Amaç: Bu çalışmada tavşanlarda hipoksemik koşullarda gerçekleştirilen akut hemorajik şok modelinde HES 130/0.4 veya modifiye jelatin solüsyonu gibi kolloid solüsyonlarının antioksidatif ve antiinflamatuvar etkileri araştırıldı.Çalışma planı: Yirmi bir adet Wistar albino cinsi Yeni Zelanda tavşanı rastlantısal olarak üç gruba ayrıldı; HES 130/0.4 solüsyonu (n=7 Voluven®, HES grubu), Jelatin solüsyonu (n=7 Gelafusine®, GEL grubu) ve kontrol grubu (n=7 %0.9 sodyum klorür). Hemorajik şok modeli, hipoksemik koşullar altında sol karotis arterinden 30 dakikada tahmin edilen kan hacminin %40’ını çekecek şekilde uygulandı. Hipovolemi dönemi 10 dakika süresince sağlandı. Hipovelemik dönem sonunda çekilen kan hacmi kan resüsitasyon sıvısı sodyum klorür hariç (sodyum klorür solüsyonu 1 birim hacim kaybı için 3 birim olacak şekilde) jugüler ven yoluyla 30 dakika süresince verildi. Tavşanlar hemoraji ve sıvı resüsitasyonu sırasında trakeostomi ile oda havasında spontan solunum yapmaktaydı (hipoksemik resusitasyon). Malondialdehit (MDA), glutatyon (GSH), interlökin (IL)-6, IL-10, tümör nekroz faktör alfa (TNF)-a konsantrasyonları hemorajik şok öncesi ve sıvı resüsitasyonu sonrasında tüm kan örneklerinde ölçüldü.Bulgular: Kontrol grubunda diğer gruplara göre MDA, TNF-a, IL-6 değerleri en yüksek, buna karşılık GSH ve IL-10 değerleri en düşüktü. Grup HES’de grup GEL’e göre MDA, TNF-a ve IL-6 değerleri daha düşük fakat IL-10 ve GSH düzeyleri ise daha yüksekti (p<0.05).Sonuç: Hemorajik şok için hipoksemik koşullarda HES 130/0.4 (Voluven®) ile yapılan sıvı resüsitasyonunda modifiye jelatin solüsyonuna (Gelafusine®) göre oksidatif stres (MDA) ve proinflamatuvar belirteçler (TNF-a ve IL-6) seviyeleri azalırken, antioksidatif (GSH) ve antiinflamatuvar belirteçler (IL-10) düzeylerinde ise artış olduğu saptandı. Gelecekteki çalışmalarda farklı deneysel modeller ve farklı solüsyonlar kullanılarak daha kesin ve mükemmel sonuçlara ulaşılabilinecektir.
Background: The aim of this study was to investigate antioxidative effects and antiinflammatory properties of colloid fluids such as HES 130/0.4 or modified gelatin solution in rabbits during resuscitation of acute hemorrhagic shock under hypoxemic conditions.Methods: Twenty-one New Zealand Wistar albino rabbits were randomly allocated to one of the three experimental groups: HES 130/0.4 solution (n=7, Voluven®, group HES), gelatine solution (n=7, Gelafusine®, group GEL) and control (n=7, sodium chloride 0.9%, Saline group). Hemorrhagic shock was induced by controlled blood withdrawal (40% of total estimated blood volume) from the left carotid artery over 30 minute under hypoxemic conditions. The period of hypovolemia was maintained for 10 minute All resuscitation solutions, except saline solution (3 volumes of saline/1 volume of blood loss for saline), were infused as withdrawn blood volume via the jugular vein over 30 minute after the hypovolemic period under hypoxemic conditions. Rabbits were breathing spontaneously via tracheotomy in room air during hemorrhage and fluid resuscitation periods (hypoxemic resuscitation). Malondialdehyde (MDA), glutathione (GSH), interleukin (IL)-6, IL-10 and tumor necrosis factor alpha (TNF)-a concentrations were measured before hemorrhagic shock and after fluid resuscitation in all blood samples.Results: The values of the MDA, TNF-a, IL-6 levels were the highest, whereas IL-10 and GSH levels were the lowest in the Saline group compared to the other groups. The MDA, TNF-a, IL-6 levels were lower, but the IL-10 and GSH levels were higher in group HES compared to group GEL (p<0.05).Conclusion: Hypoxemic resuscitation with HES 130/0.4 solution (Voluven®) for hemorrhagic shock decreases oxidative stress (MDA) and proinflammatory mediators (TNF-a, IL-6), but increases antioxidative (GSH) and antiinflammatory markers (IL-10) when compared to modified gelatine solution (Gelafusine®). Further studies must be carried out with experimental models and different solutions to reach an ultimate conclusion. "> [PDF] The antioxidative and antiinflammatory effects of hypoxemic resuscitation with HES 130/0.4 and modified gelatin solution on acute hemorrhagic shock in rabbits | [PDF] Akut hemorajik şok oluşturulan tavşanlarda HES 130/0.4 ve modifiye jelatin solüsyonları ile yapılan hipoksemik resüsitasyonun antioksidatif ve antiinflamatuvar etkileri Amaç: Bu çalışmada tavşanlarda hipoksemik koşullarda gerçekleştirilen akut hemorajik şok modelinde HES 130/0.4 veya modifiye jelatin solüsyonu gibi kolloid solüsyonlarının antioksidatif ve antiinflamatuvar etkileri araştırıldı.