Tutku SOYER, Murat ÇAKMAK, Günnur DİKMEN, Pakize DOĞAN, Salih SOMUNCU, Hülya AKMAN, Şebnem AYVA

Protective effect of selenium on intussusception-induced ischemia/reperfusion intestinal oxidative injury in rats

Amaç: İnvajinasyona bağlı iskemi-peferfüzyon hasarında selenyumun koruyucu etkisini değerlendirmek üzere deneysel bir çalışma yapılmıştır. Yöntem ve gereç: Kırk Wistar albino sıçan dört gruba ayrılmıştır (n = 10). Anestezi sonrası, kontrol grubunda (KG) ileoçekal valvden 20 cm proksimaldeki 2 cm’lik intestinal segment çıkarılmıştır. İnvajinasyon grubu (İG) invajinasyonun ileoçekal valvden 20 cm proksimalde bir stile yardımı ile proksimal intestinal segmentin distale itilmesi ile oluşturulmuştur. Dört saat sonrasında 2 cm’lik intestinal segment çıkarılmıştır. İnvajinasyon-redüksiyon grubunda (IRG) invajinasyon redükte edildikten 4 saat sonra 2 cm’lik segment çıkartılmıştır. Selenyum grubu (SG) 10 mL % 0,9’luk NaCl solusyonu içerisinde 0,2 mg kg -1 selenium redüksiyondan 20 dakika once intraperitoneal olarak verilerek oluşturulmuş ve 4 saat sonrasında intestinal segment çıkarılmıştır. İntestinal yapılar histopatolojik evrelendirme ve oksidatif hasar belirteçleri bakımından değerlendirilmiştir.Bulgular: Gruplardaki histopatolojik değerlendirme istatistiksel bir fark olmadığını göstermektedir (P > 0,05). Katalaz değerleri tüm gruplarda azalmıştır. SG’da katalaz seviyeleri İRG’yle karşılaştırıldığında azalma anlamlı bulunmuştur (P < 0,05). Glutatyon peroksidaz (GSH-Px) ve superoksit dismutaz (SOD) aktiviteleri de İG ve İRG’de istatistiksel olarak anlamlı azalmıştır (P < 0,05). KG ve SG grupları, GSH-Px ve SOD aktiviteleri bakımından istatistiksel anlamlı fark göstermemektedir (P > 0,05). Malonildialdehid (MDA) seviyelerinde KG ve SG grupları arasında istatistiksel anlamlı bir fark bulunamamıştır. MDA seviyeleri İG and İRG gruplarında KG grubuna göre anlamlı olarak artmıştır (P < 0,05). Sonuç: Selenyum invajinasyonda oluşan oksidatif hasarı antioksidan enzim aktivitesini arttırarak önlesede, benzer etkiler histopatolojik bulgularda izlenmemiştir.

Sıçanlarda invajinasyona bağlı intestinal iskemi reperfüzyon hasarında selenyumun koruyucu etkisi

Aim: To evaluate the protective effect of selenium on intestinal ischemia-reperfusion injury due to intussusception.Materials and methods: Forty Wistar albino rats were allocated to 4 equal groups (n = 10). After anesthetization, 2 cm of intestinal segment, 20 cm proximal to the ileocecal valve, was removed in the control group (CG). In the intussusception group (ING), intussusception was performed 20 cm proximal to the ileocecal valve by pushing the proximal intestinal segment distally with a stylet, and 2 cm of intestinal segment was removed 4 h later. Intussusception was reduced and a 2 cm segment was removed after another 4 h period in the intussusception-reduction group (IRG). The selenium group (SG) received 0.2 mg kg -1 of selenium in 10 mL of 0.9% NaCl solution intraperitoneally 20 min before reduction and segments were removed 4 h thereafter. Intestinal tissues were evaluated for histopathological grades and oxidative injury markers.Results: Histopathologic evaluations among the 4 groups did not reveal a significant difference (P > 0.05). Although catalase activity was decreased in all groups, increased activity was found in SG compared with IRG (P < 0.05). GSH-Px and SOD activities were also found to have decreased in ING and IRG (P < 0.05). CG and SG had no difference in GSH- Px and SOD activities (P > 0.05). Malondialdehyde (MDA) activities did not differ between CG and SG, but the MDA level was increased in ING and IRG when compared with CG (P < 0.05). Conclusion: Although selenium prevents oxidative injury by increasing the antioxidant enzyme activity in experimental intussusception, similar effects on histopathologic findings were not detected.

