Treatment of a Post-Operative Infected Wound of a Cat with Maggot Debridement Therapy

Maggot debridement therapy (MDT), which is an ancient remedy, has been reintroduced and commonly used to promote wound healing in humans. However, its use in the veterinary field has still remained limited. The aim of this case study was to evaluate the effectiveness of MDT on a non-healing post-operative infected wound covering the abdominal and inguinal regions of a 3-year-old male cat. For MDT, sterile first and second stage larvae of Lucilia sericata were applied to the infected wound for the first time on the 10th day after laparotomy. A total of five larva applications were performed during the MDT process. From the first to the last MDT application, the large and infected wound gradually shrank and healed. Sterile L. sericata larvae were successfully used in the treatment of a chronic and infected wound that did not respond to antibiotics in a cat in this case study. It is considered that the use of MDT for promoting healing in chronic necrotic and infected wounds will increase because of supplying effective, cost-efficient and simple wound care in future.

Maggot Debridman Tedavi İle Bir Kedinin Post-operatif Enfekte Yarasının Sağaltımı

Eskiden tedavi amacıyla kullanılan maggot debridman tedavi (MDT) yeniden gündeme gelmiş ve insanlarda yara iyileşmesini teşvik etmek amacıyla kullanılmaya başlanmıştır. Ancak, bu yöntemin veteriner hekimlik alanında kullanımı sınırlıdır. Bu vaka sunumu, 3 yaşındaki erkek bir kedinin abdominal ve inguinal bölgelerini kapsayan, iyileşmeyen postoperatif enfekte bir yarada MDT’nin etkinliğini değerlendirmek amacıyla hazırlandı. MDT için ilk uygulama laparotomiden sonraki 10. günde yapıldı. Bu amaçla Lucilia sericata türü sineklerin steril birinci ve ikinci dönem larvaları kullanıldı. MDT sürecinde toplam beş adet larva uygulaması yapıldı. İlk MDT uygulamasından son MDT uygulamasına kadar, büyük ve enfekte olmuş yara yavaş yavaş küçülerek iyileşti. Steril L. sericata larvaları ile bir kedinin antibiyotiklere yanıt vermeyen kronik ve enfekte yarası başarılı bir şekilde sağaltıldı. Gelecekte etkili, uygun maliyetli ve basit yara bakımı sağlaması nedeniyle kronik, nekrotik ve enfekte yaralarda iyileşmeyi teşvik etmek amacıyla MDT kullanımının artacağı düşünülmektedir.

___

1. Mumcuoğlu KY, Taylan Özkan A: The treatment of suppurative chronic wounds with maggot debridement therapy. Türkiye Parazitol Derg, 33 (4): 307-315, 2009.

2. Nair HKR, Ahmad NW, Teh CH, Lee HL,Chong SSY: Maggot debridement therapy in Malaysia. Int J Low Extrem Wounds, 2020: 1534734620932397: 1-9, 2020. DOI: 10.1177/1534734620932397

3. Gasz NE, Harvey ML: A new method for the production of sterile colonies of Lucilia sericata. Med Vet Entomol, 31, 299-305, 2017. DOI: 10.1111/mve.12232

4. Kenawy MA, Abdel-Hamid YM: Maggot therapy “Use of fly larvae for treatment of wounds”- A review. Egypt Acad J Biol Sci, 12 (2): 1-10, 2020. DOI: 10.21608/eajbse.2020.104166

5. Bazalinski D, Kozka M, Karnas M, Wiech P: Effectiveness of chronic wound debridement with the use of larvae of Lucilia sericata. J Clin Med, 8:1845, 2019. DOI: 10.3390/jcm8111845

6. Baer WS: The treatment of chronic osteomyelitis with the maggot (larva of the blow fly). J Bone Joint Surg, 13, 438-475, 1931.

7. Nigam Y, Bexfield A, Thomas S, Ratcliffe NA: Maggot therapy: The science and implication for CAM part I-History and bacterial resistance. Evid Based Complement Alternat Med, 3 (2): 223-227, 2006. DOI: 10.1093/ ecam/nel021

8. Tanyüksel M, Koru Ö, Araz RE, Kılbaş HZG, Yıldız Ş, Alaca R, Ay H, Şimşek K, Yıldız C, Yurttaş Y, Demiralp B, Deveci M, Beşirbellioğlu BA: Applications of sterile larva of Lucilia sericata for the treatments of chronic wounds. Gülhane Tıp Derg, 56, 218-222, 2014. DOI: 10.5455/ gulhane.173024

9. Yıldız Ş, Tanyüksel M, Araz E, Taner ÖT, Coşkun Ö, Yurttaş Y, Uzun G: Biological debridement with maggots in chronic wounds: A case series. TAF Prev Med Bull, 15 (4): 336-341, 2016.