Çalışma planı: Yirmi bir adet Wistar albino cinsi Yeni Zelanda tavşanı rastlantısal olarak üç gruba ayrıldı; HES 130/0.4 solüsyonu (n=7 Voluven®, HES grubu), Jelatin solüsyonu (n=7 Gelafusine®, GEL grubu) ve kontrol grubu (n=7 %0.9 sodyum klorür). Hemorajik şok modeli, hipoksemik koşullar altında sol karotis arterinden 30 dakikada tahmin edilen kan hacminin %40’ını çekecek şekilde uygulandı. Hipovolemi dönemi 10 dakika süresince sağlandı. Hipovelemik dönem sonunda çekilen kan hacmi kan resüsitasyon sıvısı sodyum klorür hariç (sodyum klorür solüsyonu 1 birim hacim kaybı için 3 birim olacak şekilde) jugüler ven yoluyla 30 dakika süresince verildi. Tavşanlar hemoraji ve sıvı resüsitasyonu sırasında trakeostomi ile oda havasında spontan solunum yapmaktaydı (hipoksemik resusitasyon). Malondialdehit (MDA), glutatyon (GSH), interlökin (IL)-6, IL-10, tümör nekroz faktör alfa (TNF)-a konsantrasyonları hemorajik şok öncesi ve sıvı resüsitasyonu sonrasında tüm kan örneklerinde ölçüldü.Bulgular: Kontrol grubunda diğer gruplara göre MDA, TNF-a, IL-6 değerleri en yüksek, buna karşılık GSH ve IL-10 değerleri en düşüktü. Grup HES’de grup GEL’e göre MDA, TNF-a ve IL-6 değerleri daha düşük fakat IL-10 ve GSH düzeyleri ise daha yüksekti (p<0.05).Sonuç: Hemorajik şok için hipoksemik koşullarda HES 130/0.4 (Voluven®) ile yapılan sıvı resüsitasyonunda modifiye jelatin solüsyonuna (Gelafusine®) göre oksidatif stres (MDA) ve proinflamatuvar belirteçler (TNF-a ve IL-6) seviyeleri azalırken, antioksidatif (GSH) ve antiinflamatuvar belirteçler (IL-10) düzeylerinde ise artış olduğu saptandı. Gelecekteki çalışmalarda farklı deneysel modeller ve farklı solüsyonlar kullanılarak daha kesin ve mükemmel sonuçlara ulaşılabilinecektir. "> Amaç: Bu çalışmada tavşanlarda hipoksemik koşullarda gerçekleştirilen akut hemorajik şok modelinde HES 130/0.4 veya modifiye jelatin solüsyonu gibi kolloid solüsyonlarının antioksidatif ve antiinflamatuvar etkileri araştırıldı.Çalışma planı: Yirmi bir adet Wistar albino cinsi Yeni Zelanda tavşanı rastlantısal olarak üç gruba ayrıldı; HES 130/0.4 solüsyonu (n=7 Voluven®, HES grubu), Jelatin solüsyonu (n=7 Gelafusine®, GEL grubu) ve kontrol grubu (n=7 %0.9 sodyum klorür). Hemorajik şok modeli, hipoksemik koşullar altında sol karotis arterinden 30 dakikada tahmin edilen kan hacminin %40’ını çekecek şekilde uygulandı. Hipovolemi dönemi 10 dakika süresince sağlandı. Hipovelemik dönem sonunda çekilen kan hacmi kan resüsitasyon sıvısı sodyum klorür hariç (sodyum klorür solüsyonu 1 birim hacim kaybı için 3 birim olacak şekilde) jugüler ven yoluyla 30 dakika süresince verildi. Tavşanlar hemoraji ve sıvı resüsitasyonu sırasında trakeostomi ile oda havasında spontan solunum yapmaktaydı (hipoksemik resusitasyon). Malondialdehit (MDA), glutatyon (GSH), interlökin (IL)-6, IL-10, tümör nekroz faktör alfa (TNF)-a konsantrasyonları hemorajik şok öncesi ve sıvı resüsitasyonu sonrasında tüm kan örneklerinde ölçüldü.Bulgular: Kontrol grubunda diğer gruplara göre MDA, TNF-a, IL-6 değerleri en yüksek, buna karşılık GSH ve IL-10 değerleri en düşüktü. Grup HES’de grup GEL’e göre MDA, TNF-a ve IL-6 değerleri daha düşük fakat IL-10 ve GSH düzeyleri ise daha yüksekti (p<0.05).Sonuç: Hemorajik şok için hipoksemik koşullarda HES 130/0.4 (Voluven®) ile yapılan sıvı resüsitasyonunda modifiye jelatin solüsyonuna (Gelafusine®) göre oksidatif stres (MDA) ve proinflamatuvar belirteçler (TNF-a ve IL-6) seviyeleri azalırken, antioksidatif (GSH) ve antiinflamatuvar belirteçler (IL-10) düzeylerinde ise artış olduğu saptandı. Gelecekteki çalışmalarda farklı deneysel modeller ve farklı solüsyonlar kullanılarak daha kesin ve mükemmel sonuçlara ulaşılabilinecektir.
Background: The aim of this study was to investigate antioxidative effects and antiinflammatory properties of colloid fluids such as HES 130/0.4 or modified gelatin solution in rabbits during resuscitation of acute hemorrhagic shock under hypoxemic conditions.Methods: Twenty-one New Zealand Wistar albino rabbits were randomly allocated to one of the three experimental groups: HES 130/0.4 solution (n=7, Voluven®, group HES), gelatine solution (n=7, Gelafusine®, group GEL) and control (n=7, sodium chloride 0.9%, Saline group). Hemorrhagic shock was induced by controlled blood withdrawal (40% of total estimated blood volume) from the left carotid artery over 30 minute under hypoxemic conditions. The period of hypovolemia was maintained for 10 minute All resuscitation solutions, except saline solution (3 volumes of saline/1 volume of blood loss for saline), were infused as withdrawn blood volume via the jugular vein over 30 minute after the hypovolemic period under hypoxemic conditions. Rabbits were breathing spontaneously via tracheotomy in room air during hemorrhage and fluid resuscitation periods (hypoxemic resuscitation). Malondialdehyde (MDA), glutathione (GSH), interleukin (IL)-6, IL-10 and tumor necrosis factor alpha (TNF)-a concentrations were measured before hemorrhagic shock and after fluid resuscitation in all blood samples.Results: The values of the MDA, TNF-a, IL-6 levels were the highest, whereas IL-10 and GSH levels were the lowest in the Saline group compared to the other groups. The MDA, TNF-a, IL-6 levels were lower, but the IL-10 and GSH levels were higher in group HES compared to group GEL (p<0.05).Conclusion: Hypoxemic resuscitation with HES 130/0.4 solution (Voluven®) for hemorrhagic shock decreases oxidative stress (MDA) and proinflammatory mediators (TNF-a, IL-6), but increases antioxidative (GSH) and antiinflammatory markers (IL-10) when compared to modified gelatine solution (Gelafusine®). Further studies must be carried out with experimental models and different solutions to reach an ultimate conclusion. ">