PDF

___

1. Stevenson RJ. Non-neonatal intestinal obstruction in children. Surg Clin North Am 1985; 65: 1217-34.
2. Young DG. Intussusception. In: O’Neil JA, Rowe MI, Grosfeld JL, Fonkalsrud EW, Coran AG, editors. Pediatric Surgery. 5th ed. St. Louis, Missouri: Mosby; 1998. p.1185-98.
3. Carden DL, Granger DN. Pathophysiology of ischemia reperfusion injury. J Pathol 2000; 190: 255-66.
4. Öztürk C, Avlan D, Cinel I, Cinel L, Unlü A, Camdeviren H et al. Selenium pretreatment prevents bacterial translocation in rat intestinal ischemia/reperfusion model. Pharmacol Res 2002; 46: 171-5.
5. Naziroğlu M. New molecular mechanisms on the activation of TRPM2 channels by oxidative stress and ADP-ribose. Neurochem Res 2007; 32: 1990-2001.
6. Rayman MP. he importance of selenium to human health. Lancet 2000; 356: 233-41.
7. Kutluhan S, Naziroğlu M, Celik O, Yılmaz M. Efects of selenium and topiramate on lipid peroxidation and antioxidant vitamin levels in blood of pentylenetetrazol-induced epileptic rats. Biol Trace Elem Res 2009; 29: 181-9.
8. Parnham MJ, Graf E. Seleno-organic compounds and the therapy of hydroperoxide-linked pathological conditions. Biochem Pharmacol 1987; 36: 3095-102.
9. Micheils C, Raes M, Toussaint O, Remacle J. Importance of Se- glutathione peroxidase, catalase and Cu/Zn-SOD for cell survival against oxidative stress. Free Rad Biol Med 1994; 17: 235-48.
10. Lowry OH, Rosebrough NJ, Farr AL, Randall RJ. Protein measurement with the folin phenol reagent. J Biol Chem 1951; 193: 265-75.
11. Chiu CJ, McArdle AH, Brown R, Scott HJ, Gurd FN. Intestinal mucosal lesion in low low states. Arc Surg 1997; 101: 478-83.
12. Aebi H. Catalase in vitro. Methods Enzymol 1984; 105: 121-6.
13. Sun Y, Oberley LW, Li Y. A simple method for clinical assay of superoxide dismutase. Clin Chem 1988; 34: 497-500.
14. Flohe L, Gunzler WA. Assays of glutathione peroxidase. Methods Enzymol 1984; 105: 114-21.
15. Drapper HH, Hadley M. Malondialdehyde determination as index of lipid peroxidation. Methods Enzymol 1990; 186: 421- 31.
16. Wang P, Lui B, Ou H, Tong L, Yang J, Tang C. Nitric oxide synthase/nitric oxide pathway mediates intussusception pathogenesis in rats. Chin Med J 1999; 112: 1016-9.
17. Türkyılmaz Z, Karabulut R, Gülen Ş, Demiroğulları B, Özen OI, Sönmez K et al. Role of nitric oxide and cyclooxygenase pathway in lipopolysaccharide-induced intussusception. Peditr Surg Int 2004; 20: 598-601.
18. Spiro DM, Schmidt JM, Arnold DH, Cartner SC, Yağmurlu A. Antibiotic induced mesenteric adenopathy in an intussusception mouse model. J Pediatr Gastroenterol Nutr 2005; 41: 39-43.
19. Kökçam İ, Naziroğlu M. Efects of vitamin E supplementation on blood antioxidants levels in patients with Behçet’s disease. Clin Biochem 2002; 35: 633-9.
20. Somuncu S, Çakmak M, Dikmen G, Akman H, Kaya M. Ischemia reperfusion injury of rabbit ovary and protective efect of trapidil: an experimental study. Pediatr Surg Int 2008; 24: 315-8.
21. Gupta R, Singh M, Sharma A. Neuroprotective efect of antioxidants on ischemia and reperfusion induced cerebral injury. Pharmacol Res 2003; 46: 171-7.