Aslıhan DEMİRCAN, Uğur ARSLAN, Hatice TÜRK DAĞI, Duygu FINDIK, Salih MAÇİN

Toksoplasmosis şüpheli hastalarda Toksoplasma gondii seropozitifliğinin ve IgG avidite test sonuçlarının değerlendirilmesi

Giriş: Toxoplasma gondii, Apicomplexa filumuna ait zorunlu bir hücre içi protozoondur. T. gondii, yaşam döngüsü iki evreden oluşur. Yaşam döngüsünün seksüel evresi evcil ve vahşi kedilerde ortaya çıkarken, aseksüel evresi ise herhangi bir memelide ortaya çıkabilir. İnsanlarda T. gondii’ye bağlı enfeksiyonlar, ookist içeren kedi dışkısı ile kontamine yiyeceklerin pişmemiş veya az pişmiş yenmesi ile meydana gelmektedir. T. gondii enfeksiyonları genellikle asemptomatiktir. Hastanın bağışıklık durumuna ve oküler hastalık veya konjenital toksoplazmozis gibi klinik durumuna bağlı olarak değişik belirti ve semptomlara da neden olabilir. Amaç: Bu çalışmanın amacı, toksoplasmosis şüpheli hastalarda Toxoplasma gondii IgM ve IgG seroprevalansının araştırılmasıdır. Yöntem: Bu çalışmada, toksoplazmozisden şüphelenilen hastalarda Ocak 2013 ile Aralık 2016 tarihleri arasında Selçuk Üniversitesi Tıp Fakültesi Tıbbi Mikrobiyoloji Laboratuvarı'nda toksoplazma antikorlarının seropozitifliği retrospektif olarak değerlendirildi. Anti-T.gondii immünoglobülin M (IgM), immünoglobülin G (IgG) antikorları ve IgG avidite testleri 7051 serum örneğinde VIDAS (BioMérieux, Fransa) kitleri ve Enzim Bağlı Floresans Testi tekniği kullanılarak çalışıldı. Bulgular: 7051 hastada seropozitiflik oranları anti-T. gondii IgM ve IgG antikorları için sırasıyla % 2.44 ve % 29.53'tü. Yüksek avidite oranı 171 hastanın % 78.36’sında saptandı. Kadın ve erkek hastalarda toksoplazma IgM antikorlarının seropozitiflik oranları sırasıyla %2.80 ve 1.14 iken IgG seropozitiflik oranları ise sırasıyla % 34.17 ve % 22.91 idi. Sonuç: Özellikle üreme çağındaki kadınlarda önemli bir sağlık problemi olarak görülen toksoplazmozisin seropozitifliğinin araştırılmasının önemi vurgulanmalıdır. Ayrıca bölgemizde su, gıda ve temizlik açısından hijyen farkındalığının arttırılması ile ilgili önlemler alınmalıdır.

Evaluation of Toxoplasma gondii seropositivity and the results of IgG avidity test of patients with suspected Toxoplasmosis

Introduction: Toxoplasma gondii is an obligate intracellular protozoan belongs to the phylum Apicomplexa. T. gondiihas two parts in lifecycle. While the sexual part of the lifecycle occurs in domestic and wild cats, asexual part occurs inany mammal.Eating undercooked meat containing tissue cysts or drinking water contaminated with oocytes from feline feces causetoxoplasmosis infection. Clinically, infections can go unnoticed or could cause signs and symptoms vary depending onthe immune status of the patient and the clinical setting like ocular disease or congenital toxoplasmosis.Objective: The aim of this study was to investigate the seroprevalance of Toxoplasma gondii IgG and IgM in patientswith suspected toxoplasmosis.Method: In this study, seropositivity of antibodies against T.gondii in patients with suspected toxoplasmosis wasretrospectively evaluated in Medical Microbiology Laboratory of Selcuk University Medical Faculty between January2013 and December 2016. Anti-T. gondii immunoglobulin M (IgM), immunoglobulin G (IgG) antibodies and IgGavidity tests were studied in 7051 serum samples by using the VIDAS (BioMérieux, France) kits and the EnzymeLinked Fluorescence Assay technique.Results: In all 7051 patients, seropositivity rates of anti-T. gondii IgM and IgG antibodies were 2.44 and 29.53 %,respectively. High avidity rate was 78.36 % in 171 patients. Seropositivity rates of toxoplasma IgM antibodies in femaleand male patients were 2.80 and 1.14%, while IgG seropositivity rates were 34.17 and 22.91 %, respectively.Conclusions: The importance of searching the seropositivity of toxoplasmosis, which is still considered as an importanthealth problem in especially reproductive women, must be emphasized. In addition, measures should be taken to raiseawareness of hygiene in our region in terms of water, foods and sanitation.