The antioxidative and antiinflammatory effects of hypoxemic resuscitation with HES 130/0.4 and modified gelatin solution on acute hemorrhagic shock in rabbits

Amaç: Bu çalışmada tavşanlarda hipoksemik koşullarda gerçekleştirilen akut hemorajik şok modelinde HES 130/0.4 veya modifiye jelatin solüsyonu gibi kolloid solüsyonlarının antioksidatif ve antiinflamatuvar etkileri araştırıldı.Çalışma planı: Yirmi bir adet Wistar albino cinsi Yeni Zelanda tavşanı rastlantısal olarak üç gruba ayrıldı; HES 130/0.4 solüsyonu (n=7 Voluven®, HES grubu), Jelatin solüsyonu (n=7 Gelafusine®, GEL grubu) ve kontrol grubu (n=7 %0.9 sodyum klorür). Hemorajik şok modeli, hipoksemik koşullar altında sol karotis arterinden 30 dakikada tahmin edilen kan hacminin %40’ını çekecek şekilde uygulandı. Hipovolemi dönemi 10 dakika süresince sağlandı. Hipovelemik dönem sonunda çekilen kan hacmi kan resüsitasyon sıvısı sodyum klorür hariç (sodyum klorür solüsyonu 1 birim hacim kaybı için 3 birim olacak şekilde) jugüler ven yoluyla 30 dakika süresince verildi. Tavşanlar hemoraji ve sıvı resüsitasyonu sırasında trakeostomi ile oda havasında spontan solunum yapmaktaydı (hipoksemik resusitasyon). Malondialdehit (MDA), glutatyon (GSH), interlökin (IL)-6, IL-10, tümör nekroz faktör alfa (TNF)-a konsantrasyonları hemorajik şok öncesi ve sıvı resüsitasyonu sonrasında tüm kan örneklerinde ölçüldü.Bulgular: Kontrol grubunda diğer gruplara göre MDA, TNF-a, IL-6 değerleri en yüksek, buna karşılık GSH ve IL-10 değerleri en düşüktü. Grup HES’de grup GEL’e göre MDA, TNF-a ve IL-6 değerleri daha düşük fakat IL-10 ve GSH düzeyleri ise daha yüksekti (p

