Farklı Sıcaklık ve pH’ın Rotala rotundifolia (Buch-Ham. ex Roxb) Koehne’nın Aksillar Sürgün Rejenerasyonu Üzerine Etkisi

Bitki doku kültürü çalışmalarında sıcaklık ve pH önemli faktörlerdir. Bu faktörlerin optimizasyonu çoklu bitki üretimi için önemlidir. Bu çalışmada, farklı sıcaklık (15-30°C) ve pH (5.5-6.6) koşullarında Rotala rotundifolia (Buch-Ham. ex Roxb) Koehne’nın etkili ve hızlı üretimi için bir optimizasyon çalışması amaçlanmıştır. Sıcaklık çalışmalarında, ilk sürgün rejenerasyonları 25°C’de 12. günde gözlenmiştir. En yüksek sürgün rejenerasyon frekansları (%100) 20 ve 25°C’de elde edilmiştir. Maksimum eksplant başına sürgün sayısı (23.38 adet) ve en uzun sürgünler (1.74 cm) 25°C’de elde edilmiştir. Farklı pH uygulamalarında, en yüksek sürgün rejenerasyon oranları (%100) pH 5.5 ve 6’da tespit edilmiştir. En fazla eksplant başına sürgün sayısı (20.44 adet) ve en uzun sürgünler (1.71 cm) pH 6’da kaydedilmiştir. Eksplantlar genellikle yüksek pH değerlerinde daha uzun sürgünler vermiştir. Kültür ortamında üretilen sürgünler köklendirildikten sonra akvaryum ortamına başarıyla alıştırılmıştır. Sonuç olarak, R. rotundifolia’nın in vitro üretimi için optimum değerler 25°C sıcaklık ve pH 6 olarak bulunmuştur.

The Effect of Different Temperature and pH on Axillary Shoot Regeneration of Rotala rotundifolia (Buch-Ham. ex Roxb) Koehne

Temperature and pH are important factors in plant tissue culture studies. The optimization of these factors is important for multiple production of plants. In this study, an optimization study for the efficient and rapid production of Rotala rotundifolia (Buch-Ham. ex Roxb) Koehne in different temperature (15-30°C) and pH (5.5-6.6) conditions was aimed. In temperature studies, the first shoot regeneration was observed at 25°C on the 12th day. The highest shoot regeneration frequencies (100%) were obtained at 20 and 25°C. The maximum number of shoots per explant (23.38) and the longest shoots (1.74 cm) were obtained at 25 °C. In different pH applications, the highest shoot regeneration rate (100%) was determined at pH 5.5 and 6. The maximum number of shoots per explant (20.44) and the longest shoot (1.71 cm) were recorded at pH 6. The explants usually gave longer shoots at higher pH values. After the shoots produced in the culture medium were rooted, they were successfully used in the aquarium environment. As a result, the optimum values for in vitro production of R. rotundifolia were found to be 25°C temperature and pH 6.0.

