CİVAN PERÇEMİ (Achillea millefolium)’nin DİYABETİK SIÇANLARIN KARACİĞER DOKUSUNDAKİ ANTİOKSİDAN ENZİMLER ÜZERİNE KORUYUCU ETKİSİNİN ARAŞTIRILMASI

Amaç: Civan perçemi (CP) antioksidan, antibakteriyel,diüretik ve anti-inflamatuar etkilere sahiptir. Çalışmamızda, streptozotosinle diyabet oluşturulan sıçan karaciğer dokularında MDA seviyesi ve antioksidan enzimaktivitesi üzerine CP’nin koruyucu etkisi araştırıldı.Gereç ve Yöntem: Çalışmada 250-300 gr 40 adet erkekWistar albino sıçanlar kullanıldı. Kontrol grubu, Diyabetgrubu ve CP ile tedavi edilen diyabet grubu olmak üzere3 gruba ayrıldı. Sıçanlarda diyabet oluşturmak için tekdoz 60 mg/kg streptozotosin (STZ) intraperitonealolarak enjeksiyon yapıldı. Tedavi grubuna ise 6 haftasüre ile 250 mg/kg/gün CP verildi. Deneyin sonundabütün hayvanlar sakrifiye edildi.Bulgular: Çalışma sonucunda streptozotosinle diyabetoluşturulmuş sıçanlarda kontrol grubu ile karşılaştırıldıklarında diyabet oluşturulan sıçanların karaciğerdokusundaki lipit peroksidasyon ürününde (MDA) veSOD enzim aktivitesinde, CAT ve GSH düzeylerindeistatistiksel olarak anlamlı derecede fark olduğu gözlendi (p

INVESTIGATION OF THE PROTECTIVE EFFECT OF CIVAN PERCEMI (Achillea millefolium) ON ANTIOXIDANT ENZYMES IN LIVER TISSUE OF DIABETIC RATS

Objective: Archilia millefolium (CP) has antioxidant, antibacterial, diuretic and anti-inflammatory effects. In this study, the protective effect of CP on MDA level and antioxidant enzyme activity in rat liver tissues induced by streptozotocin was investigated. Materials and Methods: Forty male Wistar albino rats were used in the study. The control group was divided into three groups: Diabetes group and CP treated diabetes group. A single dose of 60 mg/kg streptozotocin (STZ) was injected intraperitoneally to induce diabetes in rats. The treatment group received 250 mg/kg / day CP for 6 weeks. At the end of the experiment, all animals were sacrificed. Results: As a result of the study, it was observed that there was a statistically significant difference in lipid peroxidation product (MDA) and SOD enzyme activity, CAT and GSH levels in liver tissue of diabetic rats compared with control group in streptozotocin-induced diabetic rats (p

