Şerife Evrim ARICI, İbrahim GÜLMEZ, Hasan DEMİREKİN, Hatice ZAHMEKIRAN, İsmail KARACA

Entomopatojen Fusarium subglutinans ın bakla yaprakbiti, Aphis fabae Scopoli (Hemiptera: Aphididae) üzerine etkisi

Bu çalışmada pamuk yaprakbitinden izole edilen entomopatojen fungus Fusarium subglutinansın iklim odası koşullarında yetiştirilen bakla bitkisi üzerindeki Aphis fabae Scop. (Hemiptera: Aphididae)ye karşı biyolojik etkinliği belirlenmiştir. İzolatlara ait 1X10^6, 1X10^7 ve 1X10^8 konidiospor/ml konsantrasyonları hazırlanmış ve yaprak bitlerine uygulanmıştır. Bitkilerden yaprak örnekleri alınarak 7., 10., 12., 14. günlerde sayımlar yapılmış, canlı ve ölü yaprak bitleri kaydedilmiştir. F. subglutinas’a ait iki izolatın üç farklı konsantrasyonuyla 25 0 C’de yapılan biyolojik etkinlik denemesinde yaprak biti oranı açısından önemli farklılıklar saptanmıştır. En yüksek yaprak biti ölüm oranı 1X10^6 konidiospor/ml konsantrasyonunda elde edilmiştir. 1X10^7 ve 1X10^8 konidiospor/ml konsantrasyonları ile yapılan uygulamalarda yaprak biti ölümlerinde fark bulunmamıştır. Bu iki izolat ile yapılan iklim odası koşullarındaki denemede yapılan sayımlarda, uygulamadan 2 hafta sonra yaprak biti popülasyonunun baskı altına alındığı belirlenmiştir.

Anahtar Kelimeler:

Aphis fabae, Fusarium subglutinans, entomopatojen fungus, biyolojik mücadele

Efficiency of entomopathogenic fungus Fusarium subglutinans against Aphis fabae Scopoli(Hemiptera: Aphididae)

In this study, biological effciency of entomopathogenic fungus Fusarium subglutinans isolated from cotton aphid was evaluated against Aphis fabae Scop. (Hemiptera: Aphididae) on bean in climate chamber. Three concentrations of each isolates (1X10^6,1X10^7,1X10^8 conidiaspore/ml) were applied to aphids . Live and dead aphids were recorded from leaf samples in 7th, 10th, 12th, 14th days . Application of three different concentrations of two isolates of F. subglutinans resulted in significant differences in aphid mortality at 25 0 C. The highest mortality rate was calculated for 1X10^6 spore/ml. There were no differences in mortality rate between 1X10^7 and 1X10^8 spore/ml concentration. In climate chamber experiment with these two isolates, aphid population was controlled 2 weeks later after application

Keywords:

Aphis fabae, Fusarium subglutinans, entomopathogenic fungus, biological control,

PDF

___

Anonim 2000. http://www.cine-tarim.com.tr (Erişim tarihi: 15 Mart 2012) Bellows T.S. & T.W. Fisher 1999. Handbook of Biological Control: principles and Applications of Biological. Academic Press, California, USA, 1047 pp.
Bora T. & H. Özaktan 1998. Bitki Hastalıklarıyla Biyolojik Savaş. Prizma Matbaası, İzmir, 205 s.
Dixon A.F.G. & G.W. Hopkins 2010. Aphid biodiversity under environmental change. Chapter: Temperature, Seasonal Development and Distribution of Insects with Particular Reference to Aphids pp.: 127-149.
Erkılıç, L., H. Pala, N. Başpınar & Y. Biçer 1999. Doğu Akdeniz Bölgesi’nde Bazı Yaprakbiti Türlerinde Entomopatojen Fungusların Belirlenmesi. Türkiye 4.Biyolojik Mücadele Kongresi Bildirileri, 26-29 Ocak, 1999, Adana, 623-632.
Fatiha, L., Z. Huang., S.X. Ren & S. Ali 2008. Effect of Verticillium lecanii on biological characteristics and life table of Serangium japonicum (Coleoptera: Coccinellidae), a predator of whiteflies under laboratory conditions. Insect Science, 15 (4): 327–333.
Feng M.G., R.M Nowierski, A.L. Scharen & D.D. Sands 1991. Entomopathogenic fungi (Zygomycotina: Entomophthorales) infecting cereal aphids (Homoptera:Aphididae) in Montana. Pan-Pacific Entomologist, 67 (1): 55–64.
Hall R.A. & B. Papierok 1982. Fungi as biological control agents of arthopods of agricultural and medical importance. Parasitology, 84: 205-240. Khan Z.R., D.G. James, C.A.O. Midega & J.A. Pickett 2008. Chemical ecology and conservation biological control. Biological Control, 45 (2): 210–224. Lacey L.A., R. Frutos, H.K. Kaya & P. Vail 2001. Insect pathogens as biological control agents: do they have a future. Biological Control, 21: 230-248.
Meissle M., C. Pilz & J. Romeis 2009. Susceptibility of Diabrotica virgifera (Coleoptera: Chrysomelidae) to the entomopathogenic fungus Metarhizium anisopliae when feeding on Bacillus thuringiensis cry3bb1-expressing maize. Applied and Environmental Microbiology, 75: 3937–3943.
Mikunthan G. & M. Manjunatha 2008. Impact of habitat manipulation on mycopathogen, Fusarium semitectum to control Scirtothrips dorsalis and Polyphagotarsonemus latus of chilli. BioControl, 53: 403-412.
Satar H. 2004. Entomopatojen fungus Fusarium subglutinans’ın sera koşullarında Aphis gossypii’ ye karşı biyolojik etkinliğinin denenmesi ve biyopreparat olarak kullanılma olanaklarının araştırılması. Doktora tezi, Çukurova Üniversitesi, Fen Bilimleri Enstitüsü, Adana, 96 s.
Satar S., Y. Biçer Gerin & L. Bakırcıoğlu Erkılıç 2000. Entomopatojen fungus Fusarium subglutinans'ın laboratuvar koşullarında bazı yaprakbiti türleri üzerindeki etkileri. Türkive 4. Entomoloji Kongresi, Adana, 317-322.
Starnes R.L., C.L. Liu & P.G. Marrone 1993. History, use, and future of microbial insecticides. American Entomologist, 39: 83-91.
Vua V.H., S. Hongb & K. Kima 2007. Selection of entomopathogenic fungi for aphid control. Journal of Bioscience and Bioengineering, 104 (6): 498–505.
Xu X., Y. Yu & Y. Shi 2011. Evaluation of inert and organic carriers for Verticillium lecanii spore production in solid-state fermentation. Biotechnology Letters, 33 (4): 763-768.
Yücel S., H. Pala, A. Ulubilir & A. Yiğit 1995 Seralarda pamuk beyazsineği (Bemisia tabaci Genn).’ye karşı entomopatojen fungus, Verticillium lecanii’nin etkisi üzerine çalışmalar. VII. Türkiye Fitopatoloji Kongresi, Adana, S: 211-215.