Süperovulasyon Öncesi GnRH ve Kısa Süreli Progesteron Uygulamalarının Sığır Embriyolarının Sayısı ve Kalitesi Üzerine Etkisi

Bu çalışmada, insan koryonik gonadotropini (hCG) ve prostaglandin F2-alfa (PGF2α) ile östruslarının indüklenmesinden sonra gonadotropin salgılatıcı hormon (GnRH) ve kısa süreli progesteron uygulamasını takiben süperovulasyon uygulanan Holştayn donörler (modifiye protokol) ile klasik süperovulasyon uygulanan Holştayn donörlerden elde edilen embriyoların kalitesi ve sayısı karşılaştırıldı. Araştırmada, üç yaşlı 20 adet Holştayn ırkı inek iki eşit gruba ayrıldı. Grup I’ deki hayvanlara 11 gün ara ile iki defa kloprostenol enjeksiyonu yapıldı ve östrus sonrası takip eden siklusun 9. gününden itibaren, günde iki kez dört gün süresince azalan dozlarda FSH enjeksiyonları uygulandı. Beşinci ve 6. FSH enjeksiyonları ile birlikte kloprostenol uygulamaları yapıldı.Grup II’ deki hayvanlara ise siklusun herhangi bir döneminde hCG uygulaması yapıldı. Bundan 7 gün sonra kloprostenol enjeksiyonu yapıldı. Östrus sonrası devam eden siklusun 7. günü buserelin enjeksiyonu yapıldı. PRID siklusun 9. günü yerleştirildi ve siklusun 14. günü çıkarıldı (6. FSH enjeksiyonu sırasında). Grup II’de FSH ve kloprostenol uygulamaları siklusun 12-15. günlerinde Grup I’ deki gibi yapıldı. Tüm inekler son FSH enjeksiyonundan sonra 12 saat ara ile üç kez tohumlandı. İkinci suni tohumlama ile eş zamanlı olarak buserelin enjeksiyonu yapıldı. İkinci tohumlama sonrası 7. günde embriyolar toplandı, morfolojilerine bağlı kalite ve gelişim evreleri değerlendirildi. Bu çalışmada donör başına sırasıyla Grup I ve Grup II’ de toplam CL (8.50±1.90 ve 9.40±1.52), toplam oosit ve embriyo (7.5±2.03 ve 7.0±1.61), toplam embriyo (6.00±2.00 ve 6.10±1.47), transfer edilebilir embriyo ı (5.50±1.84 ve 5.50±1.59), dejenere embriyo (0.50±0.22 ve 0.60±0.40) ve unfertilize oosit sayıları (1.60±0.97 ve 0.90±0.31) tespit edildi. Sonuç olarak, iki protokol arasında embriyo sayısı ve kalitesi açısından istatistiksel olarak fark bulunamadı (P >0,05). Böylece çok sayıda donöre östrus takibine gerek duyulmadan sabit zamanlı süperovulasyona olanak sağladığından dolayı klasik süperovulasyon uygulamalarına alternatif bir yöntem olabileceği sonucuna varılmıştır.

The Effects of Pre-Superovulation GnRH and Short-Term Progesterone Administrations on the Quantity and Quality of Bovine Embryos*

In this study we compared the quantity and quality of embryos recovered from Holstein donors superovulated after the induction of oestrus by human chorionic gonadotropin (hCG) and prostaglandin F2-alfa (PGF2α), followed by gonadotropin releasing hormone (GnRH) and short-term progesterone treatment (a modified protocol) and Holstein donors superovulated with a conventional protocol. In research, 3-year-old Holstein cows (n=20) were assigned into two equal groups. In Group Ithe animals received two injections of cloprostenol 11 days apart, and follicle stimulating hormone (FSH)was injected twice daily for 4 days at decreasing doses starting from the 9th day after oestrus. Cloprostenol was co-administered with the 5th and 6th FSH injections. In Group II, the animals were treated with hCG at unknown stage of the oestrus cycle, and were given cloprostenol 7 days later. Buserelin was injected on the 7th day after oestrus, and PRID was inserted on9th day after oestrus and was removed on day 14 (6th FSH injection).In Group II, FSH was administered on days 12-15 of the cycle, in a way identical to that of Group I, including the two cloprostenol .All cows were artificially inseminated three times at 12-hour intervals after last FSH injection. Buserelin was injected concurrently with the second artificial insemination. Embryos were collected on the 7th day after the second insemination embryo quality and developmental stage were evaluated based on their morphology. In the present study, total CL (8.50±1.90 and 9.40±1.52), total ova and embryo (7.5±2.03 and 7.0±1.61), total embryo (6.00±2.00 and 6.10±1.47), transferable embryo (5.50±1.84 and 5.50±1.59), degenerate embryos (0.50±0.22 and 0.60±0.40) and unfertilized ova (1.60±0.97 and 0.90±0.31) numbers were determined per donor in Groups I and II respectively. There was no statistically significant difference between the two protocols in terms of embryo quality and quantity (P>0.05). Thus, it was concluded that the tested protocol could be used as an alternative to conventional one as it allows fixedtime embryo collection in multiple donors with no need for oestrus detection.

