Çipura (Sparus aurata), levrek (Dicentrarchus labrax) ve alabalık (Oncorhyncus mykiss)’ların baş bölgesinden elde edilen protein hidrolizatlarının depolamadaki kararlılığı

Bu çalışma kapsamında, Türkiye'de kültüre edilen çipura (Sparus aurata), levrek (Dicentrarchus labrax) ve alabalıkların (Oncorhyncus mykiss) fileto edilmesi sonucunda ortaya çıkan atıklarından olan baş bölgesinden, protein hidrolizatı elde edilmiştir. Elde edilen ürünlerin bazı fonksiyonel ve antioksidan özellikleri tespit edildikten sonra dondurularak 6 ay süreyle depolanan protein hidrolizatlarının depolama sonrası kararlılığı analizlerle belirlenmiştir. Bu çalışmada elde edilen hidrolizatlarda; hidroliz derecesinin ölçülmesi, fonksiyonel özellikler (protein çözünürlüğü, emülsiyon özellikleri, köpürme özellikleri, renk özellikleri, su tutma kapasitesi tespiti (WHC)), antioksidan özellikler (DPPH (1,1-diphenyl-2-pic-ryhydrayl) serbest radikali giderme kapasitesi, antioksidatif aktivite tespiti, metal şelatlama ve aminoasit diziliminin tanımlanması yapılmıştır. Üretimden sonra -18 °C' de depolamaya alınan balık protein hidrolizatlarında depolama süresinin etkisini değerlendirmek amacıyla, yukarıda açıklanan fonksiyonel ve antioksidatif özelllikleri kapsayan analizler 6 aylık depolama periyodu sonunda tekrarlanmıştır. Tüm sonuçlar istatiksel analizler kullanılarak yorumlanmıştır. Balık protein hidrolizatının fonksiyonel ve antioksidatif özelliklerine göre en yüksek antioksidan aktivitesi, çipura hidrolizatında belirlenmiştir. Tüm balık protein hidrolizatlarının üretim verimi % 5'tir. Balık protein hidrolizatlarının fonksiyonel ve antioksidan özellikleri balık türüne göre değişkendir

Stability of fish protein hydrolysate from heads of gilthead sea bream (Sparus aurata), european sea bass (Dicentrarchus labrax) and rainbow trout (Oncorhyncus mykiss) during storage

In the present study, protein hydrolyzate was obtained from the head region from the wastes produced during filleting of seabream (Sparus aurata), seabass (Dicentrarchus labrax) and trout (Oncorhyncus mykiss) cultured in Turkey. After the functional and antioxidant properties of the obtained products were determined, the post-storage stability of the protein hydrolysates stored frozen for 6 months was determined by analysis. In this study, degree of hydrolysis, functional properties (protein solubility, emulsion properties, foaming properties, color properties, water holding capacity (WHC)), antioxidant properties (DPPH (1,1 –diphenyl-2-pic-ryhydrayl) free radical scavenging capacity, antioxidative activity, metal chelating) and determination of aminoacid sequencing were carried out in protein hydrolysate. To evaluate the effect of storage time on fish protein hydrolysates stored at -18°C after production, the above-mentioned analyzes including functional and antioxidative properties were repeated at the end of the 6 month storage period. Results were interpreted using statistical analysis. According to the functional and antioxidative properties of fish protein hydrolyzate, the highest antioxidant activity was determined in seabream head hydrolyzate. The production yield of all fish protein hydrolysates is 5%. The functional and antioxidant properties of fish protein hydrolysates varied according to fish species

