Selma KIPÇAK, Aytekin EKİNCİALP, Çeknas ERDİNÇ, Turgay KABAY, Suat ŞENSOY

Tuz Stresinin Farklı Fasulye Genotiplerinde Bazı Besin Elementi İçeriği ile Toplam Antioksidan ve Toplam Fenol İçeriğine Etkisi

Bu çalışmada Van Gölü Havzası’ndan toplanmış olan 20 adet fasulye genotipinde tuz stresinin etkileri belirlenmeye çalışılmıştır. Tuz uygulaması 0 mM, 25 mM ve 50 mM NaCl konsantrasyonu olmak üzere üç şekilde belirlenmiş olup, bitkiler iklim odası koşullarında yetiştirilmiştir. Stresin etkisini belirlemek için antioksidan miktarı, toplam fenol ve bazı besin element içerikleri (P, Mg, Fe, Cu, Mn ve Zn) değerlendirilmiştir. Tuza tolerans bakımından incelenen parametrelerde genotiplerin farklı tepkiler gösterdiği saptanmıştır. Tuz stresi altındaki bitkilerin kontrole göre değişim oranları incelendiğinde, tuz dozunun artmasıyla beraber toplam fenol içeriği ve antioksidan miktarının yüksek oranda azalış gösterdiği, tuz stresinin genotipler üzerinde negatif bir etkiye sahip olduğu belirlenmiştir. Yeşil aksamda her iki tuz dozunda P içeriğinin, 50 mM tuzda Fe içeriğinin arttığı; 25 mM ve 50 mM tuz dozlarında Mg, Cu ve Zn içeriklerinin, 50 mM NaCl uygulamasında ise Mn içeriğinin azaldığı saptanmıştır. Kökte Fe, Mg and Mn içeriklerinin 25 mM ’de azaldığı ve P, Mg, Cu, Mn ve Zn içeriklerinin tuz dozu arttıkça artış gösterdiği belirlenmiştir. Çalışmada kullanılan G9 ve G30 nolu genotiplerin her iki tuz konsantrasyonunda gösterdiği tolerans seviyesinin yüksek olduğu, G31, G49 ve G94 genotiplerinin hem 25 mM hem de 50 mM tuz konsantrasyonlarında hassas oldukları belirlenmiştir.

Anahtar Kelimeler:

Fasulye, NaCl, Toplam antioksidan kapasitesi, Toplam fenol

Effects of Salt Stress on Some Nutrient Content and Total Antioxidant and Total Phenol Content in Different Bean Genotypes

In this study, the effects of salt stress on 20 bean genotypes collected from Lake Van Basin were investigated. The salt application was treated in 0 mM, 25 mM and 50 mM NaCl concentrations, and then the plants were grown in growth chamber conditions. To determine the effect of stress, total antioxidant capacity, total phenolics and some nutrient elements content (P, Mg, Fe, Cu, Mn and Zn) were evaluated. In the parameters examined in terms of tolerance to the salt, the genotypes showed different responses. When the rate of change of the plants response to salt stress according to control was examined, it was determined that with the increase in salt doses, total phenolic and total antioxidant capacity decreased at high rate and salt stress had a negative effect on genotypes. It was found that the contents of P in both doses and Fe at 50 mM were increased in shoot, while the contents of Mg, Cu and Zn at 25 mM and 50 mM, Mn at 50 mM were decreased. In the root, the contents of Fe, Mg and Mn were decreased at 25 mM, and P, Mg, Cu, Mn and Zn contents were detected to increase with the increase in salt doses as well as. The genotypes G9 and G30 showed high levels of tolerance in both salt concentrations and the genotypes G31, G49 and G94 were found to be sensitive to both 25 mM and 50 mM salt concentrations.

Keywords:

Bean, NaCI, Total antioxidant capacity, Total phenolic,

PDF

___

Alam, S.M (1994). Nutrient uptake by plants under stres condition. In: Persaraklı, M. (ed.): Handbook of plant and crop stres. Marcel Dekker, New York. 227-246.Allakhverdiev, S. I., Sakamoto. A., Nishiyama. Y., Inaba. M.,& Murata. N (2000). Ionic and osmotic effects of NaCl-induced inactivation of photosystems I and II in Synechococcus sp. Plant physiology. 123(3). 1047-1056.Aydın, A., Turan, M., Sezen Y (2000). Effect of sodium salts on growth and nutrient uptake of spinach (Spinacia olerecea L) and beans (Phaseolus vulgaris L). International Symposium on Desertification. p:525-530. 13-17 June. Konya-Turkey Benzie, I.E.F., Strain, J.J (1996). The ferric reducing ability of plasma (FRAP) as a measure of ‘‘antioxidant power’’: the FRAP assay. Analytical Biochemistry 239: 70-76.Ellialtıoğlu. Ş (1999). Doku kültürü yoluyla vegetatif çoğaltmada doku kararması sorunu. nedenleri ve çözüm yolları. Biyoteknoloji (Kükem) Dergisi. 24 (1).37–47. Es-Safi. N. E., Kollman. A., Khlifi. S., Ducrot. P. H (2007). Antioxidative effect of compounds isolated from Globularia alypum L. structure–activity relationship. LWT. 40. 1246–1252.Gadallah. M.A.A (1999). Effect of Proline and Glycinebetaine on Vicia faba Responses to Salt Stress. Biologia Plantarum. 42(2):249–257.Gomez. J.M., Hernandez. J.A., Jimenez. A.. Del Rio. L.A., Sevilla. F (1999). Differential response of antioxidative enzymes of chloroplast and mitochondria to long term NaCl stress of pea plants. Free Radic. Res. 31. 11–18.Grattan SR (1993). How plants responds to salts. agricultural salinity and drainage. Hanson. B., Grattan. S. R. and Fulton. A. (Eds.). University of California Irrigation Program. University of California. Davis. pp:3-5. Greenway H., Munns R (1980). Mechanisms of salt tolerance in nonhallophytes. Ann. Rev. Plant Physiol. 31, 149-190. Kıpçak, S., Erdinç, Ç (2016). Determination of salt tolerance levels of common bean (Phaseolus vulgaris L.) genotypes grown in Lake Van Basin. YYU J. Agr. Sci., 26(3), 421-429 (in Turkish).Lauchli A., Grattan S.R (2007). Plant growth and development under salinity stress. M.A. Jenks et al. (eds.), Advances in Molecular Breeding Toward Drought and Salt Tolerant Crops, 1–32. Levitt. J (1972) Responses of Plants to Environmental Stress. Academic Press. New York. 698 pp., Physiological Ecology.Malkoç. M., Aydın. A (2003). Mısır (Zea Mays L.) ve Fasulye (Phaseolus Vulgaris L.)’nin Gelişimi ve Bitki Besin Maddeleri İçeriğine Farklı Tuz Uygulamalarının Etkisi. Atatürk Üniv. Ziraat Fak. Derg. 34 (3). 211-216.Marschner. H (1995). Mineral Nutrition of Higher Plants. Academic Pres. 657- 680.Mohamed. A. A., Aly. A. A (2008). Alterations of some secondary metabolites and enzymes activity by using exogenous antioxidant compound in onion plant grown under seawater salt stress. American-Eurasian Journal of Scientific Research. 3 (2). 139–146.Mugdal. V., Madaan. N., Mudgal. A (2010). Biochemical Mechanisms of Salt Tolerance in Plants. International Journal of Botany. 6 (2). 136-143.Munns, R., Tester, M (2008). Mechanisms of salinity tolerance. Annual Review of Plant Biology, 59: 651–681.Nizamoğlu. M. N.. Nas. S (2010). Meyve ve sebzelerde bulunan fenolik bileşikler; yapıları ve önemleri. Gıda Teknolojileri Elektronik Dergisi. 20–35.Peleg, Z., Walia, H., Blumwald, E (2012). In Plant Biotechnology and Agriculture: Prospects for the 21st Century (Ed: Arie Altman, Paul Michael Hasegawa). Integrating genomics and genetics to accelerate development of drought and salinity tolerant crops. Academic press, Elsevier. p: 271-285.Posmyk. M.M.. Kontek. R.. Janas. K.M (2009). Antioxidant enzymes activity and phenolic compounds content in red cabbage seedlings exposed to copper stress. Ecotoxicology and Environmental Safety. 72. 6–602.Ruiz. M. J.. Rivero. M. R.. Lo´pez-Cantarero. I.. Romero. R (2003). Role of Ca2+ in the metabolism of phenolic compounds in tobacco leaves (Nicotiana tabacum L.). Plant Growth Regulation. 41. 173–177.Swain, T. and Hillis, W.E (1959). The phenolic constituents of Prunus domestica. I.-The quantitative analysis of phenolic constituents. Journal of the Science of Food and Agriculture, 10 (1): 63-68.Turhan. O. Y.. Kızıloğlu. F. T (1999). Toprak Tuzluluğunun Değişik Rhizobium phaseoli İzolatları ile Aşılanan Fasulye (Phaseolus vulgaris L) Çeşit ve Gelişimine Etkisi. GAP. I. Tarım Kongresi. 26-28 Mayıs. S:937-945. Şanlıurfa-TürkiyeTuteja. N (2007). Mechanisms of High Salinity Tolerance in Plants. Methods in Enzymology. 428. 419-438.Yılmaz E, Tuna AL, Bürün B (2011). Bitkilerin tuz stresine karşı geliştirdikleri tolerans stratejileri. C.B.Ü. Fen Bilimleri Dergisi, 7 (1): 47–66