Taze ve dondurulup-çözdürülen boğa sperm akrozomlarının alfa-naftil aseteat esteraz aktivitelerinin belirlenmesi

Amaç: Akrozomal enzimlerin seminal plazmaya sızıp sızmadığının belirlenmesi, suni tohumlama için sperma işlenmesi sırasında oluşan akrozom hasarının öncü bir göstergesi olabilir. Alfa-naftil asetat esteraz enzimi bu amaçla kullanılabilecek olan akrozomal enzimlerden biridir. Bu çalışmada, taze ve dondurup-çözdürülen boğa spermatozoonlarındaki alfa-naftil asetat esteraz enziminin pozitivite oranları ve lokalizasyonunun ışık mikroskobuyla belirlenmesi amaçlanmıştır. Gereç ve Yöntem: Çalışmada materyal olarak 7 boğadan alınan sperma örneği kullanıldı. Bu amaçla, taze ve dondurulup-çözdürülen sperma örneklerinden sürme frotiler hazırlandı. Bu frotilerde alfa-naftil asetat esteraz enzimi sitokimyasal metotla demonstre edildi. Hazırlanan preparatlar ışık mikroskobuyla incelenerek alfa-naftil-asetat esteraz pozitivite oranları, enzimin lokalizasyon ve dağılım tarzı belirlendi. Bulgular: Alfa-naftil asetat esteraz enzimi pozitivitesi, spermatozoonun akrozomunda lokalize olan kırmızımsı-kahve renkli reaksiyon ürünü halinde gözlendi. Bazı hücrelerde enzimatik reaksiyon akrozom zarında dar bir band halinde gözlendi. Taze sperma örneklerinin alfa-naftil asetat esteraz pozitivitesinde belirgin bireysel farklılıklar gözlendi. Enzimatik reaksiyon, hücrelerin tamamında aynı şiddette değildi. Bazı hücrelerdeki reaksiyon nispeten daha zayıftı. Düşük spermatozoon vitalitesi ve motilitesi tesbit edilen taze sperma örneklerinin alfa-naftil asetat esteraz enzim pozitivitesi de düşüktü. Dondurup- çözme işlemi, örneklerin alfa-naftil asetat esteraz pozitivitesinde önemli düşüşe yol açtı. Öneri: Akrozomal alfa-naftil asetat esteraz enzimi, boğa spermasının fertilite potansiyelinin ve dondurma işlemine uygunluğunun değerlendirilmesinde ve önemli bir parametre olarak dikkate alınabileceği sonucuna varılmıştır.

Determination of alpha-napthyl acetate esterase activity of native and frozen-thawed bull sperm acrosome

Aim: The assay of the leakage of acrosomal enzymes into seminal plasmamight provide an early and sensitive evidence for membrane damage ocurredduring freezing of semen for artificial insemination. Alpha-naphthyl acetateesterase is one of the acrosomal enzymes that can be used for this purpose.In the the present study, the positivity rates and localization pattern of alphanaphthylacetate esterase in the spermatozoa of both native and frozen-thawedbull semen samples were determined by light microscopy.Materials and Methods: Semen samples of 7 bull were used as material. Smearswere prepared from native and frozen-thawed semen samples. The enzymewas demonstrated by a cytochemical method. Specimens were observedunder ligth microscope. Positivity rates of alpha-naphtyl acetate eseterasepositivespermatozoa, distribution and localization pattern of the enzymaticreaction were determined.Results: The reddish-brown enzymatic reaction was peculiar to spermatozoonacrosome. In some cells, the enzymatic reaction was observed as a narrowband located on acrosomal membrane. The enzymatic reaction intesity wasnot similar in all cells and was weaker in some cells. The reaction productprimarily located in the acrosome. There were large individual differences inalpha-naphthyl acetate esterase positivity rates of the native sperm samples.The native semen samples with low spermatozoon vitality and motility tendedto display lower of alpha-naphthyl acetate esterase positivity rates. Freeze-thawing process significantly decreased alpha-naphthyl acetate esterasepositivity rates of the samples.Conclusion: Acrosomal alpha-naphtyl acetate esterase might be consideredas a significant parameter in the asssessment of availibility for freezing and todetermine fertility potential of the bull semen.