Akut hemorajik şok oluşturulan tavşanlarda HES 130/0.4 ve modifiye jelatin solüsyonları ile yapılan hipoksemik resüsitasyonun antioksidatif ve antiinflamatuvar etkileri

Background: The aim of this study was to investigate antioxidative effects and antiinflammatory properties of colloid fluids such as HES 130/0.4 or modified gelatin solution in rabbits during resuscitation of acute hemorrhagic shock under hypoxemic conditions.Methods: Twenty-one New Zealand Wistar albino rabbits were randomly allocated to one of the three experimental groups: HES 130/0.4 solution (n=7, Voluven®, group HES), gelatine solution (n=7, Gelafusine®, group GEL) and control (n=7, sodium chloride 0.9%, Saline group). Hemorrhagic shock was induced by controlled blood withdrawal (40% of total estimated blood volume) from the left carotid artery over 30 minute under hypoxemic conditions. The period of hypovolemia was maintained for 10 minute All resuscitation solutions, except saline solution (3 volumes of saline/1 volume of blood loss for saline), were infused as withdrawn blood volume via the jugular vein over 30 minute after the hypovolemic period under hypoxemic conditions. Rabbits were breathing spontaneously via tracheotomy in room air during hemorrhage and fluid resuscitation periods (hypoxemic resuscitation). Malondialdehyde (MDA), glutathione (GSH), interleukin (IL)-6, IL-10 and tumor necrosis factor alpha (TNF)-a concentrations were measured before hemorrhagic shock and after fluid resuscitation in all blood samples.Results: The values of the MDA, TNF-a, IL-6 levels were the highest, whereas IL-10 and GSH levels were the lowest in the Saline group compared to the other groups. The MDA, TNF-a, IL-6 levels were lower, but the IL-10 and GSH levels were higher in group HES compared to group GEL (p

