Alabalık işletmelerinden motil aeromonasların izolasyonu ve Antibiyotiklere duyarlılıklarının saptanması

Bu çalışmada; Mart - Mayıs 2000 ve Kasım 2000 - Mart 2001 tarihleri arasında, alabalık işletmelerinden toplanan 73 adet balık örneği ile 22 adet su örneği motil Areomonas’lar yönünden incelendi. Suşların 18 farklı antibiyotiğe karşı duyarlılıkları araştırıldı. Araştırmada 95 örnekten 52 motil Aeromonas (%41.0) izole edildi. Bu izolatlardan 21 suş (%40.3) Aeromonas hydrophila, 24 suş (%46.1) Aeromonas caviae ve 7 suş (%13.4) Aeromonas sobria olarak identifiye edildi. Balık örneklerinden 34 izolasyon (%35.6) yapıldı. Bu izolatlardan 15 suş (%44.1) Aeromonas hydrophila, 14 suş (%41.1) Aeromonas caviae ve 5 suş (%14.7) Aeromonas sobria olarak identifiye edildi. Su örneklerinden 18 izolasyon (%59.0) yapıldı. Bu izolatlardan 6 suş (%33.3) Aeromonas hydrophila, 10 suş (%55.5) Aeromonas caviae ve 2 suş (%11.1) Aeromonas sobria olarak identifiye edildi. Araştırmada incelenen balık materyallerinin iç organlarından izolasyon yapılamazken, çalışmada tespit edilen motil Aeromonas suşlarının tamamı balıkların solungaçlarından ve sudan izole edildi. Antibiyotiklere duyarlılık testinde tüm izolatlar; Ciprofloxacin ve enrofloxacin’e şiddetli derecede (%96’nın üzerinde), amikacin’e yüksek derecede (%92.3), oxolinic acid, flumequin, cefoperazone+sulbactam, imipenem, mezlocillin, piperacillin ve cefotaxim’e orta derecede (%76.9 ile %84.6 arasında), neomycine, nalidixic acid, sulphonamide, nitrofurantoin ve trimethoprim’e az (%26.9 ile %61.5 arasında) duyarlı bulunmuştur. Oxytetracycline, streptomycin ve carbenicillin’e yüksek derecede direnç tespit edilmiştir.

Anahtar Kelimeler:

motilite, Aeromonas, bakteriler, izolasyon, alabalık, balık yetiştiriciliği, balık çiftlikleri

Isolation of motil aeromonases and to determine Antimicrobial susceptibility from farms of trout

In this study; a total of 73 trout and 22 water samples from provinces of Turkey against were investigated for motil Aeromonases and tested the susceptibility 18 antibiotics between March and May 2000 and between November 2000 and March 2001. In the study 52 motil Aeromonases (41.0%), from a total of 95 samples were isolated. From these isolates, 21 strains (40.3%), 24 strains (46.1%), and 7 strains (13.4%) were identified as A. hydrophila, A. cavie, and A. sobria respectively. A total of 34 isolation (%35.6) were made from fish samples. From these isolates, 15 strains (44.1%), 14 strains (41.1%) and 5 strains (14.7%) were identified as A. hydrophila, A. cavie, and A. sobria, respectively. A total of 18 isolation (59.0%) were made from water samples. From these isolates, 6 strains (33.3%), 10 strains (55.5%), and 2 strains (11.1%) were identified as A. hydrophila, A.cavie, and A. sobria respectively. Whereas no isolation was made from internal organs of fish samples, all motil Aeromonas strains identified in the study were isolated from sills of fish and water samples. All isolates have been found sensitive against antibiotics; ciprofloxcacin and enrofloxacin at intense degree (more than 96%), amikacin at high degree (92.3%), oxolinic acid, flumequin, cefoperazone+sulbactam, imipenem, mezlocillin, piperacillin and cefotaxim at medium degree (76.9%-84.6%) neomycine, sulphonamide, nitrofurantoin, and trimethoprim at little degree (26.9%-61.5%). Resistance was at high degree discovered for oxytetracycline, streptomycin, and carbenicillin.

Keywords:

motility, Aeromonas, bacteria, isolation, trout, fish farming, fish farms,

PDF

___

1. Munro ALS: The pathogenesis of bacterial diseases of fishes. In, Roberts JR (Ed): Microbial Diseases of Fish. pp. 131- 151, Academic Pres, London, 1982.
2. Post G: Textbook of Fish Health. 1st ed. pp. 30-41, T.F.H. Publications, NJ, 1987.
3. Austin B, Austin AD: Bacterial Fish Pathogens: Disease in Farmed and Wild Fish. pp. 173-181, Ellis Horwood, Chichester, 1993.
4. Inglis V, Roberts JR, Bromage RN: Motile aeromonad (aeromonas) septicaemia: Bacterial Diseases of Fish. pp. 143- 278, Blackwell Science, Edinburgh, 1993.
5. Diker KS: Aeromonas ve aeromonas enfeksiyonlarO. In, Arda M, Mimbay A, Leloğlu N, AydOn N, Kahraman M, Akay Ö, Ilgaz A, İzgür M, Diker KS (Eds): Özel Mikrobiyoloji. s. 59-62, Medisan YayOn Serisi. No: 26, Ankara, 1999.
6. Southage P: Disease in aquaculture. In, Brown L (Ed): Aquaculture for Veterinarians. 1st ed. pp. 84-102, Pergamon Pres, New York, 1993.
7. Mascher F: Invitro-empfindlichkheit von Aeromonas spp. gegen antibiotika. Wien Med Wochenschrift, 3, 57-59, 1990.
8. Diler Ö, Altun S: GökkuşağO alabalOklarOndan (Oncorhynchus mykiss) hemorajik septisemi etkeni olarak izole edilen bazO Aeromonas hydrophila suşlarOnOn biyokimyasal özelliklerinin belirlenmesi. SDÜ Eğirdir Su Ürün Fak Derg, 4, 169-178, 1994.
9. Cengiz AT: Aeromonas ve plesiomonas. In, Mutlu G, İmir T, Cengiz AT, Ustaçelebi Ş, Tümbay E, Mete Ö (Eds): Temel ve Klinik Mikrobiyoloji. s. 527-531, Güneş Kitabevi, Ankara, 1999.
10. Muz A, SarFeyüpoğlu M, Ertaş HB, Şimşek A: Keban baraj gölünden yakalanan bazO balOklarOn serobik ve mikroaerofilik bakteriler yönünden incelenmesi. FOrat Üniv SağlOk Bil Derg, 9 (2): 212-219, 1995.
11. Austin B, Austin AD: Methods for The Microbiological Examination of Fish and Shellfish. 1st ed. pp. 164-186, Ellis Horwood, Chichester, 1989.
12. Canonica PF, Pisano AM: Identification of hydroxy fatty acids in Aeromonas hydrophila, Aeromonas sobria and Aeromonas caviae. J Clin Microbiol, 22 (6): 1061-1062, 1985.
13. Callister MS, Agger AV: Enumeration and characterization of Aeromonas hydrophila and Aeromonas caviae isolated from grocery store produce. App Environ Microbiol, 53, 249- 253, 1987.
14. Baran İ, Timur M, AydFn N, İstanbulluoğlu E, AydFntuğ MK: Çifteler-SakaryabaşO BalOk Üretim ve AraştOrma İstasyonu’nda alabalOklarda (Salmo gairdneri irideus) görülen bakteriyel hemorajik septisemi hastalOğO üzerine incelemeler. Ankara Üniv Vet Fak Derg, 30, 468-473, 1981.
15. Frerrichs NG, Millar DS: Manual for The Isolation and Identification of Fish Bacterial Pathogens. pp. 1-61, Pisces Press, Stirling, 1993.
16. Beşe M: Mikrobiyolojide KullanOlan Biyokimyasal Testler ve Besiyerleri. pp. 535- 536, Ankara Üniv Vet Fak YayOnlarO, YayOn No: 298, Ankara, 1974.
17. Bekâr M: Enterobacteriaceae FamilyasO Mikroorganizmalar On Genel Karakterleri ve TanO Yöntemleri. 178- 179, Etlik Vet Kont ve Araşt Enst YayOnlarO, YayOn No: 97 (1), 1997.
18. Erdeğer J: Antibiyotik duyarlOlOk testleri ve uygulama alanlarO. Etlik Vet Mikrobiyol Derg, 7 (1): 1-26, 1990.
19. Gökçelik G: KOrby-Bauer antimikrobial duyarlOlOk testi. Antimikrobiyal KullanOmda Temel İlkeler ve DuyarlOlOk Test Yöntemleri. pp. 57-59, Pfizer yayOn, İstanbul, 1993.
20. Timur G, Timur M: Eğridir gölü sudak (Stizostedion lucioperca L. 1758) balOklarOnda yüksek mortaliteye neden olan bakteriyel hemorajik septisemi hastalOğO üzerine bir araştOrma. Ankara Üniv Vet Fak Derg, 32 (1): 33-41, 1985.
21. Kuijper JE, Peeters MF, Schoenmakers BSC, Zanen HC: Antimicrobial susceptibility of sixty human fecal isolated of Aeromonas species. Eur J Clin Microbiol, 8, 247-249, 1989.
22. Goni-Urriza M, Pineau L, Capdepuy M, Roques C, Caumette P, Quentin C: Antimicrobial resistance of mesophilic Aeromonas spp. isolated from two European rivers. J Antimic Chem, 46 (2): 297-301, 2000.
23. Chang, JB, Bolton MS: Plasmids and resistance to antimicrobial agents in Aeromonas sobria and Aeromonas hydrophila clinical isolates. App Environ Microbiol, 8, 1281- 1282, 1987.