Investigation of prevalence of Babesia equı (Laveran, 1901) and Babesia caballi (Nuttall, 1910) in horses by serological methods in Elazığ and Malatya province

Elazığ ve Malatya İllerinde Atlarda Babesia equi (Laveran, 1901) ve Babesia caballi (Nuttall, 1910) Türlerinin Yayılışının Serolojik Yöntemlerle Araştırılması Bu çalışma, Elazığ ve Malatya'da bulunan Babesia türlerinin tespiti ve serolojik olarak IFAT ve CFT yöntemiyle Babesia equi ve Babesia caballi seroprevalansımn saptanması amacıyla yapılmıştır.Bu amaç için, 2003 yılında bu bölgedeki illerden rastgele seçilen atlardan 78 serum ve 90 froti hazırlanmış ve incelenmiştir. Giemsa ile boyanan frotiler Babesia türleri yönünden muayene edilmiş ve hiçbir preparatta etken görülememiştir. Yapılan serolojik testlerde seropozitiflik Malatya'da IFAT ile B. equi yönünden %20.5, B. caballi yönünden %2.5; CFT ile B.equi yönünden % 18, B. caballi yönünden % 0 olarak saptanırken, Elazığ'da IFAT ve CFT ile B. equi ve B.caballi % 0 olarak saptanmıştır. Testler arasındaki sonuçların farklılığı istatistiksel olarak değerlendirilmiş, IFAT ve CFT arasında önemli bir fark bulunamamıştır.

Elazığ ve Malatya illerinde atlarda Babesia equi (Laveran, 1901) ve Babesia caballi (Nuttall, 1910) türlerinin yayılışının serolojik yöntemlerle araştırılması

The aim of this study was to determine the prevalance of Babesia equi and Babesia caballi by serologic (IFAT and CFT ) and microscopic examinations in Elazığ and Malatya provinces. For this purpose, 78 sera and 90 microscopic slides were prepared and examined from horses randomly chosen from these cities in this region in year 2003. Microscopic slides stained with Giemsa were examined for Babesia species, and the agents were not observed in microscopic preparations. In the serological tests performed, in Malatya seropositivity was found by IFAT to be 20.5% for B. equi, and 2.5% for B. caballi; while CFT revealed a prevalence between 18% for B. equi, and 0% for B. caballi. In Elazığ seropositivity was found by IFAT and CFT to be 0 % for B. equi and B. caballi. The differences between the results of the tests were evaluated statistically, no difference existed between IFAT and CFT.

PDF

___

1. Soulsby EJL. Helmints, Arthropods and Protozoa of Domesticated Animals, 7th Edition, London: Baillare Tindall, 1986.
2. Özcan HC. Ankara Civarında Evcil Hayvanlarda Görülen Piroplasmose Vakaları ve Tedavileri Üzerinde Araştırmalar. Ankara Üniversitesi Veteriner Fakültesi Yayınları 143. AÜ Basımevi 1961.
3. National Veterinary Services Laboratories Testing Protocol. Complement Fixation Test for Detection of Antibodies to Babesia Caballi and Babesia Equi-Microtitration Test. USDA Animal and Plant Health Inspection Service, Ames, IA.1997.
4. Alton GG, Lois MJ, Angus RD, Verger JM. Diagnostic Test Procedures. In: Techniques for the Brucellosis Laboratory. Institute National De La Recherche Agronomique, 147, rue de PUniversite, 75007 Paris, 1988.
5. Frerichs WM, Holbrook AA, Johnson AJ. Equine Piroplasmosis: Complement fixation titers of horses infected with Babesia caballi. Am J Vet Res 1969; 30 (5): 697-702.
6. Aicher BM. On possibilities to differentiate equine Babesia equi and B.caballi infections by means of CFT, IFAT and ELISA. Aus dem Institut fur Verglechende Tropenmedizin und Parasitologie der Tierarztlichen Fakültat der Universitat München, 1984.
7. Avarzed A, De Waal DT, Igarashi I, Saito A, Oyamada T, Toyoda Y, Suzuki N. Prevalance of equine piroplasmosis in central Mongolia. Onderstepoort J Vet Res. 1997; 64: 141-145.
8. Holman P J, Becu T, Bakos E, Polledo G, Cruz D, Wagner GG. Babesia equi field Iisolates cultured from horse blood using a microcentrifuge method. J Parasitol 1998; 84 (4): 696-699.
9. Weiland G. Species-specific serodiagnosis of equine piroplasma infections by means of complement fixation test (CFT), immunofluorescence (IIF) and enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA). Vet Parasitol 1986; 20: 43-48.
10. Aktaş M, Dumanlı N. Malatya Sultansuyu Tarım İşletmesi atlarında subklinik Babesia equi (Laveran, 1901) ve Babesia caballi (Nuttall, 1910) enfeksiyonları. Türk Parazitoloji Dergisi 2000; 24 (1): 55-56.
11. Alibaşoğlu M, Yalçıner Ş. 1933-1961 yılları arasında Ankara ve yöresinde atlarda görülen hastalıklara toplu bir bakış. Ankara Üniversitesi Veteriner Fakültesi Dergisi 1965; 12 (l-2):98-111.
12. İnci A. Gemlik Askeri Harası atlarında Babesia caballi (Nuttall, 1910) ve Babesia equi (Laveran, 1901)'nin mikroskobik muayeneyle saptanması. Tr J Vet Anim Sci 1997;21:43-46.
13. İnci A. Kayseri yöresinde tek tırnaklılarda Babesia equi (Laveran, 1901) ve Babesia caballi (Nuttall, 1910) yaygınlığının mikroskobik muayeneyle araştırılması. Fırat Üniv Sağ Bil Derg 2002; 16 (1): 85-88.
14. Nartman H, Pınar C, Erdin B. Manisa birlik hayvanlarında 1952 ve 1953 yıllarında görülen piroplazmoz olayları. Askeri Veteriner Dergisi 1954; 32 (188): 31-47.
15. Kuttler KL, Goff WL, Gipson CA, Blackburn BO. Serologic response of babesia equi- infected horses as measured by complement fixation and indirect fluorescent antibody tests. Vet Parasitol 1988; 26: 199-205.
16. Weiland VG, Aicher BM, Boch J. Serodiagnostic unk therapiekontrolle der pferde piroplasmose mit KBR unt IFAT. Berl Munch Tierarztl Wschr 1984; 97: 341-349.
17. Tenter AM, Friedhoff KT. Serodiagnosis of experimental and natural Babesia equi and B. caballi infections. Vet Parasitol 1986; 20: 49-61.
18. Shkap V, Cohen I, Leibovitz B, et al. Seroprevalance of Babesia equi among horses in Israel using competitive inhibition ELISA and IFA assays. Vet Parasitol 1998;76:251-259.