___

  • Adams GP, Nasser LF, Bó GA, Garcia A, Del Campo MR, Mapletoft RJ. Superovulatory response of ovarian follicles of wave 1 versus wave 2 in heifers. Theriogenology 1994; 42: 1103-13.
  • Alkemade S, Murphy B, Mapletoft R. Superovulation in the cow: Effects of biological activity of gonadotropins. Proceedings of the Twelfth Annual Meeting of the American Embryo Transfer Association, Portland, Maine. 1993: 1-19.
  • Andrade JC, Oliveira MA, Lima PF, Guido SI, Bartolomeu CC, Teorio Filho F, Pina VM, Iunes-Souza TC, Paula NR, Freitas JC. The use of steroid hormones in superovulation of Neloro donors at different stages of oestrous cycle. Anim Reprod Sci 2003; 77: 117-25.
  • Baracaldo MI, Martinez M, Adams GP, Mapletoft RJ. Superovulatory response following transvaginal follicle ablation in cattle. Theriogenology 2000; 53: 1239-50.
  • Barros CM, Barcelos ACZ, Gouvea LM, Meneghel M, Barcelos DS, Barcelos LN, Trinca LA. Improvement of a superovulatory protocol in Nelore cows: Replacing the last two doses of pFSH by eCG. Reprod Fertil Dev 2008; 20:152.
  • Baruselli PS, Sá Filho M, Martins CM, Nasser LF, Nogueira MFG, Barros MC, Bó GA .Superovulation and embryo transfer in Bos indicus cattle. Theriogenology 2006; 65: 77-88.
  • Bó G, Baruselli P, Chesta P, Martins C. The timing of ovulation and insemination schedules in superstimulated cattle. Theriogenology 2006; 65: 89-101.
  • Bó GA, Moreno D, Cutaia L, Baruselli PS. Hormonal manipulation of the estrous cycle in bovine embryo donors and recipients. Acta Sci Vet 2004; 32: 1-22.
  • Bó GA, Mapletoft RJ. Recent advances in the control of follicular development and superovulation protocols in cattle. Twenty Eighth Annual Meeting AETE. September 7–8, Saint Malo-France.
  • Bó GA, Carballo Guerrero D, Adams GP. Alternative approaches to setting up donor cows for superovulation. Theriogenology 2008; 69: 81-7.
  • Bo´ GA, Adams GP, Pierson RA, Mapletoft RJ. Exogenous control of follicular wave emergence in cattle. Theriogenology 1995; 43: 31-40.
  • Bülbül B, Kırbaş M, Köse M, Dursun Ş. Investigation of superovulation response in Brown Swiss cows after synchronization using progesterone and oestradiol valerate. Kafkas Univ Vet Fak Derg 2010; 16(3): 463-8.
  • Caccia M, Tríbulo R, Tríbulo H, Bó GA. Effect of eCG pretreatment on superovulatory response in CIDRB treated beef cattle. Theriogenology 2000; 53: 495. Carballo Guerrero D, Tríbulo A, Tríbulo R, Tríbulo H, Bó GA. Superovulatory response in beef donors treated during the first follicular wave or four days after progesterone and estradiol administration. Reprod Fertil Dev 2010; 22: 358.
  • Colazo MG, Gordon MB, Rajamahendran R, Mapletoft RJ, Ambrose DJ. Pregnancy rates to timed artificial insemination in dairy cows treated with gonadotropin releasing hormone or porcine luteinizing hormone. Theriogenology 2009; 72: 262-70.
  • Dieleman S, Bevers M, Vos P, de Loos F. PMSG/anti-PMSG in cattle: A simple and efficient superovulatory treatment. Theriogenology 1993; 39: 25-42.
  • García GA, Tribulo A, Yapura J, Singh J, Mapletoft RJ. Lengthening the super stimulatory treatment protocol increases ovarian response and number of transferable embryos in beef cows. Theriogenology 2012; 78(2): 353-60.
  • Goulding D, Williams DH, Duffy P, Boland MP, Roche JF. Superovulation in heifers given FSH initiated either at day 2 or day10 of the estrous cycle. Theriogenology 1990; 34: 767-78.
  • Kaim M, Bloch A, Wolfenson D, Braw-Tal R, Rosenberg M, Voet H, Forman Yl. Effects of GnRH administered to cows at the onset of estrus on timing of ovulation, endocrine responses, and conception. J Dairy Sci 2003; 86: 2012-21.
  • Kanagawa H, Shimohira I, Saitoh N. Manual of Bovine Embryo Transfer. National Livestock Breeding Center MAFF. JICA-Japan, 1995.