___

  • Aylangan A. & Öztan A. (2008). Hayvansal gıda sanayisi yan ürünleri kullanılarak protein hidrolizatları üretimi. Türkiye 10. Gıda Kongresi, 21-23 Mayıs 2008, Erzurum.
  • Beak H.H. & Cadwallader K.R. (1995) Enzymatic hydrolysis of crayfish processing by-products, Journal of Food Science 60 (5): 929–935. doi: 10.1111/j.1365-2621.1995.tb06264.x
  • Benjakul S. & Morrissey, M.T. (1997). Protein hydrolysates from Pacific whiting solid wastes, Journal of Agricultural and Food Chemistry 45(9) : 3423– 3430. doi: 10.1021/jf970294g
  • Bougatef A., Nedjar-Arroume N., Manni L., Ravallec R., Barkia A. Guillochon D. & Nasri M. (2010) Purification and identification of novel antioxidant peptides from enzymatic hydrolysates of sardinelle (Sardinella aurita) byproducts proteins, Food Chemistry, 118(3): 559-565. doi: 10.1016/j.foodchem.2009.05.021
  • Çaklı, Ş., (2008). Su Ürünleri İşleme Teknolojisi 2. Ege Üniversitesi Yayınları, Su Ürünleri Fakültesi Yayın No: 77.
  • Chen H.M. Muramoto K. & Yamaguchi F. (1995). Structural analysis of antioxidative peptides from soybean beta-conglycinin, Journal of Agricultural and Food Chemistry 43 (3), :574–578. doi: 10.1021/jf00051a004
  • Chung Y.C. Chang C.T. Chao W.W., Lin C.F. & Chou, S.T (2002). Antioxidative activity and safety of the 50% ethanolic extract from red bean fermented by Bacillus subtilis IMR-NK1, Journal of Agricultural and Food Chemistry 50: 2454–2458. doi: 10.1021/jf011369q
  • Deraz S., (2015). Protein hydrolysate from visceral waste proteins of Bolti fish (Tilapia nilotica): chemical and nutritional variations as affected by processing pHs and time of hydrolysis, Journal of Aquatic Food Product Technology, 24(6): 614-631. doi: 10.1080/10498850.2013.797534
  • Eide O, Borresen T. & Strom T. (1982). Minced fish production from capelin (Mallotus villosus). A new method of gutting, skinning and removal of fat from small fatty fish species. Journal of Food Science 47(2): 347-349. doi: 10.1111/j.1365-2621.1982.tb10078.x
  • Klompong V., Benjakul S., Kantachote D. & Shahidi S. (2007). Antioxidative activity and functional properties of protein hydrolysate of yellow stripe trevally (Selaroides leptolepis) as influenced by the degree of hydrolysis and enzyme type. Food Chemistry 102: 1317–1327. doi:10.1016/j.foodchem.2006.07.016
  • Kristinsson H.G. & Rasco B.A. (2000). Fish Protein Hydrolysates: Production, Biochemical, and Functional Properties. Critical Reviews in Food Science and Nutrition, 40(1): 43–81. doi: 10.1080/10408690091189266
  • Lowry O.H. Rosebrough N.J., Farr A.L. & Randall R.J. (1951). Protein measurement with the Folin phenol reagent, Journal of Biological Chemistry 193(1) : 265–275.
  • Nguyen H.T., Sylla B.S.K., Randriamahatody Z., Donnay-Moreno C., Moreau J., Tran T.L. & Berge P.J. (2011). Enzymatic Hydrolysis of Yellowfin Tuna (Thunnus albacares) By-Products Using Protamex Protease. Food Technol. Biotechnol,. 49: 48–55.
  • Muzaifa M., Safriani N. & Zakaria F. (2012). Production of protein hydrolysates from fish by-product prepared by enzymatic hydrolysis. International Journal of the Bioflux Society, 5(1): 36-39.
  • Pearce K.N. & Kinsella J.E. (1978). Emulsifying properties of proteins: Evaluation of a turbidimetric technique, Journal of Agricultural and Food Chemistry 26(3): 716-723. doi: 10.1021/jf60217a041
  • Schubring, R. (2002). Influence of freezing/thawing and frozen storage on the texture and colour of brown shrimp (Crangon crangon). Archiv für Lebensmittel hygiene. 53: 25-48
  • Shahidi F., Han X.-Q. & Synowiecki J. (1995). Production and characteristics of protein hydrolysates from capelin (Mallotus villosus), Food Chemistry, 53(3): 285–293. doi: 10.1016/0308-8146(95)93934-J
  • Tanuja S., Viji P., Zynudheen A.A. & Joshy C.G. (2012). Composition, functional properties and antioxidative activity of hydrolysates prepared from the frame meat of Striped catfish (Pangasianodon hypophthalmus). Egyptian Journal of Biology, 2012, 14: 27-35. doi: 10.4314/ejb.v14i1.3
  • Thiansilakul Y., Benjakul B. & Shahidi F. (2007a). Compositions, functional properties and antioxidative activity of protein hydrolysates prepared from round scad (Decapterus maruadsi). Food Chemistry. 103: 1385–1394. doi: 10.1016/j.foodchem.2006.10.055
  • Thiansilakul Y., Benjakul B. & Shahidi F. (2007b). Antıoxıdatıve Actıvıty Of Proteın Hydrolysate From Round Scad Muscle Using Alcalase. Journal of Food Biochemistry 31: 266–287. doi: 10.1111/j.1745-4514.2007.00111.x TÜİK, (2016). Su ürünleri İstatistikleri, Ankara
  • Yen G.C. & Wu J.Y. (1999). Antioxidant and radical properties of extracts from Ganoderma tsugae, Food Chemistry 65(3): 375–379. doi: 10.1016/S0308-8146(98)00239-8
  • Wasswa J., Tang J, Gub X. & Yuan X. (2007). Influence of the extent of enzymatic hydrolysis on the functional properties of protein hydrolysate from grass carp (Ctenopharyngodon idella) skin. Food Chemistry, 104: 1698–1704. doi: 10.1016/j.foodchem.2007.03.044
Su Ürünleri Dergisi-Cover
  • ISSN: 1300-1590
  • Yayın Aralığı: Yılda 4 Sayı
  • Başlangıç: 1984
  • Yayıncı: Aynur Lök
Sayıdaki Diğer Makaleler

