Sığırlarda Pasteurella multocida ve Mannheimia haemolytica kaynaklı pnömonilerin patolojik, sitolojik, mikrobiyolojik ve moleküler olarak araştırılması

Amaç: Sığır yetiştiriciliğinde Pasteurella multocida ve Mannheimia haemolytica’nın sebep olduğu pnömoniler yol açtıkları ekonomik kayıplar nedeniyle oldukça önemlidir. Bu çalışmada mikrobiyolojik yöntemler ve real time PCR ile P. multocida ve M. haemolytica'nın neden olduğu belirlenen pnömonili sığır akciğerlerinde ve nasal swaplarda belirlenen sitolojik bulguların ortaya konulması amaçlanmıştır. Gereç ve Yöntem: Bu çalışmada sığır pnömonik akciğerlerinde bakteriyolojik kültür, histopatolojik, sitolojik ve real time PCR teknikleri kullanıldı. Real time PCR ile M.haemolytica ve P.multocida belirlenen pnömoni olgularında sitolojik bulgular değerlendirilerek diğer pnömoni tipleri ile karşılaştırıldı. Bulgular: Burun swap ve akciğer örneklerinden hazırlanan smear örneklerinde sitolojik bulgular kaydedildi. Pnömoni belirtisi görülen 233 sığırın 23’ünde (%9.87) P.multocida ve M. haemolytica’ya bağlı pnömoni belirlendi. Fibrinli bronkopnömonili hayvanlar içerisinde yaklaşık % 51,11’inde P.multocida ve M.haemolytica olduğu belirlendi. Bu olguların sitolojik incelemelerinde diğer pnömonilere kıyasla nötrofil lökosit sayısının arttığı tespit edildi. Nötrofillere ilave olarak; P.multocida ve M.haemolytica belirlenemeyen diğer fibrinli bronkopnömoni olgularıyla karşılaştırıldığında bu olgularda lenfosit ve silialı epitel hücrelerin sayısının önemli derecede arttığı belirlendi. Öneri: Çalışmanın sonuçları Pasteurella multocida ve Mannheimia haemolytica’nın sebep olduğu pnömonilerin sığır solunum sistemi enfeksiyonlarının önemli bir bölümünü oluşturduğunu ve fibrinli pnömoniye neden olduğunu göstermiştir. Elde edilen sitoloji sonuçları pnömonilerin tiplendirilmesinde klinik olarak değerlendirilebilir.

Pathological, cytological, microbiological and molecular investigations of pneumonia caused by Pasteurella multocida and Mannheimia haemolytica

Aim: In cattle breeding, pneumonia caused by Pasteurella multocida andMannheimia haemolytica is very important due to the economic losses caused. In this study, it was aimed to reveal cytological findings in pneumonicbovine lungs and nasal swaps due to P. multocida and M. haemolytica determined by microbiological methods and real time PCR.Materials and Methods: In this study, bacteriological culture, histopathological, cytological and real time PCR techniques were used in pneumonic bovine lungs. Cytological findings were evaluated in cases of pneumonia whoseetiological agent was identified as M.haemolytica and P.multocida by realtime PCR and were compared with other pneumonia typesResults: Cytological findings were recorded in smear samples prepared fromnasal swaps and lung samples. Pneumonia caused by P. multocida and M.haemolytica was detected in 23 cases (9.87%) out of 233 cattle with signsof pneumonia. P.multocida and M.haemolytica were determined to occur inabout 51.11% of the animals with fibrinous pneumonia. During the cytological examination of these cases, neutrophils were seen increased in numbercompared to the other types of pneumonia. In addition to neutrophils, thenumber of lymphocytes and ciliated epithelial cells was also significantly increased in these cases compared to the other fibrinous pneumonia cases inwhich P.multocida ve M.haemolytica was not detected.Conclusion: The results of this study showed that P. multocida and M. haemolytica cause a fibrinous type of pneumonia and constitute an importantportion of cattle respiratory diseases. Clinically, cytology results may be evaluated for the typing of pneumonia.