___

  • 1) Fink MP. Bench-to-bedside review: cytopathic hypoxia. Crit Care 2002;6:491 9.
  • 2) Boldt J, Suttner S. Plasma substitutes. Minerva Anestesiol 2005;71:741-58.
  • 3) Gutierrez G, Reines HD, Wulf-Gutierrez ME. Clinical review: hemorrhagic shock. Crit Care 2004;8:373-81.
  • 4) Boldt J. Saline versus balanced hydroxyethyl starch: does it matter? Curr Opin Anaesthesiol 2008;21:679-83.
  • 5) Bauer C, Walcher F, Holanda M, Mertzlufft F, Larsen R, Marzi I. Antioxidative resuscitation solution prevents leukocyte adhesion in the liver after hemorrhagic shock. J Trauma 1999;46:886-93.
  • 6) Bunn F, Trivedi D, Ashraf S. Colloid solutions for fluid resuscitation. Cochrane Database Syst Rev 2008;23:CD001319.
  • 7) Chan DL. Colloids: current recommendations. Vet Clin North Am Small Anim Pract 2008;38:587-93.
  • 8) Douzinas EE, Livaditi O, Tasoulis MK, Pelekanou A, Giamarellos-Bourboulis EJ. Stimulation of monocytes is a pathway involved in systemic inflammatory response following haemorrhagic shock resuscitation: the effect of hypoxaemic resuscitation. Clin Exp Immunol 2007;150:502-8.
  • 9) Zhang N, Komine-Kobayashi M, Tanaka R, Liu M, Mizuno Y, Urabe T. Edaravone reduces early accumulation of oxidative products and sequential inflammatory responses after transient focal ischemia in mice brain. Stroke 2005;36:2220-5.
  • 10) Douzinas EE, Livaditi O, Andrianakis I, Prigouris P, Paneris P, Villiotou V, et al. The effect of hypoxemic resuscitation from hemorrhagic shock on blood pressure restoration and on oxidative and inflammatory responses. Intensive Care Med 2008;34:1133-41.
  • 11) Boura C, Caron A, Longrois D, Mertes PM, Labrude P, Menu P. Volume expansion with modified hemoglobin solution, colloids, or crystalloid after hemorrhagic shock in rabbits: effects in skeletal muscle oxygen pressure and use versus arterial blood velocity and resistance. Shock 2003;19:176-82.
  • 12) Mitruka BM, Rawnsley HM. Clinical, biochemical and haematological reference values in normal experimental animals. New York: Masson Publishing; 1977. p. 24-5.
  • 13) Elshal MF, McCoy JP. Multiplex bead array assays: performance evaluation and comparison of sensitivity to ELISA. Methods 2006;38:317-23.
  • 14) Yoshioka T, Kawada K, Shimada T, Mori M. Lipid peroxidation in maternal and cord blood and protective mechanism against activated-oxygen toxicity in the blood. Am J Obstet Gynecol 1979;135:372-6.
  • 15) Beutler E, Duron O, Kelly BM. Improved method for the determination of blood glutathione. J Lab Clin Med 1963;61:882-8.
  • 16) Douzinas EE, Andrianakis I, Livaditi O, Paneris P, Tasoulis M, Pelekanou A, et al. The level of hypotension during hemorrhagic shock is a major determinant of the post-resuscitation systemic inflammatory response: an experimental study. BMC Physiol 2008;8:15.
  • 17) Hildebrand F, Hubbard WJ, Choudhry MA, Frink M, Pape HC, Kunkel SL, et al. Kupffer cells and their mediators: the culprits in producing distant organ damage after traumahemorrhage. Am J Pathol 2006;169:784-94.
  • 18) Keel M, Trentz O. Pathophysiology of polytrauma. Injury 2005;36:691-709.
  • 19) Cotton BA, Guy JS, Morris JA Jr, Abumrad NN. The cellular, metabolic, and systemic consequences of aggressive fluid resuscitation strategies. Shock 2006;26:115-21.
  • 20) Davies MG, Hagen PO. Systemic inflammatory response syndrome. Br J Surg 1997;84:920-35.
  • 21) Powers KA, Zurawska J, Szaszi K, Khadaroo RG, Kapus A, Rotstein OD. Hypertonic resuscitation of hemorrhagic shock prevents alveolar macrophage activation by preventing systemic oxidative stress due to gut ischemia/reperfusion. Surgery 2005;137:66-74.
