KÜLTÜR ŞARTLARINDAKİ TATLI SU ISTAKOZLARININ (ASTACUS LEPTODACTYLUS ESCH., 1823) YUMURTALI VE YAVRULU DÖNEMLERINDEKİ ABDOMEN, HEPATOPANKREAS VE OVARYUM AĞIRLIĞI, GSİ VE HSİ DEĞERLERİNİN İNCELENMESİ

Bu çalışmada, kültür şartlarında yetiştirilen tatlı su istakozlarının yumurtalı ve yavrulu dönemlerinde abdo-men eti, hepatopankreas ve ovaryum ağırlığındaki değişim, gonadosomatik indeks (GSİ) ve hepatosomatik indeks (HSİ) değerleri incelendi. Bu amaçla, % 35.78 oranında ham protein içeren bir yem hazırlandı. Bu yem tatlı su istakozlarına 272 gün vücut ağırlıklarının % 2’si oranında verildi. Çalışma sonucunda, her iki dö-nemde abdomen eti ve hepatopankreas ağırlığında, HSI değerinde farklılığa rastlanılmazken (p>0,05), ovar-yum ağırlığı ve GSİ değerinde meydana gelen değişimin (yumurtalı dönem=0,21±0,02 g, %0,70±0,07 yavru-lu dönem= 0,16±0,01 g %0,47±0,04) istatistiksel açıdan önemli olduğu belirlendi (p<0,05).

AN INVESTIGATION OF CULTURED FRESHWATER CRAYFISH’S ABDOMEN, HEPATOPANCREAS, OVARIAN WEİGHT, GSI AND HIS VALUES IN OVIGEROUS AND STAGE-1 JUVENILES PERIOD

In this study, gonadosomatic index (GSI) and hepatosomatic index (HSI) value, relationship of the abdomen flesh, hepatopancreas and ovarian weight in female freshwater crayfish with ovigerous and stage-1 juveniles in the culture conditions were investigated. For this aim, a diet , contain 35.78 % crude protein was prepared. Crayfish were fed 2% of their total wet weight with this diet for 272 days. Results showed that abdomen flesh, hepatopancreas weight and HSI value in each stage were not significantly different (p>0,05), but ovari-an weight and GSI value in each stage (ovigerous female =0,21±0,02 g, %0,70±0,07, female with stage-1 juveniles = 0,16±0,01 g %0,47±0,04) were found significantly different (p<0,05).