PDF

___

Akıllı H, Yoldaş A, Özmen M, Topçuoğlu H, et al., 2012. Çukurova yöresinde yığırlarda görülen granülomatöz pnömonilerin etiyolojisinin histopatolojik ve moleküler yöntemlerle belirlenmesi. AVKAE Derg, 2,1-6.
Alexander BH, MacVean DW, Salman MD, 1989. Risk factors for lower respiratory tract disease in a cohort of feedlot cattle. J Am Vet Med Assoc, 195, 207-211.
Altun S, 2015. Pnömonili Sığır akciğerlerinde Mycoplasma bovis enfeksiyonunun patolojik ve moleküler yöntemlerle araştırılması. Sağlık Bilimleri Enstitüsü, Veteriner Patoloji Anabilim Dalı, Doktara Tezi, Erzurum: Atatürk Üniversitesi, 2015.
Amrine DE, White BJ, Larson RL, Mosier DA, 2014. Pulmonary lesions and clinical disease response to Mannheimia haemolytica challenge 10 days following administration of tildipirosin or tulathromycin. J Anim Sci, 92(1), 311–319.
Arda M, Minbay A, Leloğlu N, Aydın N, et al., 1999. Özel Mikrobiyoloji, In:Pasteurellaceae Familyası , Ed;Aydın N, Fifth edition, Medisan, Ankara, Türkiye, pp:64-74.
Batmaz H. Pasteurella pneumonileri ve ekonomik önemi. Sığırların Solunum Sistemi Hastalıkları Sempozyumu, Bursa, 2006, Uludağ Üniversitesi, Veteriner Fakültesi, TÜBİTAK: 58-64.
Caswell JL and Williams KJ, 2007. Respiratory system. In: Jubb (ed). Kennedy and Palmer’s Pathology of Domestic Animals, 5st ed.523-629.
Collins CH, Layne PM, Grange JM, 1995. Microbiological Methods, In: Actinobacillus, Pasteurella, Yersinia, Cardiobacterium and Francisella, Seventh Edition, Butterworth- Heinemann Ltd, London, Great Britain, 343-349.
Corney BG, DialloI S, Wright LL, Hewitson GR, et al., 2007. Pasteurella multocida detection by 5′ Taq nuclease assay: A new tool foruse in diagnosing fowl cholera. J Microbiol Methods, 69, 376–380.
Çiftçi MK, Ortatatlı M, Erer H, Hatipoğlu F, et al., 2015. Veteriner Sistemik Patoloji, 1. Cilt. Selçuk Üniversitesi Basımevi, Konya, Türkiye, pp;157.
Erbaş G, Kaya O, 2008. Aydın ve İzmir bölgesindeki sığırlardan Pasteurella multocida’nın izolasyonu, tiplendirilmesi ve antibiyotiklere duyarlılıkları. Bornova Vet Kont Araşt Enst Derg, 44, 7-14.
Frank GH, 1986. The role of Pasteurella haemolytica in the bovine respiratory disease complex. Vet Med, 12, 841-846.
Guenther S, Schierack P, Grobbel M, Lübke-Becker A, et al.,2008. Real-time PCR assay for the detection of species of the genus Mannheimia. J Microbiol Methods, 75, 75–80.
Gündüz K, Erganiş O, 1998. Pnömonili sığır akciğerlerinden izole edilen Pasteurella haemolytica suşlarının biyotiplendirilmesi ve serotiplendirilmesi. Veterinarium, 9, 11-19.
Haritani M, Nakazawa M, Hashimoto K, Narita M, et al., 1990. Immunoperoxidase evaluation of the relationship between necrotic lesions and causative bacteria in lungs of calves with naturally acquired pneumonia. Am. J Vet Res, 12, 1975-1979.
Hazıroğlu R, Erdeğer J, Gülbahar MY, Kul O,1997. Association of Pasteurella haemolytica, Pasteurella multocida and Haemophilus somnus with pneumonia in calves. Dtsch Tierarztl Wschr, 104, 125-164.
Kamp EM, Bokken GCAM, Vermeulen TMM, de Jong MF, et al,.1996. A specific and sensitive PCR assay suitable for large-scale detection of toxigenic Pasteurella multocida in nasal and tonsillar swabs specimens of pigs. J Vet Diagn Invest, 8, 304-309.
Kılıç A, Muz A, 2004. Pnömonili sığır akciğerlerinden bakteri izolasyonları ve izole Pasteurella’ların polimeraz zincir reaksiyonu ile saptanması, Türk Anim Sci, 28, 217-223.
Lichtensteiger CA, Steenbergen SM, Lee RM, Polson DD, et al.,1996. PCR analysis for toxigenic Pasteurella multocida. J Clin Microbiol, 34, 3035-3039.
Lopez A, Martinson AS., 2017. Pathologic Basis of Veterinay Disease, In: Respiratory System, Mediastinum and Pleurea, Sixth Edition, St.Louis, Missouri, China, pp: 471-560.
Maity B, Deb P,1991. Seasonal variation in incidence of pneumonia in cattle. Ind J Anim Sci, 61, 261-262.
Mekkes DR, Feberwee A, 2005. Real-time polymerase chain reaction for the qualitative and quantitative detection of Mycoplasma gallisepticum. Avian Pathol, 34, 348-354.
Oruç E, Tuzcu M, 2010. Veteriner Sitoloji. Adana, Türkiye: Net Kopya Basımevi.
Oruç E, 2011. Cytopathologic studies in sheep pneumonias. Eurasian J Vet Sci, 1, 67 71.
Özen H, Karaman M, Şahin M, Özcan K, 2009. PCR Detection of Mycoplasma bovis, M. dispar, M. bovirhinis and M. mycoides subsp. mycoides (small colony type) and investigations of pathological findings in pneumonic cattle. Kafkas Üniv Vet Fak Derg,15, 125-133.
Özer H, 1985. Besi danalarında exudative pnömonilerin yayılışı. Elazığ Bölgesi Vet Hek Odası Derg, 3, 63-70.
Öztürk G, Özcan C, Kalender H, 1996. Elazığ Et Balık Kurumu mezbahasında kesilen sığırlarda rastlanan pnömonilerin patolojik ve bakteriyolojik olarak incelenmesi. Pendik Vet Mikrobiyol Derg, 27, 163-174.
Probert WS, Schrader KN, Khuong NY, Bystrom SL,et al., 2004. Real-time multiplex PCR assay for detection of Brucella spp., B. abortus, and B. melitensis. J Clin Microbiol, 42, 1290-1293.
Quinn PJ, Markey BK, Leonard FC, Fitzpatrick ES, et al., 2016. Concise Review of Veterinary Microbiology, 2nd ed. WileyBlackwell, UK.
Van Leenen K, Van Driessche L, De Cremer L, Gille L, et al., 2019. Factors associated with lung cytology as obtained by non-endoscopic broncho-alveolar lavage in group-housed calves. BMC Vet Res, 15, 167.
Weiss DJ, Bauer MC, Whiteley LO, Maheswaran SK, et al., 1991. Changes in blood and bronchoalveoler lavage fluid components in calves with experimentally induced pneumonic pasteurellasis. Am. J. Vet. Res, 52(2), 337-344.
Yates WDG, 1982. A review of infectious bovine rhinotracheitis, shipping fever pneumonia and viral-bacterial synergism in respiratory disease of cattle. Can J Comp Med, 46, 225-263.