___

  • Allison AC, Hartree EF, 1970. Lysosomal enzymes in the acrosome and their possible role in fertilization. J Reprod Fert, 21, 501-515.
  • Almadaly E, El-Kon I, Heleil B, Fattouh et al., 2012. Methodological factors affecting the results of staining frozen–thawed fertile and subfertile Japanese Black bull spermatozoa for acrosomal status. Anim Reprod Sci, 136, 23-32.
  • Azam M., M. Anzar, and M. Arslan, 1998. Assessment of postthaw semen quality of buffalo and Sahiwal bulls using new semen assays. Pakistan Vet. J., 2: 74-80.
  • Azam M, Anzar M, Arslan M, 1998. Assessment of post-thaw semen quality of buffalo and Sahiwal bulls using new semen assays. Pakistan Vet J, 2, 74-80.
  • Breeuwsma AJ, 1972. The inter-relationship between seminal glutamic-oxaloacetic transaminase and fertility in bulls. Proc. 1th Int Congr Anim Reprod and AI, Munich, pp, 2129-2132.
  • Bucak MN, Baspınar N, Tuncer PB, Çoyan K, Sarıözkan S, Akalın P P, Büyükleblebici S and Küçükgünay S, 2010. Effects of curcumin and dithioerythritol on frozen-thawed bovine semen. Andrologia, 44, 102–109.
  • Chacarov EL, Mollova MV, 1976. A one-act differential stain of the acrosome with active dyes. J Reprod Fert, 48, 245-246.
  • Chinnaiya GP, Ganguli NC, 1980. Acrosomal damage of buffalo spermatozoa during freezing in extenders. Zentralbl Veterinarmed A, 27, 339–342.
  • Çelik İ, Aştı RN, Işık MK, 1994. Farklı yaşlardaki sığırların perifer kan T-lenfosit oranlarında görülen değişiklikler. Hayvancılık Araş Derg, 4, 2, 68-72.
  • Dalcq AM, 1967. Les resherches recentes sur la formation du testicule des mammiferes et sur la cytologie de ses constituants. Bull Acad Rle Med, 3, 1.
  • de Duve C and Wattiaux R, 1966. Function of lysosomes. Ann Rev Physiol, 28, 435-492.
  • Diaz-Perez E, Thomas P, Meizel S, 1988. Evidence suggesting a role for sperm methallo endoprotease activity in penetration of zona-free hamster eggs by human sperm. J Exp Zool., 248, 213–221.
  • Filipovic I, Buddecke E, 1968. Wechselseitige Aktivierung und intrazelluläre lokalisation von hyaluronidase und kathepsin D aus rindermilz. Hoppe-Seyler's Z- physiol Chem, 349, 533.
  • Flesch FM, Gadella BM, 2000. Dynamics of the mammalian sperm membrane in the process of fertilization. Biochim Biophys Acta, 1469, 197-235.
  • Foulkes JA, Whatson PA, 1975. Hyaluronidase activity in seminal plasma as a method of assessing bull sperm integrity. J Reprod, 43, 449-353.
  • Ganguli NC, Kakar SS, 1980. On the leakage of acrosomal hyaluronidase from the spermatozoa of the buffalo (Bubalus bubalis.). Reprod Nutr Dev, 20,3A, 593-599.
  • Gould SF, Bernstein, MH, 1973. The localization of bovine sperm hyaluronidases. Differentiation, 3, 1-3, 123-132.
  • Hartree EF, Srivastava PN, 1965. The chemical composition of the acrosomes of ram spermatozoa. J Reprod Fert, 9, 47- 60.
  • Holt WV, North RD, 1991. Cryopreservation, actin localization and thermotropic phase transitions in ram sperm. J Reprod Fertil, 91, 451-461.
  • Horvat A, Touster O, 1968. On the lysosomal occurrence and the properties of the neuraminidase of rat liver and of Ehrlich ascites tumor cells. J Biol Chem, 25, 243, 16, 4380- 4390.
  • Januškauskas A and Žilinskas H, 2002. Bull semen evaluation post-thaw and relation of semen characteristics to bull’s fertility. Veterinarija Or Zootech T, 17, 39, 1-9.
  • Jin Q-S, Kamata2 M, Garcia del E. Del Sazl and Seguch H, 1995. Ultracytochemical study of trimetaphosphatase activity during acrosomal formation in the mouse testis. Histol Histopathol, 10, 681-689.
  • Kadirvel G, Periasamy S, Kumar S, 2012. Effect of cryopreservation on apoptotic-like events and its relationship with cryocapacitation of Buffalo (Bubalus bubalis) sperm. Reprod Domest Anim, 47, 143-150.
  • Kakar SS & Anand SR, 1984. Acrosomal damage and enzyme leakage during freeze preservation of buffalo spermatozoa. Indian J Exp Biol, 22, 5-10.
  • Kumar D, Kumar P, Singh P, Yadav SP, Yadav PS, 2016. Assessment of sperm damages during different stages of cryopreservation in water buffalo by fluorescent probes. Cytotechnol, 68, 451–458.
  • Maiti NK, Saini SS, Sharma SN, 1990. Histochemical studies on chicken peripheral blood lymphocytes. Vet Res Commun, 14, 207-210.
  • Mann T, 1969. The science of reproduction. Nature, 224, 649- 654.
  • Mathur RS, 1971. Histo-enzymological onservations on spermatozoa of inbred strains of mice. J Reprod Fer, 27, 5-11.
  • Medeiros CMO, Forell F, Oliveira ATD, Rodrigues JL, 2002. Current status of sperm cryopreservation: why isn’t it better? Theriogenol, 57, 327-344.
  • McRorie RA, Williams LW, 1974. Biochemistry of mammalian fertilization. Ann Rev Biochem, 43, 777-803.
  • Quinn PJ & White IG, 1968. Distribution of adenosine triphosphatase activity in ram and bull spermatozoa. J Reprod Fert, 15, 449-452.
  • Reinauer H, Brügelmann J, Kurz W & Hollmann S, 1968. Zur subzellulären lokalisationder phospholipasen in der milz der ratte. Hoppe-Seyler's-Physiol Chem, 349, 1191-1200.
  • Rowden G, 1967. Lysosomal aryl sulphatase in mouse kidney and liver. Nature, London, 215, 1283-1284.
  • Seguchi H, Kobayashi T, Okada T, Zhang et al., 1992. Biochemical and cytochemical study of trimetaphosphatase activity in mammalian tissues. Acta Histochem Cytochem, 25, 53-59.
  • Sellinger OZ, Beaufay H, Jacques P, Doyen, & de Duve C, 1960. Tissue fractionation studies. 15. Intracellular distribution and properties of /WV-acetylglucosaminidase and ßgalactosidase in rat liver. Biochem J, 74, 450-456.
  • Srivastava PN, Adams CE, Hartree EF, 1965. Enzymic action of acrosomal preparations on the rabbit ovum in vitro. J Reprod Fert, 10, 61-67.
  • Tulsiani DR, Abou-Haila A, Loeser CR, Pereira BM, 1998. The biological and functional significance of the sperm acrosome and acrosomal enzymes in mammalian fertilization. Exp Cell Res, 240, 151-164.
  • Wislocki GB, 1950. Cytochemical reactions of human spermatozoa and seminal plasma. Anat Rec, 108, 645-661.
  • Yang CH, 1972. Sperm acrosomal enzymes involved in fertilization. MS thesis. Univ Georgia, Athens, 116 pp.
  • Yu Y, Xu W, Yi YJ, Sutovsky P, Oko R, 2006. The extracellular protein coat of the inner acrosomal membrane is involved in zona pellucida binding and penetration during fertilization: characterization of its most prominent polypeptide (IAM38). Dev Biol, 290, 32-43.
  • Zeller EA & Joel C, 1941. Über das Vorkommen der cholinesterase, der mono-und-diaminoxydase in sperma und prostata, und über die beeinflussung der spermien beweglichkeit durch ferment inhibitoren. Helv Chim Acta, 24,1, 968-976.
Eurasian Journal of Veterinary Sciences-Cover
  • ISSN: 1309-6958
  • Yayın Aralığı: Yılda 4 Sayı
  • Yayıncı: Selçuk Üniversitesi Veteriner Fakültesi
Sayıdaki Diğer Makaleler

