MEHMET AKAN, Ebru TORUN, H. Kaan MÜŞTAK, ORKUN BABACAN, Taner ÖNCEL

Diagnosis of mycoplasma bovis infection in cattle by ELISA and PCR

Mycoplasma bovis, Mycoplasma etkenleri içerisinde sığırlarda infeksiyona neden olan en patojen etkenlerden biridir. Özellikle,aylık yaşın altındaki genç buzağılarda, M. bovisin neden olduğu pnömonilerde artan bir risk bulunmaktadır. Bu çalışmada solunum sistemi infeksiyonu semptomları gösteren sığırların trachea svapları ve kan serumlarından M. bovis infeksiyonunun teşhisi ve M. bovis teşhisi için serolojik ve moleküler metodların karşılaştırılması amaçlanmıştır. Türkiyede bulunan 7 farklı çiflikten gönderilen 127 tracheasvap örneği ile 15 gün arayla aynı sığırlardan alınan 254 adet akut ve konvelesans serum örneği PCR ve ELISA yöntemleriyle incelendiBu örnekler 3-12 aylık yaşlar da olan ve bronkopnömoni, öksürük, depresyon, halsizlik ve ateş gibi solunum sistemi infeksiyonu semptomu gösteren sığırlardan toplandı. Tracheal svap örneklerinin PCR sonuçlarına göre 4 farklı çiftik M. bovis infeksiyonu yönünden pozitif bulundu. Oranlar %5.3 (1/19) ile %37.5 (6/16) arasında bulundu. Mycoplasma bovis antikorları yönünden incelen 127 sığıra ait serumlarda, 45 (%35.4) adeti pozitif olarak saptandı; 82 (%64.6) serum ise negatif olarak saptandı. PCRda pozitif olarak saptanan tüm sığırlar ELISA yöntemiyle de pozitif olarak saptandı. M. bovis infeksiyonu tüm çiftliklerde pozitif olarak saptandı ve ELISA oranlar%20 (2/10) ile %68 (11/16) arasında değişkenlik gösterdi. Bu sonuçlar göz önüne alındığında, özellikle kronik infeksiyonlarda M. bovis infeksiyonunun teşhisinde ELISAnın, PCR yöntemine göre daha uygun bir yöntem olduğu sonucuna varıldı.

Sığırlarda Mycoplasma bovis Infeksiyonunun ELISA ve PCR ile Teşhisi

Mycoplasma bovis is one of the most pathogenic agents in the Mycoplasma species that cause disease in cattle. In particularyoung calves at less than 4 months of age are a considerable risk from pneumonia caused by M. bovis. In this study, we investigated M. bovis from tracheal swabs and blood sera of cattle which showed respiratory symptoms. A total of 127 tracheal swab samples were collected from seven different farms in Turkey. In addition, a total 254 acute and convelance sera were collected from the same cattle at intervals 15 days. The materials were collected from cattle between 3-12 months of age that reported respiratory problems such as broncho-pneumonia with coughing, depression, lethargy and fever. Mycoplasma bovis was investigated in tracheal swab samples and sera collected from the cattle by using PCR and ELISA respectively. The PCR results showed that M. bovis infections were positive in 4 different farms. The rates ranged from 5.3% (1/19) to 37.5% (6/16). Out of the 127 cattle examined, 45 (35.4%) were positive forbovis antibodies, while 82 (64.6%) were found to be negative. All PCR positive cattle were also found to be positive by ELISA. However by using ELISA, M. bovis infections were positive in all farms and the ELISA positive rates ranged from 20% (2/10) to 68.8% (11/16)Considering these results, in especially chronic infections, ELISA is a more useful method than PCR to detect M. bovis infection. M

PDF

___

Maunsel FP, Woolums AR, Francoz D, Rosenbuch RF, Step DLWilson DJ, Janzen ED: Mycoplasma bovis infections in cattle. J Vet InterMed, 25, 772-783, 2011.
Nicholas RAJ: Recent developments in the diagnosis and control omycoplasma infections in cattle. WBC Congress, Quebec, Canada, 200www.ivis.org
Soehnlen NK, Aydin A, Murthy KS, Lengerich EJ, Hattel AL, HouseBA, Fenton GD, Lysczek HR, Burns CM, Townsend AM, Brooks JWWolfgang DR, Jayarao BM: Epidemiology of Mycoplasma bovis iPennsylvania veal calves. J Dairy Sci, 95, 247-254, 2012.
Nicholas RAJ, Ayling RD: Mycoplasma bovis: Disease, diagnosis, ancontrol. Res Vet Sci, 74, 105-112, 2003.
Arcangioli MA, Duet A, Meyer G, Dernburg A, Bezille P, Poumarat Le Grand D: The role of Mycoplasma bovis in bovine respiratory diseasoutbreaks in veal calf feedlots. Vet J, 177, 89-93, 2008.
Caswell JL, Archambault M: Mycoplasma bovis pneumonia in cattlAnim Health Res Rev, 8 (2): 161-186, 2008.
Sachse K, Pfützner H, Hotzel H, Demuth B, Heller M, BertholE: Comparison of various diagnostic methods for the detection oMycoplasma bovis. Rev Sci Tech Off Int Epiz, 12 (2): 571-580, 1993.
Thomas A, Dizier I, Trolin A, Mainil J, Linden A: Comparision oprocedures of isolating pulmonary Mycoplasmas in cattle. Vet ReCommun, 26 (5): 333-339, 2002.
Ghadersohi A, Coelen RJ, Hirst RG: Development of a specific DNprobe and PCR for the detection of Mycoplasma bovis. Vet Microbiol, 587-98, 1997.
Fulton RW: Bovine respiratory diseases research (1983- 2009). Anim Health Res Rev, 10 (2): 131-139, 2009.
Hayman B, Hirst R: Development of a semi-nested PCR for thimproved detection of Mycoplasma bovis from bovine milk and mucossamples. Vet Microbiol, 91, 91-100, 2003.
Sung H, Kang SH, Bae YJ, Hong JT, Chung CB, Lee CK, Song S: PCRbased detection of Mycoplasma species. J Microbiol, 44, 42-49, 2006.
Foddai A, Idini G, Fusco M, Rosa N, de la Fe C, Zinellu S, CoronL, Tola S: Rapid differential diagnosis of Mycoplasma agalactiae anMycoplasma bovis based on a multiplex-PCR and a PCR-RFLP. Mol CeProbes, 19, 207-212, 2005.
Karahan M, Kalin R, Atil E, Çetinkaya B: Detection of Mycoplasmbovis in cattle with mastitis and respiratory problems in eastern TurkeVet Rec, 166, 827-829, 2010.
Ongor H, Kalın R, Karahan M, Cetinkaya B, McAuliffe L, NicholaRAJ: Isolation of Mycoplasma bovis from broiler chickens in Turkey. AviaPathol, 37 (6): 587-588, 2008.