___

  • 1. Hosseini SE, Tavakoli F, Karami M. Medicinal Plants in the treatment of Diabetes mellitus. Clinical Excellence 2014;2: 64-89.
  • 2. Ghosh J, Das J, Manna P, Sil PC. The protective role of arjunolic acid against doxorubicin induced intracellular ROS dependent JNK-p38and p53- mediated cardiacapoptosis. Biomaterials 2011; 32 (21):4857-4866.
  • 3. Das J, Roy A, Sil PC. Mechanism of the protective action of taurine in toxin and drug induced organ pathophysiology and diabetic complications: a review. Food Funct 2012; 2 (12):1251-1264.
  • 4. Matough FA, Budin SB, Hamid ZA, Alwahaibi N, Mohamed J. The role of oxidative stres and antioxidants in diabetic complications. Sultan Qaboos Univ Med J 2012; 12:5–18.
  • 5. Patche J, Girard D, Catan A, et al. Diabetes-induced hepatic oxidative stress: a newpathogenic role for glycated albumin. Free Radic Biol Med 2017;102:133–148.
  • 6. Thomford N. E, Dzobo K, Chopera D, et al. Pharmaco genomic simplications of using herbal medicinal plants on african populations in health transition. Pharmaceuticals 2015; 8:637-663.
  • 7. Ranilla L G, KwonY I, Apostolidis E, Shetty K. Phenolic compounds, antioxidant activity and in vitro inhibitory potential against key enzymes relevant for hyperglycemia and hypertension of commonly used medicinal plants, herbs and spices in Latin America Bioresour Technol 2010; 101:4676-4689.
  • 8. Koksal E, Tohma H, Kilic O, et al. Assessment of antimicrobial and antioxidant activities of Nepetatrachonitica: Analysis of its phenolic compounds using HPLC-MS/MS. Sci Pharm 2017; 85: 24.
  • 9. Kanter M. Free radicals, exercise and antioxidant supplementation. Proc Nutr Soc 1998; 57:9-13.
  • 10. Saeed N, Khan M R, Shabbir M. Antioxidant activity, total phenolic and total flavonoid c o n t e n t s o f w h o l e p l a n t e x t r a c t s Torilisleptophyllal. BMC Complement Altern Med 2012; 12: 221.
  • 11. Villalva M, Jaimea L, Villanueva-Bermejo D, et al. Supercritical anti-solvent fractionation for improving antioxidant and antiinflammatory activities of an Achillea millefolium L. extract. Food Research International 2019; 115:128–134.
  • 12. Giorgi, A, Mingozzi M, Madeo M, et al. Effect of nitrogen starvation on the phenolic metabolism and antioxidant properties of yarrow. Food Chemistry 2009; 114: 204–221.
  • 13. Tadíc V, Arsic I, Zvezdanovic J, et al. The estimation of the traditionally used yarrow (Achillea millefolium L. Asteraceae) oil extarcts with anti-inflammatory potential in topical application. Journal of Ethnopharmacology 2017; 199:138–148.
  • 14. Van Ye TM, Roza AM, Pieper GM, et al. Inhibition of intestinal lipidperoxidation does not minimize morphologic damage. J Surg Res 1993;55(5):553- 558.
  • 15. Aebi H. Catalase in vitro. Methods Enzymol 1984;105:121-126.
  • 16. Durak I, Canbolat O, Kavutcu M, Ozturk HS,Yurtarslani Z. Activities of total, cytoplasmic, and mitochondrial superoxide dismutase enzymes in sera and pleural fluids from patients with lung cancer. J Clin Lab Anal 1996;10(1):17-20.
  • 17. Habig WH, Pabst MJ, Jakoby WB. Glutathione-Stransferases. The first enzymatic step in mercapturicacid formation. J Biol Chem 1974;249 (22):7130-7139.
  • 18. Patche J, Girard D, Catan A, et al. Diabetes-induced hepatic oxidative stress: a new pathogenic role for glycated albumin. Free Radic Biol Med 2017; 102:133-148.
  • 19. Ois Moreau F, Pinget M, Maillard E, Verine Sigrist S. Oxidative stresss tatusand liver tissue defenses in diabetic rats during intensive subcutaneous insulin therapy. Exp Biol Med 2015; 1–9.
  • 20. Aboonabi A, Rahmat A, Othman F. Antioxidant effect of pomegranate against streptozotocinnicotin amide generated oxidative stres induced diabetic rats. Toxicol Rep 2014; 1:915–922.
  • 21. Tabei SM, Fakher S, Djalali M, et al. Effect of vitamins A, E, C and omega-3 fatty acid ssupplementation on the level of catalase and superoxide dismutase activities in streptozotocininduced diabetic rats. Bratisl Lek Listy 2015;116 (2): 115-118.
  • 22. Aluwong T, Ayo JO, Kpukple A, Oladipo OO. Amelioration of hyperglycaemia, oxidative stres and dyslipidaemia in alloxan-induced diabetic Wistar rats treated with probiotic and vitamin C. Nutrients 2016; 8(5):151.
  • 23. Garg MC, Chaudhary DP, Bansal DD. Effect of vitamin E supplementation on diabetes induced oxidative stress in experimental diabetes in rats. Indian J Exp Biol 2005; 43(2):177-180.
  • 24. Allagui MS, Feriani A, Bouoni Z, et al. Protective effects of vitamins (C and E) and melatonin coadministration on hematological and hepatic functions and oxidative stress in alloxan-induced diabetic rats. J Physiol Biochem 2014; 70(3): 713- 723.
  • 25. Sofi I A, Gopalakrishnan B. And Venkatesalu V. P h a r m a co g no s y , P hy t o ch e m i s t ry a nd Pharmacological Properties of Achillea millefolium L.Phytotherapy Research 2017;31:1140–1161.
  • 26. Chou ST, Peng HY, Hsu JC. Achillea millefolium L. esansiyel yağı, RAW 264.7 makrofajlarında LPS kaynaklı oksidatif stres ve nitrik oksit üretimini inhibe eder. Int J MolSci. 2013;14: 12978–12993.
  • 27. Mustafa KG, Ganai BA, Akbar S. β-Hücre koruyucu etkinlik, diyabetik sıçanlarda Achillea millifolium ekstraktlarının hipoglisemik ve hipolipidemik etkileri. Çin Doğal Tıp Dergisi 2012; 10: 185–189.
  • 28. Kav S, Hanoğlu Z, Algıer L. Türkiye’de kanserli hastalarda tamamlayıcı ve alternatif tedavi yöntemlerinin kullanımı: literatür taraması. Uluslararası Hematoloji-Onkoloji Dergisi 2008; 18(1): 1.
  • 29. Yong LI, Zhang M L, Cong B et al. Achillinin A, a Cytotoxic Guaianolide from the Flower of Yarrow, Achillea millefolium. Biosci Biotechnol Biochem 2011; 75(8):1554–1556.
  • 30. Bafrani H H, Parsa Y, Damavandi S Y. Biochemical and Pathological Study of Hydroalcoholic Extract of Achillea millefolium L. on Ethylene GlycolInduced Nephrolithiasis in Laboratory Rats. N Am J Med Sci 2014;6(12): 638–642.
  • 31. Yazdanparast R, Ardestani A and JamshidiS. Experimental diabetes treated with Achillea santolina: Effect on pancreatic oxidative parameters. Journal of Ethnopharmacology 2007; 112(1): 13-18.
Sağlık Bilimleri Dergisi-Cover
  • ISSN: 1018-3655
  • Yayın Aralığı: Yılda 3 Sayı
  • Başlangıç: 1993
  • Yayıncı: Prof.Dr. Aykut ÖZDARENDELİ
Sayıdaki Diğer Makaleler

