Parkinson tanısı almış hastalarda snoRNA’ların deregülasyonu

modifikasyonlarına aracılık ederler. 5'-uçları ve poli-A kuyrukları yoktur. C/D box snoRNA'lar, H/ACA boxsnoRNA'lar ve küçük kajal gövdesine özgü RNA'lar olarak sınıflandırılırlar. snoRNA'lar, transkripsiyon, RNAeklenmesi, hücre döngüsü vb. gibi önemli biyolojik süreçlerde önemli rollere sahiptir. Bu çalışmada, Parkinsontanısı alan hastaların PBMC'lerinde snoRNA'ların ifade değişimlerini mikroarray analizi ile ortaya koymayaçalıştık.Gereç ve yöntem: Unilateral başlangıç öyküsü olan ve ilk yıllarda dopaminerjik tedaviye iyi yanıt verdiğidüşünülen hastalar (n=3) çalışmaya alındı. Periferik kan mononükleer hücre izolasyonu için 10 ml periferik kanörneği alındı. Total RNA, GeneAll® Hybrid-R™ kiti kullanılarak izole edildi ve Affymetrix GeneChip Human ST2.0 platformu kullanılarak mikrodizin analizi yapıldı. Ham datalar, Affymetrix Command Console Software 1.1kullanılarak çıkarıldı. KEGG yolak ve Gen ontoloji analizleri yapıldı ve lokus genlerin protein-protein değişimiSTRING veri tabanı kullanılarak gerçekleştirildi.Bulgular: Elde edilen veriler, 28 snoRNA'nın upregüle olduğunu ve 3 snoRNA'nın downregüle olduğunu ortayaçıkardıSonuç: Bu çalışmada, mikrodizin analizi ile kesin Parkinson tanısı alan hastalarda snoRNA'ların ifadedeğişimlerini değerlendirdik ve bazı snoRNA'ların deregüle ekspresyonlarını gözlemledik. snoRNA'lardaki ifadedeğişimi, lokus genlerin transkripsiyonel aktivitesinde değişikliklere neden olabilir ve bu nedenle hastalıklar içinbiyobelirteçler olarak değerlendirilebilirler.
Anahtar Kelimeler:

parkinson, snoRNA, mikrodizin

snoRNAs are deregulated in patients with Parkinson’s Disease

Purpose: Small nucleolar RNAs are ranging from 65 to 300 nucleotides in length that mediate post-transcriptionalRNA modifications. They don’t have a 5′-Cap and a poly-A tail and are categorized as C/D box snoRNAs, H/ACA box snoRNAs, and small Cajal body-specific RNAs. snoRNAs have essential roles in important biologicalprocesses such as transcription, RNA splicing, cell cycle, and etc. In this study, we tried to reveal differentialexpressions of snoRNAs in PBMCs of patients with Parkinson’s Disease by microarray analysis.Materials and methods: Patients (n=3) who are considered to have a unilateral onset history and a goodresponse to dopaminergic treatment in the first years were included in the study. 10 ml peripheral blood samplewas taken for peripheral blood mononuclear cell isolation. Total RNA was extracted using GeneAll® Hybrid-R™kit and microarray analysis was performed by using Affymetrix GeneChip Human ST 2.0 platform. Raw datawere extracted using Affymetrix Command Console Software 1.1. KEGG pathway and GO terms analyses wereperformed and protein-protein interaction of host genes were determined by using STRING database.Results: Data from patients revealed that there were 28 snoRNAs were downregulated and 3 snoRNAs wereupregulated.Conclusion: Here in this study, we evaluated the differential expressions of snoRNAs in patients with a definitivediagnosis of PD by microarray analysis and observed deregulated expressions of some snoRNAs. Differentialexpression of snoRNA may cause changes in the transcriptional activity of host genes and thus can serve asbiomarkers for diseases.