  • 22) Schmand JF, Ayala A, Morrison MH, Chaudry IH. Effects of hydroxyethyl starch after trauma-hemorrhagic shock: restoration of macrophage integrity and prevention of increased circulating interleukin-6 levels. Crit Care Med 1995;23:806-14.
  • 23) Kobbe P, Stoffels B, Schmidt J, Tsukamoto T, Gutkin DW, Bauer AJ, et al. IL-10 deficiency augments acute lung but not liver injury in hemorrhagic shock. Cytokine 2009;45:26-31.
  • 24) Ferrer TJ, Webb JW, Wallace BH, Bridges CD, Palmer HE, Robertson RD, et al. Interleukin-10 reduces morbidity and mortality in murine multiple organ dysfunction syndrome (MODS). J Surg Res 1998;77:157-64.
  • 25) Howard M, Muchamuel T, Andrade S, Menon S. Interleukin 10 protects mice from lethal endotoxemia. J Exp Med 1993;177:1205-8.
  • 26) Rogy MA, Auffenberg T, Espat NJ, Philip R, Remick D, Wollenberg GK, et al. Human tumor necrosis factor receptor (p55) and interleukin 10 gene transfer in the mouse reduces mortality to lethal endotoxemia and also attenuates local inflammatory responses. J Exp Med 1995;181:2289-93.
  • 27) Boldt J. Do plasma substitutes have additional properties beyond correcting volume deficits? Shock 2006;25:103-16.
  • 28) Ferreira EL, Terzi RG, Silva WA, de Moraes AC. Early colloid replacement therapy in a near-fatal model of hemorrhagic shock. Anesth Analg 2005;101:1785 91.
  • 29) Hilzenrat N, Arish A, Yaari A, Almog Y, Sikuler E. Blood viscosity, hemodynamics and vascular hindrance in a rat model of acute controlled bleeding and volume restitution with blood or Haemaccel. Acta Anaesthesiol Scand 2001; 45:371-6.
  • 30) Matharu NM, Butler LM, Rainger GE, Gosling P, Vohra RK, Nash GB. Mechanisms of the anti-inflammatory effects of hydroxyethyl starch demonstrated in a flow-based model of neutrophil recruitment by endothelial cells. Crit Care Med 2008;36:1536-42.
  • 31) Schmand JF, Ayala A, Chaudry IH. Effects of trauma, duration of hypotension, and resuscitation regimen on cellular immunity after hemorrhagic shock. Crit Care Med 1994; 22:1076-83.
  • 32) Collis RE, Collins PW, Gutteridge CN, Kaul A, Newland AC, Williams DM, et al. The effect of hydroxyethyl starch and other plasma volume substitutes on endothelial cell activation; an in vitro study. Intensive Care Med 1994;20:37 41.
  • 33) Sillett HK, Whicher JT, Trejdosiewicz LK. Effects of resuscitation fluids on T cell immune responses. Br J Anaesth 1998; 81:242-3.
  • 34) Lee CC, Chang IJ, Yen ZS, Hsu CY, Chen SY, Su CP, et al. Effect of different resuscitation fluids on cytokine response in a rat model of hemorrhagic shock. Shock 2005;24:177-81.
  • 35) Tsai MC, Chen WJ, Ching CH, Chuang JI. Resuscitation with hydroxyethyl starch solution prevents nuclear factor kappaB activation and oxidative stress after hemorrhagic shock and resuscitation in rats. Shock 2007;27:527-33.
  • 36) Childs EW, Udobi KF, Wood JG, Hunter FA, Smalley DM, Cheung LY. In vivo visualization of reactive oxidants and leukocyte-endothelial adherence following hemorrhagic shock. Shock 2002;18:423-7.
  • 37) Németh I, Boda D. The ratio of oxidized/reduced glutathione as an index of oxidative stress in various experimental models of shock syndrome. Biomed Biochim Acta 1989;48:S53-7.
Türk Göğüs Kalp Damar Cerrahisi Dergisi-Cover
  • ISSN: 1301-5680
  • Yayın Aralığı: Yılda 4 Sayı
  • Başlangıç: 1991
  • Yayıncı: Bayçınar Tıbbi Yayıncılık
Sayıdaki Diğer Makaleler