___

  • 1. Atay, D. 1997. Kabuklu Su Ürünleri ve Üretim Tekniği. Ankara Üniv. Ziraat Fak. Yayınları: 1478, Ankara, 348 s.
  • 2. Kumlu, M. 1998. Karides, İstakoz ve Midye Yetiştiriciliği, Çukurova Üniv. Su Ürün. Fak., Ders Kitabı No: 6, 340 s.
  • 3. Köksal G. 1988. Astacus leptodactylus in Euro-pa. In: Freshwater Crayfish: Biology, Manage-ment and Exploitation (Holdich D.M. & Lowery R.S., eds), Chapman & Hall, London, 83-113.
  • 4. Aydın, H. 1992. Farklı yemlerle beslenen tatlı su istakozu (Astacus leptodactylus Esch. 1823) yav-rularının büyüme oranlarının karşılaştırılması. İstanbul Üniv. Fen Bilimleri Enstitüsü, Yüksek Lisans Tezi, İstanbul, 39 s.
  • 5. Harlıoğlu M. M. 2004. The present situation of freshwater crayfish Astacus leptodactylus (Eschscholtz, 1823) in Turkey. Aquaculture, 230:181-187.
  • 6. Harlıoğlu, M.M. 2000. Astacus leptodactylus (Eschscholtz, 1823)’un çiftleşme ve yumurtlama davranışı ve stoklama yoğunluğunun çiftleşme ve yumurtlamaya etkisi. Fırat Üniv. Fen ve Müh. Bil. Dergisi, 12(1), 307-312.
  • 7. Lindqvist, O. V. ve Louekari, K. 1975. Muscle and hepatopancreas weight in Astacus astacus L. (Crustacea, Astacidae) in the trapping season in Finland. Annales Zoologici Fennici, 12; 237-243.
  • 8. Lindqvist, O.V. ve Lahti, E. 1983. On the sexual dimorphism and condition index in the crayfish Astacus astacus L. İn Finland. Freshwater Crayfish, 5:3-11.
  • 9. McRae, T. G. ve Mitchell, B. D. 1996. Control of ovarian rematuration in the yabby, Cherax destructor (Clark). Frashwater Crayfish, 11, 299-310.
  • 10. Lindøvist O.V., Huner, J.V., Henttonen P. ve Könönen, H.A. 1999. Comparison of life history strategies and energy reserves of crayfishes occupying permanent and temporary water bodies. Frashwater Crayfish, 12; 449-461.
  • 11. Lahti, E. 1988. On the muscle and hepatopanc-reas weight in crayfish (Astacus astacus L.) in Finland. Freshwater Crayfish 7; 319-325.
  • 12. Karol, S., Suludere, Z. ve Ayvalı, C. 1998. Biyoloji Terimleri Sözlüğü. Atatürk Kültür, Dil ve Tarih Yüksek kurumu, Türk Dil Kurumu Yayınları: 699, 1067s.
  • 13. Reigh, R. C., Braden S. L. ve Craıg R. J. 1990. Apparent digestibility coefficients for common feedstuffs in formulated diets for red swamp crayfish, Procambarus clarkii. Aquaculture, 84:321-334.
  • 14. AOAC 1984. Official methods of analysis (14th Ed), Association of Official Analytical Chemists. Inc. Arlington 1141 p.
  • 15. Rodriguez-Gonzalez, H., Hernandez-Llamas, A., Villarreal, H., Saucedo P.E., Garcia-ulloa, M. ve Rodriguez-jaramillo, C. 2006. Gonadal develop-ment and biochemical composition of female crayfish Cherax quadricarinatus Decapoda: Parastacidae) in relation to the Gonadosomatic Index at first maturation. Aquaculture, 254; 632-645.
  • 16. Özdamar K. 2001. SPSS ile Biyoistatistik, Yayın No:3, 4. Baskı, Kaan Kitabevi, Eskişehir, 452s.
  • 17. Harlıoğlu M. M. 1999. Keban Baraj Gölü, Ağın Yöresi tatlı su ıstakozu Astacus leptodactylus (Eschscholtz) populasyonunda ağırlık-uzunluk ilişkisi ve et verimi. Tr. J. of Zoology 23; Ek sayı 3, 949-957.
  • 18. Barım, Ö. 2007. Keban Baraj Gölü, Çemişgezek bölgesi tatlı su istakozu, Astacus leptodactylus Eschscholtz, 1823’un morfometrik analizi ve et verimi. F.Ü. Fen ve Mühendislik Bilimleri Dergisi, 19(3); 301-307.
  • 19. Harlıoğlu, M.M. ve Harlıoğlu, A.G. 2005. Eğir-dir, İznik Göller ve Hirfanlı Baraj Göllerinden Avlanan Tatlı Su İstakozu Astacus leptodactylus (Eschscholtz, 1823)’un Morfometrik Analizleri ile et Verimlerinin Karşılaştırılması. F.Ü. Fen ve Mühendislik Bilimleri Dergisi, 17(2); 412-423.
  • 20. Jussila J. 1997. Carapace mineralization and hepatopancreatic indices in natural and cultured populations of marron (Cherax tenuimanus) in Western Australia. Marine and Freshwater Research, 48(1); 67-72.
  • 21. Guoda, M. 1999. A comparative study of physiological and biochemical indices of native European and Alien species of crayfish in Lithuania. Frashwater Crayfish, 12, 205-220.
  • 22. Carmona-Osalde C., Rodriguez-Serna M., Olve-ra-Novoa, M.A. ve Gutierrez-Yurrita, P. J. 2004. Gonadal development, spawning, growth and survival of the crayfish Procambarus ılamasi at tree different water temperatures, Aquaculture, 232(1-4); 305-316.