___

  • 1. Kiss T. Small nucleolar RNA-guided post-transcriptional modification of cellular RNAs. EMBO J 2001;20:3617-3622. https://doi.org/10.1093/emboj/20.14.3617
  • 2. Dieci G, Preti M, Montanini B. Eukaryotic snoRNAs: a paradigm for gene expression flexibility. Genomics 2009;94:83-88. https://doi.org/10.1016/j.ygeno.2009.05.002
  • 3. Brown JW, Marshall DF, Echeverria M. Intronic noncoding RNAs and splicing. Trends Plant Sci 2008;13:335-342. https://doi.org/10.1016/j.tplants.2008.04.010
  • 4. Liang J, Wen J, Huang Z, et al. Small nucleolar RNAs: ınsight ınto their function in cancer. Front Oncol 2019;9:587. https://doi.org/10.3389/fonc.2019.00587
  • 5. Hüttenhofer A, Brosius J, Bachellerie JP. RNomics: identification and function of small, non-messenger RNAs. Curr Opin Chem Biol 2002;6:835-843. https://doi.org/10.1016/s1367-5931(02)00397-6
  • 6. Wajahat M, Bracken CP, Orang A. Emerging functions for snoRNAs and snoRNA-derived fragments. Int J Mol Sci 2021;22:10193. https://doi.org/10.3390/ijms221910193
  • 7. Wei JW, Huang K, Yang C, et al. Non-coding RNAs as regulators in epigenetics (Review). Oncol Rep 2017;37:3-9. https://doi.org/10.3892/or.2016.5236
  • 8. Ender C, Krek A, Friedländer MR, et al. A human snoRNA with microRNA-like functions. Mol Cell 2008;32:519-528. https://doi.org/10.1016/j.molcel.2008.10.017
  • 9. Erro R, Stamelou M. The motor syndrome of parkinson’s disease. Int Rev Neurobiol 2017;132:25-32. https://doi.org/10.1016/bs.irn.2017.01.004
  • 10. Greenland JC, Williams Gray CH, Barker RA. The clinical heterogeneity of Parkinson's disease and its therapeutic implications. Eur J Neurosci 2019;49:328-338. https://doi.org/10.1111/ejn.14094
  • 11. Kang H, Shin JH. Repression of rRNA transcription by PARIS contributes to Parkinson's disease. Neurobiol Dis 2015;73:220-228. https://doi.org/10.1016/j.nbd.2014.10.003
  • 12. Dsouza VL, Adiga D, Sriharikrishnaa S, et al. Small nucleolar RNA and its potential role in breast cancer - A comprehensive review. Biochim Biophys Acta Rev Cancer 2021;1875:188501. https://doi.org/10.1016/j.bbcan.2020.188501
  • 13. Gstir R, Schafferer S, Scheideler M, et al. Generation of a neuro-specific microarray reveals novel differentially expressed noncoding RNAs in mouse models for neurodegenerative diseases. RNA 2014;20:1929-1943. https://doi.org/10.1261/rna.047225.114
  • 14. Jiao FJ, Wang QZ, Zhang P, et al. CDK5-mediated phosphorylation of XBP1s contributes to its nuclear translocation and activation in MPP+-induced Parkinson's disease model. Sci Rep 2017;7:5622. https://doi.org/10.1038/s41598-017-06012-6
  • 15. Cavaillé J, Buiting K, Kiefmann M, et al. Identification of brain-specific and imprinted small nucleolar RNA genes exhibiting an unusual genomic organization. Proc Natl Acad Sci U S A 2000;97:14311-14316. https://doi.org/10.1073/pnas.250426397
  • 16. Bluth M, Lin YY, Zhang H, Viterbo D, Zenilman M. Use of gene expression profiles in cells of peripheral blood to identify new molecular markers of acute pancreatitis. Arch Surg 2008;143:227-233;discussion 233-234. https://doi.org/10.1001/archsurg.2007.73
  • 17. Pauley KM, Satoh M, Chan AL, Bubb MR, Reeves WH, Chan EK. Upregulated miR-146a expression in peripheral blood mononuclear cells from rheumatoid arthritis patients. Arthritis Res Ther 2008;10:101. https://doi.org/10.1186/ar2493
  • 18. Baine MJ, Chakraborty S, Smith LM, et al. Transcriptional profiling of peripheral blood mononuclear cells in pancreatic cancer patients identifies novel genes with potential diagnostic utility. PLoS One 2011;6:17014. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0017014
Pamukkale Tıp Dergisi-Cover
  • ISSN: 1309-9833
  • Yayın Aralığı: Yılda 4 Sayı
  • Başlangıç: 2008
  • Yayıncı: Prof.Dr.Eylem Değirmenci
Sayıdaki Diğer Makaleler

Parkinson tanısı almış hastalarda snoRNA’ların deregülasyonu

Pervin Elvan TOKGÜN, Ayşe Gaye TOMATIR, Fatma Gizem SARIEKİZ, Sinan BİR

IgA Vaskülitli çocuk hastaların demografik, klinik, laboratuvar bulguları ve tedavi sonuçları: tek merkez deneyimi

Ceyhun AÇARI, Meral BAYRAM, Gizem YILDIZ, Salih KAVUKÇU, Alper SOYLU

İskemik inmenin erken dönem tekrarinda risk faktörleri

Nevzat UZUNER, Gülnur TEKGÖL UZUNER, Yasemin DİNC

Gluteus medius ve minimus kas kalınlığının üç aya kadar gelişimsel kalça displazisi üzerine etkisi

Aydan ARSLAN, Bahadır BALKANLI

HEC-1B hücrelerinde glabridinin hücre proliferasyonu ve uzun kodlamayan RNA ekspresyonu üzerindeki etkileri

Muhammed Fatih DOĞAN, Mücahit SEÇME, Yasemin ŞAHİN, Osman ÇİFTÇİ

Ailesel Akdeniz ateşi hastalarında romatizmal hastalıkların sıklığı

Gülçin OTAR YENER, Selcuk YUKSEL, Zahide EKİCİ TEKİN, Hülya TÜRKMEN

Kaynağı belirlenemeyen embolik inmede sol atriyal ve ventriküler longitudinal strain

Emrah KAYA, Yalın Tolga YAYLALI, Eylem TEKE, Hande ŞENOL, Gokay NAR

Kanser tanılı çocuk ve ergenlerde travma sonrası büyüme ile travmatik ve ruhsal etkilenmenin incelenmesi

Merve AKTAŞ TERZİOĞLU, Tugce SOYLEYİCİ MERT, Selin YAKARIŞIK, Hande ŞENOL

Üretra darlıklarında nüks sayısı, darlık uzunluğu ve lokalizasyonu öngören parametreler

Muhammed TEMEL, Sezgin OKÇELİK

Çocuk hastalarda farklı özellikleriyle Scimitar sendromu: tek merkez deneyimi

Ali ORGUN, Birgül VARAN, İlkay ERDOĞAN, Niyazi TOKEL, Alper GÜRSU, Murat ÖZKAN, Mehmet Sait AŞLAMACI