  • Kara U, Bekyürek T. The effect of double PGF2α administrations applied to donor before oestrus with synchronized CIDR on the number and quality of obtained embryos during embryo transfer in cattle. J Health Sci 2017; 26 (3): 204-10.
  • Kaymaz M. Yardımcı üreme teknikleri. In: Semacan A, Kaymaz M, Fındık M, Rişvanlı A, Köker A, eds. Çiftlik Hayvanlarında Doğum ve Jinekoloji. İkinci Baskı. Malatya: Medipres, 2015; s. 695-811.
  • Kim HI, Son DS, Yeon H, Choi SH, Park SB, Ryu IS, Suh GH, Lee DW, Lee HJ, Yoon JT. Effect of dominant follicle removal before superstimulation on follicular growth, ovulation and embryo production in Holstein cows. Theriogenology 2001; 55: 937-45.
  • Köse M, Dursun Ş, Bülbül B, Kırbaş M. İsviçre Esmeri ineklerde FSH ile süperovulasyon ve embriyo transferi çalışmaları. Hay Araş Derg 2006; 16 (1): 1-6.
  • Lovie M, García A, Hackett A, Mapletoft RJ. The effect of dose schedule and route of administration on superovulatory response to folltropin in Holstein cows. Theriogenology 1994; 41: 241.
  • Macmillan KL, Thatcher WW. Effect of an agonist of gonadotropin-releasing hormone on ovarian follicles in cattle. Biol Reprod 1991; 45: 883-89.
  • Mapletoft RJ, Steward KB, Adams GP. Recent advances in superovulation in cattle. Reprod Nutr Dev 2002; 42(6): 601-11.
  • Martinez MF, Adams GP, Bergfelt D, Kastelic JP, Mapletoft RJ. Effect of LH or GnRH on the dominant follicle of the first follicular wave in heifers. Anim Reprod Sci 1999; 57: 23-33.
  • Mikel-Jenson A, Greve T, Madej A, Edqvist L. Endocrine profiles and embryo quality in the PMSG-PGF2α-treated cow. Theriogenology 1982; 18: 33-4.
  • Mikkola M, Hasler JF, Taponen J. Factors affecting embryo production in superovulated Bos taurus cattle. Reprod Fertil Dev 2020; 32: 104-24.
  • Moor R, Kruip T, Green D. Intraovarian control of folliculogenesis: Limits to superovulation? Theriogenology 1984; 21: 103-16.
  • Nasser L, Adams GP, Bó GA, Mapletoft RJ. Ovarian superstimulatory response relative to follicular wave emergence in heifers. Theriogenology 1993; 40: 713-24.
  • Pursley JR, Mee MO, Wiltbank MC. Synchronization of ovulation in dairy cows using PGF2α and GnRH. Theriogenology 1995; 44: 915-23.
  • Robertson I, Nelson RE. Certification and identification of embryos. Stringfellow DA, Givens MD, eds. In: Manual of The International Embryo Transfer Society. Forth Edition. Champaign: International Embryo Transfer Society 2010; 86-105.
  • Sağırkaya H. Sığırlarda embryo transfer uygulaması ve Türkiye açısından önemi. Uludağ Üniv Vet Fak Derg 2009; 28 (2):11-9.
  • Saumande J, Chupin D, Mariana J, Ortavant R, Mauleon P. Factors affecting the variability of ovulation rates after PMSG stimulation. Sreenan JM, ed. In: Control of Reproduction in the Cow. The Hague: Martinus Nijhoff, 1978; p.195-224.
  • Schams D, Menzer D, Schalenberger E, Hoffman B, Hahn J, Hahn R. Some studies on the pregnant mare serum gonadotropin (PMSG) and on endocrine responses after application for superovulation in cattle. Sreenan JM, ed. In: Control of Reproduction in the Cow. The Hague: Martinus Nijhoff, 1978; p.122-42.
  • Taşdemir U, Karaşahin T, Satılmış M, Kızıl SH, Kaymaz M. Various FSH administration on superovulatory response and embryo yield in Anatolian Black Heifers. Kocatepe Vet J 2016; 9(4):322-26.
  • Wock J, Lyle L, Hockett M. Effect of gonadotropin-releasing hormone compared with estradiol-17β at the beginning of a superstimulation protocol on superovulatory response and embryo quality. Reprod Fertil Dev 2008; 20: 228.
Erciyes Üniversitesi Veteriner Fakültesi Dergisi-Cover
  • ISSN: 1304-7280
  • Yayın Aralığı: Yılda 3 Sayı
  • Başlangıç: 2004
  • Yayıncı: Erciyes Üniv. Veteriner Fak.
Sayıdaki Diğer Makaleler