Spongilla lacustris’in (Porifera: Demospongiae) Doğu Karadeniz’den (Uzungöl, Trabzon) ilk kaydı

Efe ULUTÜRK, MURAT ÖZBEK

The occurrence of Pomphorhynchus laevis (Acanthocephala) in cagereared rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) from Işıklı Spring, Çivril, Turkey

Dilara Sözeren ÇEVRİMEL, Erhan SOYLU

Reconfirmed occurrance and northward expansion of the royal flagfish Aulopus filamentosus (Bloch, 1792) from the Aegean Sea

İSMAİL BURAK DABAN, Kamil ÇAKIR, DENİZ ACARLI, Ali İşmen

Unio terminalis (Bivalvia: Unionidae)' in üreme biyolojisi üzerine gözlemler

MEHMET GÜLER, DENİZ ÇOBAN, BİRSEN KIRIM

İzmir Körfezi’nde olta ile kalamar (Loligo vulgaris) avcılığı yapan balıkçıların sosyo-ekonomik analizi

HURİYE GÖNCÜOĞLU BODUR, M.Hakan KAYKAÇ, VAHDET ÜNAL

Some morphometric features and length - weight relationships of F1 hybrid juveniles (Umbrina cirrosa ♀ Χ Argyrosomus regius ♂)

ŞULE GÜRKAN, KUTSAL GAMSIZ, BILGE KARAHAN, EMEL ÖZCAN GÖKÇEK

Çipura (Sparus aurata), levrek (Dicentrarchus labrax) ve alabalık (Oncorhyncus mykiss)’ların baş bölgesinden elde edilen protein hidrolizatlarının depolamadaki kararlılığı

NİDA DEMİRTAŞ EROL, ÖMER ALPER ERDEM, ŞÜKRAN ÇAKLI

İhtiyoplanktonun dağılım dinamikleri ve stoka katılım hipotezleri

SİNAN MAVRUK, DURSUN AVŞAR

Doğu Karadeniz Bölgesi kıyı balıkçılığında kullanılan uzatma ağlarının teknik özellikleri

SERAP SAMSUN, Öğünç EMİRBUYURAN

Boztepe Recai Kutan Baraj Gölü (Malatya - Türkiye) zooplankton faunası

SERAP SALER, Kenan ALPASLAN, Gökhan KARAKAYA, Fatih GÜNDÜZ