Paklitaksel’in Oluşturduğu Testis Hasarı Üzerine Resveratrol’ün Koruyucu Etkisinin İncelenmesi

Pınar BİLGİCİ, Esra BALCIOĞLU, Birkan YAKAN

TEORİDE HAZIRLANAN RASYONLARIN PRATİK UYGULAMADAKİ VARYASYONLARININ ALTI SİGMA METODOLOJİSİ İLE ARAŞTIRILMASI; 2-TMR RASYONLARINDA KULLANILAN YEM HAMMADDELERİNDEKİ BESİN MADDE DEĞİŞKENLİKLERİN BİR SÜT SIĞIRI ÇİFTLİĞİ ÖRNEĞİNDE İNCELENMESİ

Selim SIRAKAYA, Osman KÜÇÜK

PATENT BLUE V (E131)’İN BULUTLANMA NOKTASI EKSTRAKSİYONU İLE AYRILMASI VE UV-VİS SPEKTROFOTOMETRESİ İLE MİKTAR TAYİNİ

Dönay YUVALI, Esen Gül KOÇAK, İbrahim NARİN

Civan percemi (Archilia millefolium)’nin diyabetik sıçanların karaciğer dokusundaki antioksidan enzimler üzerine koruyucu etkisinin araştırılması

Mustafa NİSARİ

SEROTONİN ve EPİLEPSİDE ROLÜ

Mehmet TAŞKIRAN

İNTÖRN HEMŞİRELERDE MESLEKİ DEĞERLER VE ETİK DUYARLILIK

Nuray CANER, Yağmur SEZER EFE, Emine ERDEM, Öznur BAŞDAŞ, Meral BAYAT, Maksude YILDIRIM

PAKLİTAKSEL’İN OLUŞTURDUĞU TESTİS HASARI ÜZERİNE RESVERATROL’ÜN KORUYUCU ETKİSİNİN İNCELENMESİ

Esra BALCIOĞLU, Birkan YAKAN, Pınar BİLGİCİ

Bir İlçe Devlet Hastanesi Kadın Doğum Polikliniğine Başvuranların Smear Sonuçlarının Değerlendirilmesi

Rabia AKEL TAŞDEMİR, Ayşe Ferdane OĞUZÖNCÜL

Ratlarda karbon tetraklorür ile oluşturulan kronik karaciğer hasarı üzerine biberiye ekstraktının (Rosmarinus officinalis) etkisi ve hepatik apoptozisin belirlenmesi

Görkem EKEBAŞ, Ayhan ATASEVER, Ahmet ALPAY, Duygu YAMAN GRAM

GEBELERİN UYKU ÖZELLİKLERİNİN PRENATAL BAĞLANMA İLE İLİŞKİSİ

Gülçin NACAR, Sermin TİMUR TAŞHAN