Meral SAYGUN, Tevfik PINAR, Aytül ÇAKMAK, Aydanur EKİCİ, J. Sedef GÖÇMEN, Teoman APAN, Latife ABUT İŞERİ, Altan AKSOY

Tersiyer referans hastanesinde Mycobacterium tuberculosis izolasyon sıklığı ve dört major anti-tüberküloz ilaca karşı duyarlılık durumu

Amaç: Tüberküloz hastalığında, basilin kısa sürede sap- tanması ve izolatın anti-tüberküloz ilaçlara karşı duyarlı- lığının belirlenmesi, tedavi için çok önemlidir. Bu amaçla şüpheli hasta örneklerinin farklı iki yöntemle kültürü yapıl- mış ve üreme saptanan örneklerde anti-tüberküloz ilaçla- ra duyarlılık testi sonuçları irdelenmiştir. Gereç ve yöntem: Çalışmada hasta örnekleri homojeni- zasyon ve dekontaminasyon işlemlerinden sonra Zielh- Neelsen boyası ile boyandı. Her bir örnek Lowenstein- Jensen (LJ) ve Mycobacterium Growth Indicator Tube (MGIT) besiyerlerine inoküle edildi. İnkübasyon periyo- dunu takiben üreme saptanan örneklerdeki basillerin dört majör anti-tüberküloz ilaca karşı duyarlılıkları araştırıldı. Bulgular: Çalışmada 2007-2010 yılları arasında 163 fark- lı hastadan alınan örnekler değerlendirildi. Tüm örnek- lerde; Aside Dirençli Basil (ARB) pozitifliğinin 7 (%4.0), MGIT pozitifliğinin 6 (%3.5), LJ pozitifliğinin 7 (%4.0) ol- duğu tespit edildi. MGIT yöntemi tüberküloz basillerini LJ yöntemine göre belirgin olarak daha kısa sürede saptadı. İzole edilen bütün suşların dört major anti-tüberküloz ilaca duyarlı olduğu bulundu. Sonuç: Çalışmamızda; MGIT yönteminin tüberküloz ba- silini belirlemede LJ kültürüne belirgin şekilde üstünlük sağladığı saptandı ve üreyen suşlarda anti-tüberküloz ilaçlara karşı direnç belirlenmedi.

Isolation frequency of Mycobacterium tuberculosis in tertiary reference hospital and their susceptibility patterns against four major anti-tuberculosis drugs

Objectives: As soon as possible to detection of tubercu- losis bacilli and to determination of their anti-tuberculosis drug susceptibilities are very important for an optimal anti-tuberculosis therapy. Therefore, two different culture methods in suspected patient samples were performed. The results of anti-tuberculosis drug susceptibility testing of culture positive samples were examined. Materials and methods: Following the homogenization and decontamination processes, patient’s samples were stained with Ziehl-Neelsen dye and each preparation were inoculated separately onto Lowenstein-Jensen (LJ) and into Mycobacterium Growth Indicator Tube (MGIT) media. After incubation period, drug susceptibilities of ba- cillus in culture positive samples against four major anti- tuberculosis drugs were investigated. Results: The samples obtained from 163 different pa- tients between 2007 and 2010 years were evaluated. In all samples, it was determined that positivity of Acid Resistant Bacillus (ARB), MGIT and LJ media were 7 (4.0%), 6 (3.5%) and 7 (4.0%), respectively. MGIT meth- od was demonstrated significantly earlier growth than LJ method the tuberculosis bacillus. All isolates were found to be sensitive to four major anti-tuberculosis drugs. Conclusion: In our study, MGIT method was found to be superior to LJ media because of its quick result and drug resistance was not determined in all isolates.