___

  • Almeselmani, M., Deshmukh, P.S., Sairam, R.K., Kushwaha, S.R., Singh, T.P. 2006. Protective role of antioxidant enzymes under high temperature stress. Plant Science, 171: 382-388.
  • Benahmed, A., Harfi, B., Benbelkacem, I., Daas, A., Laouer, H., Belkhiri, A. 2018. In vitro propagated Mentha rotundifolia (L.) Huds and antioxidant activity of its essential oil. Current Issues in Pharmacy and Medical Sciences, 31(4): 204-208.
  • Bhatia, P., Ashwath, N. 2005. Effect of medium pH on shoot regeneration from the cotyledonary explants of Tomato. Biotechnology, 4: 7-10.
  • Breusegem, F.V.E., Vranova, J.F., Dat, D.I. 2001. The role of active oxygen species in plant signal transduction, Plant Science, 161: 405-414.
  • Brown, D.C.W., Leung, D.W.M., Thorpe, T.A. 1979. Osmotic requirement for shoot formation in tobacco callus. Physiologia Plantarum, 46: 36-41.
  • Dagla, H.R. 2012. Plant tissue culture. Resonance, 17(8): 759-767.
  • Dogan, M. 2019. Multiple shoot regeneration via ındirect organogenesis from shoot tip and nodal meristem explants of Ceratophyllum demersum L. Journal of Animal and Plant Sciences, 29: 568-577.
  • Ebrahim, M. K., Ibrahim, I. A. 2000. Influence of medium solidification and pH value on in vitro propagation of Maranta leuconeura cv. Kerchoviana. Scientia Horticulturae, 86(3): 211-221.
  • Emsen, B., Dogan, M. 2018. Evaluation of antioxidant activity of in vitro propagated medicinal Ceratophyllum demersum L. extracts. Acta Scientiarum Polonorum-Hortorum Cultus, 17: 23-33.
  • García-Gonzáles, R., Quiroz, K., Carrasco, B., Caligari, P. 2010. Plant tissue culture: Current status, opportunities and challenges. Ciencia e Investigación Agraria, 37(3): 5-30.
  • Haining, Q., Graham, S., Gilbert, M.G. Lythraceae. In: Wu, Z. Y., P. H. Raven, D.Y. Hong, eds. 2007. Flora of China. Vol. 13 (Clusiaceae through Araliaceae). Science Press, Beijing, and Missouri Botanical Garden Press, St. Louis.
  • Ho, Y.L., Huang, S.S., Deng, J.S., Lin, Y.H., Chang, Y.S., Huang, G.J. 2012. In vitro antioxidant properties and total phenolic contents of wetland medicinal plants in Taiwan. Botanical Studies, 53(1): 55-66.
  • Hussain, A., Qarshi, I.A., Nazir, H., Ullah, I. 2012. Plant Tissue Culture: Current Status and Opportunities. In Recent Advances in Plant In Vitro Culture. IntechOpen.
  • Jalil, M., Annuar, M.S.M., Tan, B.C., Khalid, N. 2015. Effects of Selected Physicochemical Parameters on Zerumbone Production of Zingiber zerumbet Smith Cell Suspension Culture. Evidence-based complementary and alternative medicine, 2015.
  • Lager, I.D.A., Andreasson, O., Dunbar, T.L., Andreasson, E., Escobar, M.A., Rasmusson, A.G. 2010. Changes in external pH rapidly alter plant gene expression and modulate auxin and elicitor responses. Plant, Cell and Environment, 33(9): 1513-1528.
  • Murashige, T., Skoog, F. 1962. A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures. Physiological Plantarum, 15: 473-497.
  • Myster, J., Moe, R. 1995. Effect of diurnal temperature alternations on plant morphology in some greenhouse crops-a mini review. Scientia Horticulturae, 62(4): 205-215.
  • Ostrolucka, M.G., Libiakova, G., Ondruskova, E., Gajdosova A., 2004. In vitro propagation of Vaccinium species. Acta Universitatis Latviensis, 670: 7-15.
  • Owens, P.R., Wilding, L.P., Lee, L.M., Herbert, B.E. 2005. Evaluation of platinum electrodes and three electrode potential standards to determine electrode quality. Soil Science Society of America Journal, 69(5): 1541-1550.
  • Rai, M.K., Shekhawat, N.S., Harish, Gupta, A.K., Phulwaria, M., Ram K., Jaiswal U. 2011. The role of abscisic acid in plant tissue culture: a review of recent progress. Plant Cell Tiss Organ Cult., 106: 179. Razdan, M.K. 2003. Introduction to plant tissue culture. Science Publishers.
  • Smith, D.L., Krikorlan, A.D. 1990. Somatic pre-embryo production from excised wounded zygotic carrot embryos on hormone-free medium. Evaluation of the effects of pH ethylene activated charcoal. Plant Cell Reports, 9: 34-37.
  • Snedecor, G.W., Cochran, W.G. 1997. Statistical Methods. The Iowa State University Press, Iowa, USA. Tabachnik, L., Kester, D.E. 1977. Shoot culture for almond and almond peach hybrid clones in vitro. Horticultural Science, 12: 545-547.
  • Takebe, I., Labib, C., Melchers, G. 1971. Regeneration of whole plants from isolated mesophyll protoplasts of tobacco. Naturwissenschaften, 58: 318-320.
  • Tan, Q.G., Cai, X.H., Feng, T., Luo, X.D. 2009. Megastigmane-type compounds from Rotala rotundifolia. Chinese Journal of Natural Medicines, 7: 187-189.
  • Waraich, E.A., Ahmad, R., Halim, A., Aziz, T. 2012. Alleviation of temperature stress by nutrient management in crop plants: a review. Journal of Soil Science and Plant Nutrition, 12(2): 221-244.
  • Williams, J.G.K., A.R. Kubelk, K.J. Livak, J.A. Rafalski, S.V. Tingey. 1990. DNA polymorphisms amplified by arbitrary primers are useful as genetic markers. Nucleic Acids Research, 18: 6531-6535.
  • Xu, P.L., Guo, Y.K., Bai, J.G., Shang, L., Wang, X.J. 2008. Effects of long-term chilling on ultrastructure and antioxidant activity in leaves of two cucumber cultivars under low light. Physiologia Plantarum, 132: 467-478.
  • Zhang, L.J., Yeh, S.F., Yu, Y.T., Kuo, L.M.Y., Kuo, Y.H. 2011. Antioxidative flavonol glucuronides and AntiHBsAg flavonol from Rotala rotundifolia. Journal of Traditional and Complementary Medicine, 1: 57-63.
Türk Tarım ve Doğa Bilimleri Dergisi-Cover
  • ISSN: 2148-3647
  • Yayın Aralığı: Yılda 4 Sayı
  • Başlangıç: 2014
  • Yayıncı: Prof. Dr. Mevlüt AKÇURA
Sayıdaki Diğer Makaleler