10. Bell NJ, Thomas S: Use of sterile maggots to treat panniculitis in an aged donkey. Vet Rec, 149, 768-770, 2001. DOI: 10.1136/vr.149.25.768

11. Kocisova A, Pistl J, Link R, Conkova E, Goldova M: Maggot debridement therapy in the treatment of Footrot and Foot Scald in sheep. Acta Vet Brno, 75, 277-281, 2006. DOI: 10.2754/avb200675020277

12. Sherman RA, Morrison S, Ng D: Maggot debridement therapy for serious horse wounds - A survey of practitioners. Vet J, 174 (1): 86-91, 2007. DOI: 10.1016/j.tvjl.2006.05.012

13. Sherman RA, Stevens H, Ng D, Iversen E: Treating wounds in small animals with maggot debridement therapy: A survey of practitioners. Vet J, 173, 138-143, 2007. DOI: 10.1016/j.tvjl.2005.11.006

14. Morrison S: Maggot debridement therapy for laminitis. Vet Clin North Am Equine Pract, 26 (2): 447-450, 2010. DOI: 10.1016/j.cveq.2010.06.002

15. Lepage OM, Doumbia A, Perron-Lepage MF, Gangl M: The use of maggot debridement therapy in 41 equids. Equine Vet J, 44 (S43): 120- 125, 2012. DOI: 10.1111/j.2042-3306.2012.00609.x

16. Fleischmann W, Grassberger M, Sherman R: Maggot therapy: A handbook of maggot-assisted wound healing. 85, Georg Thieme Verlag, Stutgart, 2004.

17. Chan DCW, Fong DHF, Leung JYY, Patil NG, Leung GKK: Maggot debridement therapy in chronic wound care. Hong Kong Med J, 13, 382- 386, 2007.

18. Taylan Özkan A, Mumcuoğlu KY: Maggot debridement therapy for the treatment of a venous stasis ulcer. Turk Hij Den Biyol Derg, 64 (1): 31- 34, 2007.

19. Gul E, Nurullazade Y, Kaya E: Larva treatment from past to present in chronic wounds. IJTCMR, 1 (3): 154-161, 2020.

20. Arshadniya I, Ranganna K, Yousefipour Z: A case report of the athome application of maggot in treatment of infected wound in a diabetic patient. Int J Complement Alt Med, 8 (1): 00250, 2017. DOI: 10.15406/ ijcam.2017.08.00250
Kafkas Üniversitesi Veteriner Fakültesi Dergisi-Cover
  • ISSN: 1300-6045
  • Yayın Aralığı: Yılda 6 Sayı
  • Başlangıç: 1995
  • Yayıncı: Kafkas Üniv. Veteriner Fak.
Sayıdaki Diğer Makaleler

Eff ect of Exercise on Electrocardiography and Stress Behavior of Kangal Shepherd Dogs with Ankyloglossia

Mustafa KOÇKAYA

Köpeklerde Malign Meme Bezi Tümörlerinde Oksidatif Stres Parametrelerinin Varlığı ve Önemi

Hasan ORAL, Mushap KURU, Emin KARAKURT, Serpil DAĞ, Ayfer YILDIZ, Hilmi NUHOĞLU, Enver BEYTUT

Ovaryum Torsiyonu Uygulanmış Ratlarda Chrisinin Koruyucu Etkisi

Yıldıray BAŞBUĞAN, Ahmet Ufuk KÖMÜROĞLU, Deniz DİRİK, Uğur ÖZDEK, Pınar KOLUSARI, Volkan KOŞAL, Ömer Faruk KELEŞ

Beyaz Yeni Zelanda Tavşanlarında Farklı Midriyatiklerin Göz İçi Basıncı ve Merkezi Kornea Kalınlığı Üzerine Etkileri

Lati f Emrah YANMAZ, Elif DOĞAN, Mümin Gökhan ŞENOCAK, Uğur ERSÖZ, Zafer OKUMUŞ, Sıtkıcan OKUR

Clostridium perfringens’e Karşı Alum Presipite ve Yağ Adjuvanlı Multivalan Aşıların Hazırlanması ve Değerlendirilmesi

Aftab Ahmad ANJUM, Madeeha TARIQ, Ali Ahmad SHEIKH, Ali Raza AWAN, Muhammad Asad ALİ, Mian Muhammad Khubaib SATTAR, Shahid HUSSAIN, Tehreem ALI

Determination of Hemato-Biochemical Biomarkers, Associated Risk Factors and Therapeutic Protocols for Pregnancy Toxemia in Beetal Goats

Yasir Razzaq KHAN, Aneela Zameer DURRANI, Muhammad IJAZ, Ahmad ALI, Rabia Liaqat KHAN, Kashif HUSSAIN, Ameer Hamza RABBANI

Kurkuminin D-17 Köpek Osteosarkom Hücre Hattı Üzerindeki Sitotoksik ve Apoptotik Etkileri

Ayşegül BİLDİK, İrem BAYAR, Gamze Sevri EKREN AŞICI, Funda KIRAL, Pınar Alkım ULUTAŞ

Pakistan’ın Pencap Eyaletinde Sığır ve Mandalarda Fasciolozis’in Tespitinde Copro-ELISA’nın Tanısal Etkinliği

Kiran AFSHAN, Sabika FIRASAT, Imtiaz AHMAD, Maria KOMAL, Imtiaz Ahmad KHAN, Mazahr QAYYUM

Determinate of ECG, Oxidative Stress, and Angiogenesis in APAPInduced Toxicity in Rats

Mustafa MAKAV, Turgut DOLANBAY, HÜSEYİN FATİH GÜL, Emin KARAKURT

Ankloglossia Olan Kangal Çoban Köpeklerinde Egzersizin Elektrokardiyografi ve Stres Davranışı Üzerine Etkisi

Mustafa KOÇKAY