İyonize Radyasyonun Karaciğer ve Böbrek Dokusu Üzerine Etkisi

Münevver BARAN, Esra BALCIOĞLU, Oğuz Galip YILDIZ, Gözde Özge ÖNDER, Özge GÖKTEPE, Arzu YAY

Bir Kıl Keçisinde Nöronal Lipofusinozis

Ahmet AYDOĞAN, Hamdi AVCI, Erkmen Tuğrul EPİKMEN, Sümbül Serap BİRİNCİOĞLU

Nadir Bir Olgu Sunumu: Bir Van Kedisinde Prolapsus Uteri

Yaşar AKAR, Yunus Emre ATAY

Kantitatif RT-PCR (RT-qPCR) ile MikroRNA (miRNA) Ekspresyon Profillemesi

Özgecan KORKMAZ AĞAOĞLU, Özge SİDEKLİ

Veteriner Fitoterapi ve Etnoveteriner Hekimlikte de Kullanılan Thymbra spicata L., Rosmarinus officinalis L. ve Laurus nobilis L. Bitkilerinin Kimyasal İçeriklerinin Belirlenmesi

Musa TÜRKMEN, İbrahim Ozan TEKELİ, Mustafa YİPEL, Aysun İLHAN, Erdinç TÜRK, Fatma Ceren KIRGIZ, Sara Büşra EMİROĞLU

Süperovulasyon Öncesi GnRH ve Kısa Süreli Progesteron Uygulamalarının Sığır Embriyolarının Sayısı ve Kalitesi Üzerine Etkisi

Uğur KARA, Tayfur BEKYÜREK

Türkiye’de Yetiştirilen Holştayn Melezi Sığırlarda BLAD ve FXID Hastalıklarının Araştırılması

Esma Gamze AKSEL, Bilal AKYÜZ, Fadime DALDABAN, Korhan ARSLAN, Hasan Hüseyin KEÇELİ

Travmatik Kuşlarda Oküler Lezyonlar ve Nörolojik Bulguları: 114 Olgunun Retrospektif Değerlendirilmesi

Aynur DEMIR, Kübra GERBAGA OZSEMIR

Süt İnekleri Rasyonlarına Mısır Silajı Yerine Farklı Düzeylerde Katılan Patates Posası Silajının Süt Verimi, Süt Bileşenleri ve Rumen Uçucu Yağ Asitleri

Mehmet Akif KARSLI, Hasan Hüseyin ŞENYÜZ

Acil Veteriner Hekimliğinde Ultrasonografik Muayene Yöntemleri

Ali BUMİN, Özlem ŞENGÖZ ŞİRİN, Mehti FİDAN