Konya ve Karaman bölgesinde halk elinde yetiştirilen Kıl keçilerinin süt ve döl verimi

Mehmet Emin TEKİN, Mehmet ARLI, Şahin ÖZTÜRK, Murat ÖĞEÇ

Damızlık bıldırcın (Coturnix coturnix japonica) içme sularına farklı aromatik bitkilere ait esansiyel yağların ilavesinin performans ve bazı kan parametreleri üzerine etkisi

Özlem Durna AYDIN

Aşım sezonunda östrüsleri senkronize edilen İvesi ırkı koyunlarda aşım sonrası fluniksin meglumin uygulamasının dölverimi üzerine etkisi

Muhammed ALLABBAN, Hüseyin ERDEM

Köpeklerde Rhipicephalus’a (sp) karşı Peganum harmala ve Glaucium flavum alkaloidinin in vitro akarisit aktivitesi

Rosa KEBBİ, Omar BESSEBOUA, Mohamed NAİT MOULOUD, Abdelhanine AYAD

Holstein ırkı ineklerde target breeding ve presynch-ovsynch senkronizasyon yöntemlerinin postpartum ilk tohumlamada gebe kalma oranı üzerine etkisi

Hasan ALKAN, Kübra KARAKAŞ ALKAN

Taze ve dondurulup-çözdürülen boğa sperm akrozomlarının alfa-naftil aseteat esteraz aktivitelerinin belirlenmesi

Ülkü Nur CANBOLAT, İlhami ÇELİK, Rukiye ERDOĞAN

Propofol ve karanfil yağının Jack Dempsey balıklarının (Rocio octofasciata) taşınmasında sedatif olarak karşılaştırmalı etkinliği

Tuba Özge YAŞAR, Çetin YAĞCILAR, Mehmet YARDIMCI

Farklı dağılım ve varyansların homojenliği koşulları altında ANCOVA'nın sağlamlığı

Can ATEŞ, Özlem KAYMAZ, Mustafa Agah TEKİNDAL, Beyza DOĞANAY ERDOĞAN

Erzurum’da tüketime sunulan tavuk etlerinde Listeria spp.’nin araştırılması

Mustafa ATASEVER, Emre KAYA

Farklı oranda aspir yağı (Chartamus tinctorius L.) ilavesinin japon bıldırcınlarında (Coturnix coturnix Japonica) glandula uropygialis üzerine etkisinin morfometrik, histometrik ve histomorfolojik olarak incelenmesi

Gülşah GÜNGÖREN, Faruk BOZKAYA, Kürşat FİLİKÇİ, Bestami YILMAZ, İsmail DEMİRCİOĞLU