PDF

___

1. Kılıçaslan Z. Dünyada ve Türkiye’de tüberküloz. An- kem Derg 2007;21(1):76-80.
2. www.euro.who.int/document/CSR/CD news 30.pdf
3. Karagöz T, Arda H, Erboğan T, Kılıçarslan Z, Çağlar E, Erem R. İstanbul Dispanserleri Çalışmalarının Yeni Akciğer Tüberkülozlu Olguların Tanı-Tedavi ve Takip işlemleri açısından değerlendirilmesi. Tüberküloz ve Toraks Dergisi 2000;48(2):128-35.
4. Bilgiç H. Tüberküloz epidemiyolojisi. Kocabaş A. Tü- berküloz kliniği ve kontrolü. Ankara Emel Matbaası 1991:401-37.
5. Sağlık Bakanlığı Verem Savaşı Dairesi Başkanlığı. Türkiye’de Verem Savaşı, 2011 Raporu, Fersa Ofset, Ankara 2011:1-132.
6. The Global Plan to Stop TB: 2011-2015. Stop TB Part- nership. October 2010. Global tuberculosis control: WHO report 2011.Geneva, World Health Organiza- tion, 2011 (WHO/HTM/TB/2011.16 )
7. Koşar F, Ayereci C, Altın S. Tüberkülozda direnç so- runu. Tüberküloz ve Toraks Dergisi 1996;44(2):54-9.
8. Uçan ES. Türkiye’de anti-tüberküloz ilaçlara direnç so- runu. Tüberküloz ve Toraks Dergisi 1994;42(3):219- 30.
9. Öztürk S, İlvan A, Öztürkeri H. Balgamdan Mycoba- cterium tuberculosis izolasyonunda Mycobacteria Growth Indicator Tube (MGIT) yönteminin değeri. Tü- berküloz ve Toraks Dergisi 2001;49(1):101-7.
10. Rivera AB, Tupasi TE, Grimaldo ER, Cardano RC, Co VM. Rapid and improved recovery rate of Myobacte- rium tuberculosis in Mycobacteria Growth Indicator Tube combined with solid Lowenstein-Jensen medi- um. Int J Tuberc Lung Dis 1997;1(3):454-9.
11. Muz MH, Turgut T, Muz A. Akciğer Tüberkülozunda Balgam Numunelerinden Mycobacterium tuberculo- sis’in direkt Mikroskopi, Kültür ve PCR ile Saptanma- sı. Tüberküloz ve Toraks Dergisi 2000;48(1):5-11.
12. Hanna BA,Walters SB, Bonk SJ, Tick LJ. Recov- ary of Mycobacteria from blood in MGIT and L. Jen- sen slant after lysis centrifugation. J Clin Microbiol 1995;33(12):3315-6.
13. Palaci M, Ueki SYM, Nakamura S, Telles MA, Curcio M, Silva EM. Evaluation of Mycobacteria Growth Indi- cator Tube for Recovery and Drug Susceptibility Test- ing of Mycobacterium tuberculosis Isolates from Re- spiratory Specimens. J Clin Microbiol 1996;34(6):762- 4.
14. Sanders CA, Nieda RR, Desmond EP. Validation of the use of Middlebrook 7H10 agar, BACTEC MGIT 960, and BACTEC 460 12B media for testing the sus- ceptibility of Mycobacterium tuberculosis to levofloxa- cin. J Clin Microbiol 2004;42(11):5225-8.
15. Abe C. Standardization of laboratory tests for tu- berculosis and their proficiency testing. Kekkaku 2003;78(8):541-51.
16. Scarparo C, Ricordi P, Ruggiero G, Piccoli P. Evalu- ation of the fully automated BACTEC MGIT 960 sys- tem for testing susceptibility of Mycobacterium tu- berculosis to pyrazinamide, streptomycin, isoniazid, rifampin, and ethambutol and comparison with the radiometric BACTEC 460TB method. J Clin Microbiol 2004;42(3):1109-14.
17. Cruciani M, Scarparo C, Malena M, Bosco O, Serpel- loni G, Mengoli C. Meta-Analysis of BACTEC MGIT 960 and BACTEC 460 TB, with or without Solid Me- dia, for dDetection of Mycobacteria. J Clin Microbiol 2004;42(5):2321-5.
18. Dannerberg A, Joseph E. Pathogenesis of pulmonary tuberculosis. In: Fishman A, Elias J, Fishman J et al (eds). Fishman’s Pulmonary Diseases and Disorders. New York: Mc Graw-Hill Companies, 1998:2447-71.
19. Raviglione MC, Snider DE, Kochi A. Global epidemiol- ogy of Tuberculosis. JAMA 1995;273(2):220-6.
20. Kurtoğlu MG, Yüksekkaya Ş, Özdemir M, Baysal B. Bir Eğitim ve Araştırma Hastanesinin Mikobakteri- yoloji Laboratuvarında Direkt Preparat ve Kültür So- nuçlarının Karşılaştırılması. Selçuk Üniv Tıp Derg 2011;27(2):69-72.
21. İşitez M, Çetinkaya Z, Altındiş M, Çiftçi İH. Afyon böl- gesinde Löwenstein-Jensen, Bactec ve TK Medium yöntemleri ile izole edilen Mycobacterium tuberculosis suşlarının dört major ilaca karşı dirençlerinin belirlen- mesi. Kocatepe Tıp Dergisi 2004;5:45-8.
22. Ökten F, Ertürk A, Mutlu A. Mycobacterium Tubercu- losis’in Streptomisin, Kanamisin ve Amikasine karşı in vitro duyarlılığı ve bu ilaçlar arasındaki çapraz direnç ilişkisi. Tüberküloz ve Toraks Dergisi 2002;50(1):45-7.
23. Şipit YT, Çalışır HC. Tüberkülozda ilaç direnci ve Tür- kiye. Tüberküloz ve Toraks Dergisi 1998;46:4-11.
24. Sevim T, Ataç G, Hatipoğlu T. 1993-1995 yıllarında hastanemizde yatan 2161 akciğer tüberkülozlu olgu- nun primer ve sekonder ilaç direnci oranları. Solunum Hastalıkları 1999;10(2):231-7.
25. Oğul Ç, Gür A, Özdemir A. Yedikule Göğüs Hastalık- ları Hastanesinde 1995-1997 yılları arasında yatan tü- berküloz olgularında primer ve sekonder direnç oran- ları. Solunum Hastalıkları 1999;10(2):238-44.