PDF

___

Tenter AM, Heckeroth AR, Weiss LM. Toxoplasma gondii: from animals to humans. Int J Parasitol, 2000; 30: 1217- 58.
Muqbil NA, Alqubatii MA. Seropositivity of toxoplasmosis among women in Aden city, Yemen. Archives of Biomedical Sciences, 2014; 2: 42-50.
Cook AJ, Gilbert RE, Buffolano W, et al. Sources of toxoplasma infection in pregnant women: European multicentre case-control study. BMJ 2000; 321: 142– 47.
Tian A L, Gu YL, Zhou N, Cong W, Li G X, et al. Seroprevalence of Toxoplasma gondii infection in arthritis patients in eastern China. Infec Dis Poverty 2017; 6, 153.
Remington JS, McLeod R, Thulliez P, Desmonts G. Toxoplasmosis. In: Remington JS, Klein J, eds. Infectious diseases of the fetus and newborn infant, 5th edn. Philadelphia: WB Saunders, 2001; 205–346.
Diza E, Frantzidou F, Souliou E, Arvanitidou M, Gioula G, Antoniadis A. Seroprevalence of Toxoplasma gondii in northern Greece during the last 20 years. Clin Microbiol Infect 2005; 11: 719-23.
Bölük S, Özyurt BC, Girginkardeşler N, Kilimcioğlu AA. Evaluation of Serological Results of Patients with Suspected Toxoplasmosis Admitted to the Medical Parasitology Laboratory of Celal Bayar University Hospital between 2006-2010. Turkiye Parazitol Derg 201236, 137-41.
Aşcı Z, Akgün S. Afyon İlinde Bir Seroloji Laboratuvarına Toxoplasma gondii (T. gondii) Antikorları Araştırılması Amacıyla Başvuran Olgulara Ait Sonuçların Değerlendirilmesi. Turkiye Parazitol Derg 2015; 39, 9-12.
Aycan Ö M, Miman Ö, Atambay M, Karaman Ü, Çelik T et al. A Last Seven- Year Investigation of the Seropositivity of Toxoplasma Gondii in Our Hospital. J Turgut Ozal Med Cent 2008; 15,3:199- 201.
Coelha RA, Kobayashi M, Carvalho LB Jr. Prevalance of IgG antibodies specific to Toxoplasma gondii among blood donors in Recife, Northeast Brazil. Rev Inst Med Trop Sao Paulo 2003; 45: 229- 31. 17.
Jones JL, Kruszon-Moran D, Wilson M, Mc Quillan G, Navin T, McAuley JB. Toxoplasma gondii infection in the United States: seroprevalance and risk factor. Am J of Epidemiol 2001; 154: 357-65.
Alver O, Göral G, Ercan, İ. Investigation of Serological Results of Patients with Suspected Toxoplasmosis Admitted to the ELISA Laboratory of Uludag University Hospital between 2002-2008. Türkiye Parazitol Derg 2014; 38 (3), 141.
Andiappan H, Nissapatorn V, Sawangjaroen N, Htut Nyunt M, Lau YL, et al.. Comparative study on Toxoplasma infection between Malaysian and Myanmar pregnant women. Parasit Vectors 2014; 7: 564.
Sakikawa M, Noda S, Hanaoka M, Nakayama H, Hojo S, Kakinoki S, Nakata M, Yasuda T, Ikenoue T, Kojima T, 2012. Anti- Toxoplasma antibody prevalence, primary infection rate, and risk factors in a study of toxoplasmosis in 4,466 pregnant women in Japan. Clin Vaccine Immunol 19: 365–367.
Tekin A, Deveci Ö, Yula E. The seroprevalence of antibodies against Toxoplasma gondii and Rubella virus among childbearing age women in Mardin province. J Clin Exp Invest 2010; 1(2): 81-5.
van Enter BJ, Lau YL, Ling CL, Watthanaworawit W, Sukthana Y, et al. Seroprevalence of Toxoplasma gondii Infection in Refugee and Migrant Pregnant Women along the Thailand– Myanmar Border. Am J Trop Med hyg 2017;97(1), 232-5.
McLeod R, Kieffer F, Sautter M, Hosten T, Pelloux H. Why prevent, diagnose and treat congenital toxoplasmosis? Mem Inst Oswaldo Cruz. 2009;104:320–44.