water-insoluble silk films with silk I structure. Acta Biomaterialia, 6(4),1380-1387.
  • 37. Bhattacharjee P., Kundu B., Naskar D., Maiti TK., Bhattacharya D., Kundu SC. (2015). Nanofibrous nonmulberry silk/PVA scaffold for osteoinduction and osseointegration. Biopolymers, 103(5),271-284.
Tekstil ve Mühendis-Cover
  • ISSN: 1300-7599
  • Yayın Aralığı: Yılda 4 Sayı
  • Başlangıç: 1987
  • Yayıncı: TMMOB Tekstil Mühendisleri Odası