Koroner subklavyan çalma sendromu: Olgu sunumu

Anıl AVCI, Bilal BOZTOSUN, Mehmet MERİÇ, Mustafa SAĞLAM

Koroner arter hastalığında plazma ve doku oksidatif durumu: Oksidatif stres ve koroner arter hastalığı

Mehmet BALKANAY, Recep DEMİRBAĞ, Abdullah TAŞKIN, Yusuf SEZEN, Bülent RABUŞ, Serap KALAYCI

Soliter pulmoner nodüllerde cerrahi yaklaşım

Mehmet DAKAK, Burçin ÇELİK, Onur GENÇ, Sedat GÜRKÖK, Orhan YÜCEL, Hasan ÇAYLAK, Ersin SAPMAZ, Sezai ÇUBUK, Kuthan KAVAKLI

Bir olgu, iki ilk: Türkiye'e ilk başarılı çift akciğer transplantasyonu; pediatrik yaş grubunda Türkiye'e ilk akciğer transplantasyonu

Esen DEMİR, Figen GÜLEN, Ufuk ÇAĞIRICI, Çağatay ENGİN, Tahir YAĞDI, Deniz NART, Levent MİDYAT, Remziye TANAÇ, Coşkun ÖZCAN, Fatma AŞKAR, Sanem NALBANTGİL, Mustafa ÖZBARAN, Kutsal TURHAN

Penetrating thoracic trauma due to an exploded battery

Ahmet BAŞOĞLU, Ayşen Taslak ŞENGÜL, Cem Diren ÖZTÜRK, Tamer KUTLU

Surgical repair of coarctation of aorta in neonates and infants: A 10 years experience

Emrah UĞUZ, Süleyman ÖZKAN, Sait AŞLAMACI, Bahadır GÜLTEKİN, Hakkı Tankut AKAY

Sleeve resection of mucoepidermoid carcinoma in left main bronchus through median sternotomy

Fatih METEROĞLU, Kemal BAKIR, Ahmet Feridun IŞIK, Murat ŞANLI, Levent ELBEYLİ, Bülent TUNÇÖZGÜR

Kalıcı fibrilasyon sürecindeki insan sağ atriyal miyositlerinde apoptotik protein ekspresyonları

Nalan AKYÜREK, Ümit ÖZYURDA, Günseli ÇABUKÇUOĞLU, Çağın ZAİM, Serkan DURDU, Ahmet Rüçhan AKAR, Ömer AKYÜREK

Atan kalpte minimal invaziv aksillokoroner bypass greftleme: Orta dönem sonuçlar

Salih AYDIN, Deniz DEMİR, Mehmet Halit ANDAÇ, Mustafa GÖZ, Cüneyt SELLİ

Tek ventrikül morfolojisine sahip hastalarda çift yönlü Glenn şant işleminin kısa ve orta dönem sonuçları

Hasan SUNAR, Ayşe YILDIRIM, Ali FEDAKAR, Rahmi ZEYBEK, Ahmet ŞAŞMAZEL, Orhan FINDIK, Ahmet ÇALIŞKAN, Ayşe BAYSAL

Academic Researches Index - FooterLogo