Etlik Piliçlerde Bazı Civciv Kalite Ölçütlerinin Besi Performansı Üzerine Etkileri

Turgay ŞENGÜL, Mustafa ERÜKÇÜ

Durum Buğdayın Başaklanma Dönemine ait Bazı Fizyolojik Ölçümlerin Verim ve Kalite Özellikleriyle İlişkilerinin Belirlenmesi

FERHAT KIZILGEÇİ, MEHMET YILDIRIM

Denizli ve Manisa İlleri Kekik (Origanum onites) Fideliklerinde Bulunan Yabancı Ot Türleri, Yoğunlukları ve Rastlanma Sıklıkları

Yıldız SOKAT

Effects on Growth Performance of Some Chick Quality Measurements in Broilers

TURGAY ŞENGÜL, Mustafa ERÜKÇÜ

Diyarbakır İli Ergani İlçesinde Bulunan Bazı Meraların Ot Verimi, Ot Kalitesi ve Botanik Kompozisyonunun Belirlenmesia

Adem Doğan KARAHAN, VEYSEL SARUHAN

Ordu Topraklarının Potasyum Durumu ve Potasyum Fiksasyonunun Belirlenmesi

Menekşenur KARAOLUK ESENÇAYI, KÜRŞAT KORKMAZ

Tarımsal Uygulamalarda Üreticilerin Çevre Algısının Analizi: Edirne İli Örneği

Başak AYDIN, Ozan ÖZTÜRK, Selçuk ÖZER, Ülvi̇ye ÇEBİ, Erol ÖZKAN

Mısır (Zea mays L.) Bitkisinde Farklı Fenolojik Dönemlerdeki Su Kısıntılarının Bazı Tarımsal Özellikler Üzerine Etkileri

Erdal GÖNÜLAL, SÜLEYMAN SOYLU

Diyarbakır İli Ergani İlçesinde Bulunan Bazı Meraların Ot Verimi, Ot Kalitesi ve Botanik Kompozisyonunun Belirlenmesi

Adem Doğan KARAHAN, Veysel SARUHAN

Yerel Mercimek Genotiplerinin Verime Etki Eden Bazı Karakterleri İçin Genotipik ve Çevresel Etkilerin Belirlenmesi

UFUK KARADAVUT, ÖMER SÖZEN